UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA "JULIO DE MESQUITA FILHO" FACULDADE DE CIÊNCIAS FARMACÊUTICAS CÂMPUS DE ARARAQUARA ESTUDO DA ESTABILIDADE QUÍMICA, FÍSICA E LIBERAÇÃO IN VITRO DA ERITROMICINA VEICULADA EM SISTEMAS LÍQUIDO-CRISTALINOS PARA TRATAMENTO DA ACNE VULGARIS KAREN ROSSIT SOTIRO ORIENTADORA: Profª. Drª. Maria Virgínia Scarpa Araraquara-SP 2007 UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA "JULIO DE MESQUITA FILHO" FACULDADE DE CIÊNCIAS FARMACÊUTICAS CÂMPUS DE ARARAQUARA ESTUDO DA ESTABILIDADE QUÍMICA, FÍSICA E LIBERAÇÃO IN VITRO DA ERITROMICINA VEICULADA EM SISTEMAS LÍQUIDO-CRISTALINOS PARA TRATAMENTO DA ACNE VULGARIS KAREN ROSSIT SOTIRO Dissertação apresentada ao Programa de Pós- Graduação em Ciências Farmacêuticas, Área de Concentração em Pesquisa e Desenvolvimento de Fármacos e Medicamentos, Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Universidade Estadual Paulista Júlio de Mesquita Filho, como parte dos requisitos para obtenção do Título de Mestre em Ciências Farmacêuticas. ORIENTADORA: Profª. Drª. Maria Virgínia Scarpa Araraquara-SP 2007 Dedico aos meus pais Carlos Roberto e Maria Aparecida e a meu irmão André. Por todo amor, compreensão e apoio. “Procure ser uma pessoa de valor, em vez de procurar ser uma pessoa de sucesso. O sucesso é conseqüência.” Albert Einstein AGRADECIMENTOS Ao término deste trabalho gostaria de agradecer às pessoas que contribuíram de diferentes formas para a sua realização. À professora Maria Virgínia Scarpa pela oportunidade concedida, pela orientação e incentivo. Ao professor Dr. Celso Santilli e ao Dr. Vitor Hugo Sarmento do Departamento de Físico – Química do Instituto de Química da UNESP, pela colaboração nas análises de reologia. A Dra. Leila A. Chiavacci pela amizade e ajuda nas análises de SAXS. A todos os professores do Departamento de Fármacos e Medicamentos da UNESP, que contribuíram para minha formação, em especial aos professores Drs. Anselmo Gomes de Oliveira, Raul César Evangelista, Luis Vitor Silva do Sacramento e as professoras Dras. Hérida Salgado, Maria Palmira Daflon Gremião e Ana Dóris de Castro, pela amizade e incentivo. Ás funcionárias da seção de Pós – Graduação; Cláudia, Laura e Sônia, pelo auxílio e atenção em todos os momentos. Aos técnicos do Departamento de Fármacos e Medicamentos da UNESP, em particular Fátima e Margareth pela amizade, companheirismo e profissionalismo. A todos os funcionários da biblioteca de FCFar - UNESP, especialmente Moacir, Max, Irani, Lucas e Ana Cristina pela atenção e seriedade com que desempenham seu trabalho. A CAPES pela concessão da bolsa de mestrado. Aos amigos que encontrei e pude conviver durante esse tempo: Maria Carolina, Rubiana, Traudi, Cristina, Helen, Luana, Danielle, Daniela, Nelson, Andréia, Arnóbio, Ketylin, Gisele, Thiago, Gustavo, Priscileila, Fabrício, Priscila, Juliane, Thais, Vanessa, Suzana, Marlus, Celso, Gabriela, Tina, Thalita, Kelle, Cristiane, Flávia , Velma e Ednir. As minhas amigas de república Gabriela, Maria Carolina, Traudi, Mariana, Alianda, Priscila e Nicole, obrigada por carinho e pela paciência. A minha família maravilhosa e ao meu namorado Jair, pelo companheirismo e paciência durante todo tempo. A amiga Ana Cristina, pela nossa amizade. A Deus, por tudo e por mais esta oportunidade, Muito obrigada !! ÍNDICE Resumo ..............................................................................................................................i Abstract............................................................................................................................iii Lista de abreviaturas.........................................................................................................iv Lista de figuras.................................................................................................................vi Lista de tabelas ...............................................................................................................xii 1. INTRODUÇÃO.............................................................................................................1 2. OBJETIVOS................................................................................................................29 3. MATERIAL E MÉTODOS 3.1.1 Material................................................................................................................30 3.1.2 Equipamentos......................................................................................................31 3.2 Métodos..................................................................................................................32 3.2.1 Caracterização da eritromicina.........................................................................32 3.2.1.1 Espectroscopia de infravermelho............................................................32 3.2.2. Construção do diagrama de fases....................................................................32 3.2.3 Formulações escolhidas....................................................................................33 3.2.4 Incorporação da ER nos sistemas.....................................................................34 3.2.5 Caracterização física.........................................................................................34 3.2.5.1 Índice de refração ....................................................................................35 3.2.5.2 Condutividade eletrolítica........................................................................35 3.2.5.3 Microscopia de luz polarizada.................................................................35 3.2.5.4 Reologia...................................................................................................36 3.2.5.5 Espalhamento de raios-X a baixo ângulo................................................37 3.2.6 Estabilidade física..............................................................................................37 3.2.6.1 Teste de prateleira e Estabilidade preliminar das formulações...............37 3.2.7. Metodologia analítica para CLAE.........................................................................38 3.2.7.1 Condições cromatográficas......................................................................38 3.2.7.2 Validação da metodologia.......................................................................38 3.2.7.3 Curva analítica.........................................................................................41 3.2.8 Estabilidade da química da eritromicina no sistema..............................................42 3.2.9 Coeficiente de partição...........................................................................................42 3.2.10 Variação do tempo de retenção da ER.................................................................43 3.2.10.1 Fase móvel ............................................................................................43 3.2.10.2 Constante dielétrica...............................................................................43 3.32.11 Liberação in vitro.............................................................................................44 4. RESULTADOS E DISCUSSÃO 4.1 Caracterização da eritromicina................................................................................47 4.1.1 Espectroscopia de infravermelho...............................................................47 4.2 Construção do diagrama de fases............................................................................49 4.3 Incorporação da ER nos sistemas............................................................................53 4.4 Caracterização física................................................................................................54 4.4.1 Índice de refração .......................................................................................54 4.4.2 Condutividade eletrolítica...........................................................................55 4.4.3 Reologia......................................................................................................57 4.4.4 Microscopia de luz polarizada....................................................................64 4.4.5 Espalhamento de raios-X a baixo ângulo...................................................67 4.5 Estabilidade física..................................................................................................72 4.5.1 Teste de prateleira e Estabilidade preliminar das formulações..................72 4.6 Metodologia analítica para CLAE..........................................................................87 4.6.1 Variação do tempo de retenção..................................................................87 4.6.2 Constante dielétrica ...................................................................................88 4.6.3 Validação da metodologia.........................................................................89 4.7 Estabilidade da eritromicina nos sistemas.................................................................93 4.8 Coeficiente de partição..............................................................................................97 4.9 Perfil de solubilidade da ER......................................................................................98 4.9.1 Perfil de liberação da ER in vitro................................................................98 5. CONCLUSÕES.........................................................................................................101 6. REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS.....................................................................103 i RESUMO A acne é uma patologia que acomete a pele e ocorre da metade ao final da adolescência, afetando ambos os sexos. Acredita-se que a acne vulgaris ocorra em adolescentes em decorrência das variações hormonais fisiológicas e das alterações na maturação dos folículos pilosos. A eritromicina é indicada como fármaco de primeira escolha no tratamento da acne e outras doenças infecciosas que afetam a pele. O objetivo desse trabalho foi desenvolver formulações alternativas para a administração cutânea de eritromicina (ER), formadas através da mistura de adipato de butila, álcool etoxilado e propoxilado e água, que fossem agradáveis no momento do uso e o menos irritante possível para a pele. Obtiveram-se sistemas de diferentes formas de estruturação, como emulsão, microemulsão, sistemas de transição de fase e sistemas líquido - cristalinos. Esse último escolhido para um estudo mais completo por apresentar menor quantidade de fase oleosa e por ser um sistema dotado de propriedade tixotrópica e boa aderência a pele, que se deforma durante a aplicação e recuperam a viscosidade inicial no momento em que se encerra a aplicação, evitando que o produto escorra. Os sistema foram caracterizados pelo estudo reológico, medidas de índice de refração, condutividade, microscopia de luz polarizada e espalhamento de raio-X a baixo ângulo, que revelaram, sucessivamente sistemas plásticos com tixotropia, com domínio polar e estruturação interna do tipo hexagonal relacionada a interação das três fases constituintes. A estabilidade do fármaco no sistema escolhido deu-se através de exposição das formulações as temperaturas de 25 e 60°C, onde apresentaram diminuição de aproximadamente 6,25% e 81,25% de ER respectivamente, nos primeiros 29 dias. O ensaio de liberação, in vitro, realizado para verificar se os sistemas ii prolongam o tempo de liberação da eritromicina, demonstrou um perfil mais lento de liberação do fármaco contido nos cristais-líquidos, quando comparado ao fármaco livre. iii ABSTRACT The acne is a pathology that affects the skin and occurs in the half to the end of the adolescence, affecting both the sexs. One gives credit that the vulgar acne occurs in adolescents in result of the physiological hormonal variations and of the alterations in the maturation of the pilosos foliculus. The erythromycin is indicated as drug of first choice in the treatment of the acne and other illnesses that affect the skin. The objective of this work was to develop alternative formulations for the cutaneous administration of erythromycin (ER), formed through the mixture of butil adipate, propoxyl and ethoxyl cethyl alcohols and water, that was pleasant at the moment of the use and possible, less irritating to skin. Systems of different forms of structured had been gotten, like emulsion, microemulsion, systems of phase transition and liquid - crystalline systems. This last one chosen for containing least amount of oily phase, being thus, less greasy and for this systems being that, if deform during the application and recovery initial viscosity at the moment where stop the application, preventing that the product drains. The system was characterized by the rheological study, measures of refractive index, conductivity, microscopy of polarized light and small-angle X-ray scattering, that had discovered, successively plastic systems with thixotropy, with polar domain and hexagonal internal structured related the interaction of the three constituent phases. The stability of the drug in the chosen system gave through exposition of the formulations at 2 different temperatures, environment and 60 °C, they had presented reduction of 6.25% and 81.25% of ER approximately respectively, in first the 29 days. The in vitro release assay was realized to verify if these systems are able to prolong the time release of the erythromycin. They demonstrated a slower profile of the drug contained in the liquid crystals, when compared with the free drug. iv ABREVIATURAS SMT / SLC – Sistema microestruturado/ sistema líquido-cristalino SME– Sistema microemulsionado STF – Sistema de transição de fase SE – Sistema emulsionado SF – Separação de fases ER – Eritromicina CV – Coeficiente de variação IR – Índice de refração F1- Formulação 1 F2 – Formulação 2 F3 – Formulação 3 F4 – Formulação 4 RVL – Região viscoelastica linear G – Módulo de rigidez de sólidos J – Compliância CL - Cristal líquido q- Vetor de espalhamento U.A. –Unidades arbitrárias LNLS - Laboratório Nacional de Luz Sincroton ACN - Acetonitrila K- Coeficiente de partição εεεε - Constante dielétrica BOH - Álcool butílico terciário v FM - Fase móvel RCF – força centrifuga relativa LD - Limite de detecção LQ - Limite de quantificação vi LISTA DE FIGURAS Figura 1: Anatomia da pele.............................................................................................2 Figura 2: Adaptação de esquema de ilustração dos caminhos da permeação de fármacos através do estrato córneo..................................................................................................3 Figura 3: Evolução do processo de inflamatório do folículo pilo-sebáceo; a) folículo normal; b) ceratina ocluindo a glândula, comedão; c) início da inflamação; d) processo inflamatório em grau elevado e e) rompimento da parede folicular................................6 Figura 4: Fórmula estrutural da eritromicina.................................................................10 Figura 5: Fórmula do PPG-5-Ceteth-2...........................................................................13 Figura 6: Fórmula estrutural do adipato de dibutila.......................................................13 Figura 7: A) micela normal e reversa; B) microemulsão O/A; C) fase lamelar; D) fase hexagonal e hexagonal reversa e E) fase cúbica..............................................................18 Figura 8: Texturas líquido-cristalinas típicas, observadas em um microscópio óptico de luz polarizada. A- nemática; B- colestérica; C- esmética................................................21 Figura 9: Vários tipos de comportamento de fluxo........................................................25 Figura 10: Perfis de curvas reológicas para líquidos newtonianos, sólidos hookeanos e materiais viscoelásticos...................................................................................................27 Figura 11: Gráfico de fluência e relaxação. Dentre os corpos viscoelasticos, eles podem ser classificados durante a recuperação em: mais elásticos (ou seja, sólido viscoelastico) ou mais viscosos (líquidos viscoelasticos)......................................................................28 vii Figura 12: Diagrama de fases referente as formulações iniciais de onde partiram as adições de água purificada. As linhas (...) representam à fase aquosa, as linhas (__) a fase oleosa e as linhas (---) a fase tensoativa...................................................................33 Figura 13: Esquema de célula de difusão (à esquerda), adaptada ao equipamento de dissolução (a direita). (a) dispositivo de agitação do meio receptor, (b) abertura para coleta e reposição do meio, (c) orifício de colocação do tubo com a membrana............46 Figura 14: Espectro da eritromicina na região do infravermelho. Os números referem- se a bandas não encontradas no espectro de referência, e as letras, referem-se às bandas indexadas em comum entre os espectros.........................................................................48 Figura 15: Espectro de infravermelho de referência da eritromicina. As letras das bandas indexadas estão referidas entre parênteses no texto. ..........................................49 Figura 16: Diagrama de fases com as regiões de cada sistema. SME- sistema microemulsionado, SMT- sistema microestruturado, STF- sistema de transição de fases, SE- sistema emulsionado, SF- separação de fases..........................................................51 Figura 17: A- separação de fases, B- microemulsão, C- sistema microestruturado (liquido - cristalino), D- sistema de transição de fases e E- emulsão..............................52 Figura 18: Separação de fases após repouso.................................................................52 Figura 19: Sistema emulsionado após repouso..............................................................52 Figura 20: Diagrama com as formulações selecionadas................................................53 Figura 21: Representação gráfica do índice de refração................................................55 Figura 22: Efeito da variação da fase aquosa nos valores de condutividade.................56 Figura 23: Representação gráfica da relação entre tensão de cisalhamento e velocidade de cisalhamento do sistema F2 a 25 e 37° C..................................................................58 viii Figura 24: Representação gráfica da relação entre tensão de cisalhamento em função da velocidade de cisalhamento do sistema F3 a 25 e 37° C...............................................58 Figura 25: Representação gráfica da relação entre tensão de cisalhamento e velocidade de cisalhamento do sistema F4 a 25 e 37° C..................................................................59 Figura 26: Representação gráfica da relação entre viscosidade e velocidade de cisalhamento do sistema F2 a 25 °C (A) e 37° C (B), respectivamente..........................60 Figura 27: Representação gráfica da relação entre viscosidade e velocidade de cisalhamento do sistema F2 a 25 °C (A) e 37° C (B), respectivamente..........................60 Figura 28: Representação gráfica da relação entre viscosidade e velocidade de cisalhamento do sistema F2 a 25 °C (A) e 37° C (B), respectivamente..........................61 Figura 29: Viscosidade comparativa entre as formulações F2, F3 e F4, a 25 e 37°C.................................................................................................................................62 Figura 30: Curvas de fluência e relaxação das formulações F2, F3 e F4.......................63 Figura 31: Fotomicrografias do sistema F1 em aumento de 20 X, as setas indicam aparecimento de estrias; A) fase hexagonal, B) fase hexagonal em sistema contendo ER....................................................................................................................................65 Figura 32: Fotomicrografias do sistema F2 em aumento de 20 X, as setas indicam aparecimento de estrias; A) fase hexagonal, B) mistura de fases lamelar e hexagonal em sistema contendo ER.......................................................................................................66 Figura 33: Fotomicrografias do sistema F3 em aumento de 20 X, as setas indicam aparecimento de estrias; A) fase hexagonal, B) fase hexagonal em sistema contendo ER....................................................................................................................................66 ix Figura 34: Fotomicrografias do sistema F4 em aumento de 20 X e 10 X respectivamente, as setas indicam aparecimento de estrias; A) fase hexagonal, B) fase hexagonal em sistema contendo ER................................................................................67 Figura 35: Comparação estrutural entre as formulações F2, F3 e F4............................69 Figura 36: Evolução estrutural das formulações F2 e F2 com ER.................................70 Figura 37: Evolução estrutural das formulações F3 e F3 com ER.................................70 Figura 38: Evolução estrutural das formulações F4 e F4 com ER.................................71 Figura 39: Relação entre tensão de cisalhamento e a velocidade de cisalhamento após 45 dias em estufa sob diferentes temperaturas (25 °C e 60 °C) para as formulações F2 (A), F3 (B) e F4 (C).........................................................................................................76 Figura 40: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F2 sem o fármaco após 45 dias em estufas sob diferentes temperaturas, ambiente (25 °C) e 60 °C.........................76 Figura 41: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F3 sem o fármaco após 45 dias em estufas sob diferentes temperaturas, ambiente (25 °C) e 60 °C.........................77 Figura 42: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F4 sem o fármaco após 45 dias em estufas sob diferentes temperaturas, ambiente (25 °C) e 60 °C.........................77 Figura 43: Relação entre tensão de cisalhamento e a velocidade de cisalhamento após 90 dias em estufa sob diferentes temperaturas (25 °C e 60 °C) para as formulações F2 (A), F3 (B) e F4 (C).........................................................................................................78 Figura 44: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F2 sem o fármaco após 90 dias em estufas sob diferentes temperaturas, ambiente (25 °C) e 60 °C.........................78 Figura 45: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F3 sem o fármaco após 90 dias em estufas sob diferentes temperaturas, ambiente (25 °C) e 60 °C.........................79 x Figura 46: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F4 sem o fármaco após 90 dias em estufas sob diferentes temperaturas, ambiente (25 °C) e 60 °C.........................79 Figura 47: Reogramas de escoamento e, fluência e relaxação da formulação F2 contendo o fármaco após o preparo sob temperatura ambiente (25 °C)..........................80 Figura 48: Reogramas de escoamento e, fluência e relaxação da formulação F3 contendo o fármaco após o preparo sob temperatura ambiente (25 °C)..........................80 Figura 49: Reogramas de escoamento e, fluência e relaxação da formulação F4 contendo o fármaco após o preparo sob temperatura ambiente (25 °C)..........................81 Figura 50: Reogramas de escoamento da formulação F2, F3 e F4 contendo o fármaco após 45 dias em estufas à temperaturas de 25 ° (ambiente) e 60 °C...............................81 Figura 51: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F2 contendo o fármaco após 45 dias em estufas à temperaturas de 25 ° (ambiente) e 60 °C...............................82 Figura 52: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F3 contendo o fármaco após 45 dias em estufas à temperaturas de25 ° (ambiente) e 60 °C................................82 Figura 53: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F4 contendo o fármaco após 45 dias em estufas à temperaturas de25 ° (ambiente) e 60 °C................................83 Figura 54: Reogramas de escoamento da formulação F2, F3 e F4 contendo o fármaco após 90 dias em estufas à temperaturas de 25 ° (ambiente) e 60 °C...............................83 Figura 55: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F2 contendo o fármaco após 90 dias em estufas à temperaturas de 25 ° (ambiente) e 60 °C...............................84 Figura 56: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F3 contendo o fármaco após 90 dias em estufas à temperaturas de 25 ° (ambiente) e 60 °C...............................84 xi Figura 57: Reogramas de fluência e relaxação da formulação F4 contendo o fármaco após 90 dias em estufas à temperaturas de 25° (ambiente) e 60 °C................................85 Figura 58: Fotomicrografia do campo escuro característico de isotropia......................86 Figura 59: Tempo de retenção da eritromicina (em minutos) em função da proporção de álcool butílico terciário presente na solução A da fase móvel...................................88 Figura 60: Curva analítica da eritromicina obtida em 215 nm, em fase móvel: acetonitrila álcool butílico terciário e fase aquosa (3:20:77)..........................................90 Figura 61: (A) cromatograma da fase móvel (variação: acetonitrila 3%, álcool butílico terciário 20% e fase aquosa 77%), (B) cromatograma do sistema micro estruturado sem o fármaco.........................................................................................................................91 Figura 62: Cromatograma da solução padrão de eritromicina.......................................92 Figura 63: Gráfico referente à estabilidade da ER nas formulações F2, submetida à temperatura de 25 °C e 60 °C.........................................................................................95 Figura 64: Gráfico referente à estabilidade da ER nas formulações F3, submetida à temperatura de 25 °C e 60 °C.........................................................................................95 Figura 65: Gráfico referente à estabilidade da ER nas formulações F4, submetida à temperatura de 25 °C e 60 °C.........................................................................................96 Figura 66: Mudança de coloração dos sistemas após exposição à temperatura constante de 60ºC. ..........................................................................................................................97 Figura 67: Curva analítica da ER em tampão fosfato pH 6,8........................................98 Figura 68: Perfil de liberação in vitro dos CL contendo ER........................................100 xii LISTA DE TABELAS Tabela 1: Tipos de acne e seu grau de identificação......................................................8 Tabela 2: Formulações selecionadas e suas respectivas porcentagens de cada componente da formulação e classificações...................................................................34 Tabela 3: Constantes dielétrica dos solventes utilizados...............................................44 Tabela 4: Valores médios do índice de refração de cada formulação, em triplicata a 20°C...............................................................................................................................55 Tabela 5: Valores dos parâmetros obtidos a partir das curvas de SAXS......................71 Tabela 6: Valores de pH das amostras sob as temperaturas; 25, 45 e a 60°C, respectivamente...............................................................................................................74 Tabela 7: Valores da constante dielétrica e temperatura do estudo................................89 Tabela 8: Relação das concentrações de ER em fase móvel e área do pico obtida .......90 Tabela 9: Valores de recuperação encontrados..............................................................93 Karen Rossit Sotiro 1 1. INTRODUÇÃO Muitos trabalhos têm sido realizados no sentido de esclarecer cada vez mais a permeabilidade cutânea das substâncias ativas. Devido à estrutura e composição lipídica da epiderme, mais especificamente do estrato córneo, existe uma grande dificuldade na difusão dos fármacos através da pele, principalmente daqueles com natureza hidrofílica. Para que se possa desenvolver adequadamente um produto de uso tópico bem como compreender sua permeabilidade cutânea é preciso, primeiramente, conhecer muito bem a pele humana (LEONARDI, 2004). A pele cobre uma área de aproximadamente 2m² e promove o contato entre o corpo e o ambiente externo impedindo a perda de água por evaporação e o ingresso de materiais estranhos e atritos, agindo como uma barreira dupla (JUNQUEIRA et al. 1999, SUHONEN et al., 1999; HARDGRAFT, 2001). Essencialmente composta por duas camadas, uma camada epitelial de origem ectodérmica mais externa e não vascularizada chamada epiderme (epitélio estratificado pavimentoso queratinizado) e outra mais interna de origem mesodérmica, a derme, que possui um rico suplemento de capilares, glândulas sudoríparas e sebáceas, além de folículos pilosos (SUHONEN et al., 1999). Em continuidade com a derme esta a hipoderme, que, embora tenha a mesma origem da derme, não faz parte da pele, servindo de suporte e união com os órgãos subjacentes (figura 1). Através das suas terminações nervosas, a pele esta em comunicação constante com o ambiente e por meio de seus vasos, glândulas e tecido adiposo, colaboram na termorregulação do corpo (SUHONEN et al., 1999; LEONARDI, 2004). A camada superficial da epiderme, o estrato córneo, é formada por diversas camadas de células mortas (queratinócitos) firmadas em uma matriz lipídica (SUHONEN et al., 1999). Karen Rossit Sotiro 2 Durante a passagem da camada basal para o estrato córneo, as células sofrem queratinização, transformando células epiteliais em células mortas através desidratação celular com decomposição do citoplasma e núcleo, dando origem aos lipídios (LEONARDI, 2004). Esses lipídios conferem ao estrato córneo permeabilidade à água 1000 vezes menor que a maioria das membranas biológicas (SUHONEN et al., 1999). Essa impermeabilidade é considerada um problema, pois se estima que apenas uma pequena porcentagem de material ativo penetra através da pele quando aplicado topicamente (HARDGRAFT, 2001). Essas células sofrem esfoliação, ocorrendo dessa forma um deslocamento permanente e repetido de células, que da camada basal atingem gradualmente a superfície epidérmica, para se desprenderem já mortas. Essa diferenciação ocorre em torno de duas semanas para jovens e em torno de 37 dias para pessoas com mais de 50 anos (LEONARDI, 2004). Figura 1: Anatomia da pele (www.cnrs.fr) Poros Pêlo Camada córnea Músculo pilo eretor Músculo Glândula sudorípara Papila dérmica Derme Epiderme Hipoderme Glândula sebácea Veia Artéria Gordura subcutânea Vasos sanguíneos Karen Rossit Sotiro 3 Depois que uma molécula ativa atravessa o estrato córneo (espessura de 75 a 150 µm), não há outra barreira à difusão nas outras camadas da pele se a molécula não ficar retida ou metabolizada no caminho. A permeação de substâncias através da pele pode ocorrer por difusão da substância ativa através da epiderme intacta ou através dos apêndices da pele, como: folículos pilosos e glândulas sudoríparas. Esses caminhos pelos quais as moléculas podem atravessar o estrato córneo são: intercelular ou intracelular, transcelular e apendical ou transanexal, como pode ser observado na Figura 2 (ANSEL et al., 2000; HARDGRAFT, 2001). O caminho intercelular é o maior responsável pela permeação da maioria dos fármacos (SUHONEN et al., 1999), pois a substância ativa não tem que atravessar os queratinócitos, apenas difunde-se pelo meio intercelular, enquanto que o transcelular, a substância ativa não apenas difunde-se entre os lipídios como também atravessa os queratinócitos (LEONARDI, 2004). Enquanto que a via apendical, é rápida e direta, e o fármaco penetra cutaneamente pelo folículo pilosebáceo e poros (ABRAHAM et al.; 1995). Figura 2: Adaptação de esquema de ilustração dos caminhos da permeação de fármacos através do estrato córneo (ABRAHAM et al., 1995). Karen Rossit Sotiro 4 Melhoras na penetração cutânea se dão por agentes específicos chamados de promotores de penetração, que interagem com o estrato córneo, alterando sua resistência natural. São exemplos, dimetil-sufóxido (DMSO), ácido lático, ácido oléico, ácido salicílico, uréia, solventes orgânicos (etanol, metanol e acetona) e os tensoativos (SUHONEN et al., 1999; LEONARDI, 2004), os quais são farmacologicamente inativos, mas podem interagir com o estrato córneo quando incorporados em formulações de uso tópico, reduzindo a resistência da pele para a difusão do fármaco. Desse modo, a água, de natureza polar, interage com as cabeças polares do tensoativo na bicamada lipídica, permitindo a entrada de substâncias polares, devido ao intumescimento dessas cabeças, induzindo alterações na estrutura do estrato córneo, através da hidratação. A presença do álcool também induz modificações na região de grupos de cabeças polares das bicamadas lipídicas (SUHONEN et al., 1999). A penetração através da pele e permeação do fármaco após aplicação tópica, depende também das propriedades físico-químicas de suas moléculas, como também da função da pele como uma barreira de transporte que pode ser influenciada pela aplicação da formulação (MÜLLER et al., 2003). O veículo empregado no transporte do fármaco interfere de maneira bastante significativa na penetração cutânea, pois controla a liberação da substância ativa, que é modulada pela interação físico-química do veículo com o fármaco, o qual deve ser primeiramente liberado para então permear a pele. Desse modo o fármaco deve apresentar maior atração físico-química com a pele do que com o veículo no qual é apresentado (ANSEL et al., 2000; LEONARDI, 2004). Outros meios para se aumentar à liberação do fármaco através da pele são modificações químicas, que transportam o fármaco como inativo (pró–fármaco), o qual Karen Rossit Sotiro 5 penetra sem dificuldade pela pele através de meios elétricos como iontoforese, eletroforese e aplicação de ultra-som (SUHONEN et al., 1999; ROMÁN et al., 2004). Uma das patologias a qual se pode aplicar veículos, capazes de permanecer em contato com a pele por mais tempo, é a Acne vulgaris. Patologia que acomete a pele, a acne é praticamente universal da metade ao final da adolescência, afeta ambos os sexos na puberdade, embora o sexo masculino tenha tendência a apresentar uma doença mais grave (SAMPAIO, 2001, DEGITZ et al.; 2007), devido à produção de testosterona, hormônio responsável pelo crescimento de pêlos pelo corpo, tanto em homens como em mulheres, aumentado rapidamente na idade da puberdade, entre 10 a 13 anos e regredindo em torno dos 20-25 anos. Em alguns pacientes a acne persiste na quarta ou quinta década da vida, chamada de acne persistente (GUYTON et al., 1997, DEGITZ et al.; 2007). A testosterona também é responsável pelo aumento da espessura da pele e aumento da taxa de secreção de sebo pelas glândulas sebáceas (GUYTON et al., 1997; ZOUBOULIS, 2004). Acredita-se que a acne vulgaris ocorra em adolescentes em decorrência dessas variações hormonais fisiológicas e das alterações na maturação dos folículos pilosos, localizando-se principalmente na face e nas costas, onde a maioria das glândulas sebáceas são encontradas, isto é, regiões onde a acne ocorre preferencialmente. A característica desses folículos é ter uma glândula sebácea hipertrofiada e um pêlo fino-rudimentar (SAMPAIO, 2001, DEGITZ et al.; 2007). Conforme ilustrado na figura 3; A acne é observada em todas as raças, porém é tida como mais discreta em pessoas de origem asiática. Karen Rossit Sotiro 6 Figura 3: Evolução do processo inflamatório do folículo pilo-sebáceo; a) folículo normal; b) ceratina ocluindo a glândula, comedão; c) início da inflamação; d) processo inflamatório em grau elevado e e) rompimento da parede folicular (adaptado de DEGITZ et al.; 2007; www.sante-naturelle.info/acne). O conceito atual é que a acne resulta da interação de diversos fatores patogênicos. Entre estes a elevada produção hormonal determinando a seborréia, comedões foliculares (fechados e abertos) da hiperqueratose, mudanças na flora microbiana e processos de inflamação imunológica (DEGITZ et al.; 2007). Assim, a acne é uma patologia que afeta o folículo pilo-sebáceo, na qual participam concomitantemente fatores genéticos, hiperqueratinização folicular, presença da bactéria Propionibacterium acnes e aumento da produção sebácea, influenciada por fatores hormonais. Pode ser classificada em acne primária (vulgar) ou secundária (cosmética, medicamentosa, solar, etc). No primeiro caso, trata-se da acne de adolescentes e adultos jovens, onde a predisposição genética, estimulada pelo início da produção hormonal, favorece o desenvolvimento das lesões na pele. No caso da acne secundária, certos medicamentos como corticóides e vitaminas do complexo B têm como Karen Rossit Sotiro 7 efeito colateral, o aparecimento da acne. Em relação à acne cosmética, matérias primas adicionadas aos produtos com tendência comedogênica (como exemplos: óleo mineral, manteiga de cacau, miristato de isopropila) são as responsáveis (LEONARDI, 2004). As manifestações clínicas da acne podem ser induzidas ou exacerbadas por fármacos (corticosteróides, hormônio adrenocorticotrópico, testosterona, gonadotropinas, anticoncepcionais orais, trimetadiona, iodetos e brometos), contatos ocupacionais (óleos, hidrocarbonetos clorados e alcatrões) e condições oclusivas, como o uso de roupas pesadas em climas tropicais. Algumas famílias parecem ser particularmente afetadas pela acne, sugerindo também um fator hereditário (ROBBINS, 2000). Este fator inclui o gene citocromo P-450-1A1 e a hidroxilase do esteroide 21, que influenciam a produção do androgênio na glândula adrenal (DEGITZ et al.; 2007). Tanto a acne primária, como a secundária podem ser subdivididas em 2 tipos; não inflamatório e inflamatório, embora ambas possam coexistir. O primeiro consiste em comedões abertos e fechados. Os comedões abertos (lesão inicial) são pequenas pápulas foliculares contendo uma rolha central preta de ceratina. Essa cor resulta da oxidação do pigmento melanina. Os comedões fechados são pápulas foliculares sem rolha central visível. Como a rolha de ceratina é retida abaixo da superfície epidérmica, essas lesões constituem fontes potenciais de ruptura folicular e inflamação. A acne inflamatória caracteriza-se por pápulas eritematosas, nódulos e pústulas. As variantes graves resultam em formação de edemas fistulosos e cicatrizes, além dos problemas emocionais decorrentes das lesões (ROBBINS, 2000). O quadro clínico é polimorfo, caracterizado por comedões, pápulas, pústulas, nódulos e abscessos localizados na face, ombros e porção superior do tórax, geralmente associado com seborréia. Consoante ao número e ao tipo de lesões, define-se as formas clínicas ou graus de Acne vulgar (SAMPAIO, 2001); conforme tabela 1; Karen Rossit Sotiro 8 Tabela 1: Tipos de acne e seu grau de identificação (SAMPAIO, 2001). TIPO DE ACNE IDENTIFICAÇÃO Acne não-inflamatória Acne comedônica ou Acne grau I Acne inflamatória Acne pápulo-pustulosa ou Acne grau II Acne nódulo-abscedente ou Acne grau III Acne conglobata ou Acne grau IV Acne fulminante ou Acne grau V A Propionibacterium acnes pertence ao grupo de bactérias da flora resistente da pele humana, sendo predominante nos folículos pilosos, preferindo assim condições anaeróbicas e colonizando regiões preferencialmente com grande produção de sebo. A seborréia e a hiperqueratose folicular promovem obviamente a proliferação da propionibactéria, tornando- se um ambiente propício. Uma grande concentração dessa bactéria é encontrada em indivíduos entre 11 e 20 anos de idade acometidos pela acne em relação aos indivíduos com a mesma idade sem a doença. O papel da propionibactéria na acne é decorrente a sua intensa proliferação, resultando no aumento do metabolismo bacteriano com ação inflamatória, decorrente de ácidos graxos livres liberados através da ação de lípases bacterianas (DEGITZ et al.; 2007). O tratamento tópico da acne consiste na combinação de uma série de fármacos, entre eles, os antibióticos, que diminuem o Propionibacterium acnes; como a eritromicina (2 – 4 %) (LEONARDI, 2004). A terapia antimicrobiana com agentes tópicos e sistêmicos é utilizada há muitos anos como tratamento da acne. Os antibióticos de uso tópico são geralmente indicados para pacientes que apresentam quadros de acne inflamatória de leve a moderada. Dentre os Karen Rossit Sotiro 9 antibióticos de escolha estão os macrolídeos, em especial a eritromicina (LANGNER et al.. 2007). A eritromicina é um antibiótico eficaz descoberto em 1952 por McGuire. Oriunda da cepa de Streptomyces erythreus é eficaz em infecções por cocos gram–positivos. Denominada como antibiótico macrolídeo porque contém um anel lactônico grande ao qual se ligam um ou mais açúcares desóxi, conforme Figura 4; (GOODMAN, 1996; SCHEINFELD et al, 2003; RESENDE, 2004). Tem seu mecanismo de ação interferindo com a síntese protéica dos microrganismos susceptíveis, ligando-se reversivelmente à subunidade 50S dos ribossomos dessa bactéria, bloqueando as reações de transpeptidase e inibindo a síntese protéica, portanto o crescimento celular (SCHEINFELD at al, 2003; MARTINDALE, 1999; RESENDE, 2004; BRITISH PHARM., 2001; REMINGTON, 2000; TAVARES, 1996). Desse modo, pode-se dizer que a eritromicina é bacteriostática, ou seja, inibe o crescimento do microrganismo, mas também demonstrou-se bactericida, promovendo em concentrações elevadas a morte de diversos microrganismos sensíveis. O antibiótico é mais eficaz in vitro contra cocos gram-positivos aeróbicos e bacilos, apresenta espectro de ação relativamente amplo, sendo ativo também contra alguns gram-negativos, actinomicetos, micoplasmas, espiriquetas, clamídias, riquétsias e certas micobactérias atípicas (MARTINDALE, 1999; KOROLKOVAS, 2001; RESENDE, 2004; REMINGTON, 2000). (GOODMAN, 1996). A eritromicina consiste em mistura que contém não menos de 90% de eritromicina A, cerca de 10% de eritromicina B e traços de eritromicina C. A somatória das porcentagens de eritromicina A, B e C não é menor que 90% e não é maior que 100,5% da base anidra (FARMACOPÉIA BRASILEIRA,1988; TAVARES, 1996; USP 24, 2000; BRITISH PHARM., 2001). Karen Rossit Sotiro 10 Devendo ser usada topicamente ou oralmente no tratamento da acne, é usada como tratamento de primeira escolha para acne de primeiro grau e conjuntamente com outros fármacos no tratamento da acne severa (MARTINDALE, 1999). A eritromicina tem espectro de ação relativamente amplo, sendo ativa contra a maioria dos germes gram-positivos e alguns gram-negativos, actinomicetos, micoplasmas, espiriquetas, clamídias, riquétsias e certas micobactérias atípicas (MARTINDALE, 1999; KOROLKOVAS, 2001; RESENDE, 2004; REMINGTON, 2000). Sua ação é aumentada em pH neutro para moderadamente alcalino (7,5 a 10,5) principalmente contra espécies gram–negativas (MARTINDALE, 1999; RESENDE, 2004). A eritromicina é empregada como base livre ou na forma de sal (estearato) ou ésteres (estolato e etilsuccinato). Estearato e etilsuccinato são formas latentes da eritromicina. A base é extremamente amarga e pouco solúvel em água, mas é solúvel em metanol, clorofórmio, éter e álcool (USP 24, 2000; MARTINDALE, 1999; BRITISH PHARM., 2001; TAVARES, 1996; FARMACOPÉIA BRASILEIRA, 1988). Figura 4: Fórmula estrutural da eritromicina (GOODMAN, 1996). Karen Rossit Sotiro 11 Pacientes intolerantes a uma forma de eritromicina podem ser intolerantes também as outras formas. A eritromicina é o antibiótico indicado no tratamento de infecções por clamídias, de ferimentos por queimadura, oculares da pele e do tecido mole, do trato geniturinário, tratamento da Acne vulgaris, profilaxia de conjuntivite neonatal, difteria, endocardite bacteriana, febre reumática, oftalmia do recém–nascido, e preparação pré– operatória do intestino (KOROLKOVAS, 2001). A proposta desse projeto é veicular a eritromicina base, indicada como fármaco de primeira escolha no tratamento da acne, em sistemas formados por álcool cetílico etoxilado 20 OE e propoxilado 5 OP. Em virtude do seu poder de diminuir tensões superficiais, moléculas anfifílicas também são chamadas de tensoativos. Em sua estrutura, compostos anfifílicos são caracterizados por possuírem na mesma molécula dois grupos que diferem grandemente em suas propriedades de solubilidade. Uma parte da molécula é hidrofílica, altamente solúvel em água ou outros solventes polares; enquanto que a outra parte é hidrofóbica, altamente solúvel em hidrocarbonetos ou solventes não-polares, com uma região polar chamada de cabeça polar e outro grupo, formado por uma cadeia de moléculas lipofílicas, chamada de cauda apolar (hidrofóbica) (BECHTOLD, 2005). Os tensoativos permitem incorporação de fármacos hidrofílicos em sua região polar e fármacos lipofílicos em sua região apolar (LAWRENCE e REES, 2000). Esse comportamento das moléculas está diretamente relacionado ao meio em que elas se encontram. Se estiverem em meio polar, tendem a se associar em agregados que maximizem o contato da cabeça polar e o meio e minimizem o contato entre a parte hidrofóbica e o meio. Em solventes polares, as moléculas anfifílicas posicionam as cabeças polares para a parte mais externa do agregado e direcionam a cadeia apolar para a região interna. A este sistema dá-se o nome de micelas. Se as mesmas moléculas estão em um meio apolar, surge a formação de micelas reversas, nas Karen Rossit Sotiro 12 quais as cabeças polares se posicionam na parte interna da micela e as cadeias apolares tendem a maximizar o contato com o solvente apolar (MACIAN et al., 1996 apud LONGO). Os tensoativos são classificados de acordo com a carga do grupo polar, podendo ser: catiônicos, quando possuem carga positiva; aniônicos, quando a carga é negativa; neutros ou não iônicos, quando não possuem carga; e zwiteriônicos, quando a carga líquida é nula em virtude de possuírem dois grupos na cabeça polar, um positivo e outro negativo (LAWRENCE e REES, 2000). Sistemas de liberação de fármacos estabilizados com tensoativos não-iônicos são, geralmente, menos afetados pela presença de aditivos (tampão, eletrólitos e conservantes) e mudanças de pH que os tensoativos iônicos, além de serem mais seguros e menos susceptíveis em causar irritação (URBAN, 2004). Tensoativos não iônicos, como a classe dos polioxietileno n-alquil éteres, são capazes de formar sistemas estáveis sem a necessidade da adição de co-tensoativo, isso é importante, pois reduzem a complexidade dos sistemas e a possibilidade de toxicidade (LAWRENCE e REES, 2000). Produzido pela reação entre álcool cetílico com a mistura de óxido de etileno e óxido de propileno, o PPG-5-Ceteth-2, Figura 5, pode ser encontrado na literatura com o nome de álcool cetílico etoxilado 20 OE e propoxilado 5 OP ou nome comercial PROCETYL AWS®. Apresenta-se como um líquido claro a levemente turvo, estável à variações de pH, hidrossolúvel e solúvel em álcool e não irritante. Possui um EHL 16 e em solução aquosa 3% um pH na faixa de 5,5-7,5 (CRODA DO BRASIL, 1994). Sua composição proporciona multifuncionalidades, assim é comumente empregado como tensoativo, emoliente, solubilizante de essências, umectantes, plastificantes e como agente molhante (WENNINGER, 1997; CRODA DO BRASIL, 1994). Karen Rossit Sotiro 13 Figura 5. Fórmula do PPG-5-Ceteth-2 (WENNINGER, 1997). Sendo, x em média 5 e y em média 20. Em formas farmacêuticas, a fase oleosa é um componente importante, quando se pretende incorporar fármacos lipofílicos. Em adição, favorecem a formação de sistemas estáveis como, microemulsionados e microestruturados, associando-se e penetrando nas moléculas do tensoativo, ou seja, no filme interfacial. Dependendo da natureza do óleo, em particular seu tamanho em relação à cadeia hidrofóbica do tensoativo, o óleo pode penetrar em extensões variadas nas caudas apolares do tensoativo na monocamada interfacial (LAWRENCE e REES, 2000; KREILGAARD, 2002; URBAN, 2004). O adipato de dibutila é um diéster de álcool butílico e ácido adípico, que apresenta a fórmula molecular C14 H26 O4 e fórmula estrutural ilustrada na Figura 6. Figura 6: Fórmula estrutural do adipato de dibutila (LONGO, 2006). O maior desafio para formulações tópicas é promover um aumento suficiente de permeação do fármaco na pele e determinar o caminho preciso pelo quais os compostos penetram através dela, e como isso pode ser afetado por formulações. (HARDGRAFT, 2001; KREILGAARD, 2002). Karen Rossit Sotiro 14 Segundo Hadgraft e Somers, a máxima permeação ocorre quando o medicamento combina solubilidade em lipídios e moderada solubilidade em água. Formas farmacêuticas convencionais quando usadas para veicular fármacos, geralmente não conseguem disponibilizar o fármaco em concentrações terapêuticas para o tecido alvo do organismo, uma vez que, entre o local onde deve exercer seu efeito farmacológico e o local da aplicação, existem tecidos normais do organismo que podem sofrer efeito potencialmente tóxico do fármaco (OLIVEIRA et al., 2004). Novos sistemas de liberação de fármacos vêem sendo muito estudados na área farmacêutica, porque podem proporcionar alternativas terapêuticas modernas á partir de fármacos já existentes, reduzindo efeitos colaterais e sendo mais eficientes farmacologicamente. Alem disso, esses sistemas podem proteger o fármaco da decomposição ou aceleração desses processos, bem como direcionar o fármaco para tecidos ou células específicas do organismo por se apresentarem como sistemas de liberação para fármacos do tipo reservatório (OLIVEIRA et al., 2004). Ao se misturar moléculas de tensoativo, seja em água ou óleo, formam-se soluções isotrópicas de agregados micelares que se auto-organizam, sem uma ordem orientacional, chamadas de microemulsões e emulsões. Com o aumento de uma das fases, pode-se formar uma variedade de tipos de sistemas, inclusive aqueles que se caracterizam principalmente pela presença de ordem orientacional e diferentes geometrias como os cristais líquidos (HYDE, 2001; EZRAHI et al.,1999). Sistemas microestruturados, sejam eles, microemulsões ou cristais líquidos, podem aumentar significantemente a solubilidade de antibióticos, funcionando como sistema reservatório que proporciona atividade terapêutica mais intensa e por tempo prolongado, além de um excelente meio de solubilização de compostos polares e apolares, suportando altas concentrações de fármaco nas fases aquosas e oleosas (OLIVEIRA et al., 2004; FORMARIZ Karen Rossit Sotiro 15 et al., 2004). De acordo com esses pesquisadores a liberação de substâncias ativas dissolvidas na fase interna desses sistemas é mais lenta em relação ao fármaco livre, mostrando a habilidade desse tipo de agregado como sistema reservatório que pode promover efeito prolongado, proporcionando liberação constante e regular numa faixa de tempo mais ampla, quando comparada ao controle. Um diagrama de fases descreve em que, condição experimental, é possível obter as microemulsões, regiões limites de transição de fases entre emulsão, fases separadas e microemulsões A/O e O/A (OLIVEIRA et al., 2004), além de outros tipos de sistemas microestruturados como os cristais líquidos. Portanto, uma variedade de fases internas com potencial para serem usadas como sistemas de liberação de fármacos, podem se formar quando se estrutura combinações de tensoativo, água e óleo em escala microscópica. Como ilustrado na figura 7; Formulações microestruturadas têm se mostrado superiores para ambas, liberação transdermal e dermal de compostos particularmente lipofílicos, mas também compostos hidrofílicos parecem beneficiar-se pela aplicação em sistemas microestruturados comparado a veículos convencionais como hidrogéis, emulsões e lipossomas (KREILGAARD, 2002). Hoar e Schulman, em 1945, definiram microemulsões, como formulações espontâneas translúcidas que ocorrem quando misturado óleo, água e tensoativo, combinado ou não com um co-tensoativo, geralmente um álcool de cadeia média. O tipo de emulsão produzida depende das propriedades do óleo, dos agentes tensoativos utilizados (ANSEL et al., 2000; SOLANS at al., 1997; KUMAR at al., 1999; MOULIK, et al., 1998) e da adição de um álcool de cadeia média, em proporções corretas, tornando o sistema transparente. (KUMAR et al.,1999). Desse modo, microemulsões são misturas isotrópicas, termodinamicamente estáveis e opticamente transparentes, um sistema bifásico de óleo em água, estabilizados em uma única Karen Rossit Sotiro 16 fase macroscopicamente homogênea e microscopicamente heterogênea com tensoativos (ANSEL et al.,2000; KUMAR et al., 1999; SOLANS et al.,1997; LAWRENCE et al.,2000; MOULIK et al.,1998). Portanto, os componentes tensoativos (diminuem a tensão interfacial ou superficial) encontram seu papel fundamental na estabilidade farmacotécnica de emulsões e microemulsões (OLIVEIRA e SCARPA, 2001). A formação da microemulsão geralmente envolve a combinação de 3 a 5 componentes, tais como; tensoativo, fase aquosa, fase oleosa, e quando necessário, o co- tensoativo, sendo que a orientação para sistemas O/A e A/O é dependente das propriedades físico–químicas do tensoativo, traduzidas principalmente pelo seu EHL (OLIVEIRA et al., 2004). Sabe-se qualitativamente que outros fatores determinam quando o sistema formado, é O/A ou A/O. Sendo muito comum que a fase com menor volume forme as gotículas e a de maior volume, a fase contínua. (LAWRENCE et al, 2000). As microemulsões diferem das emulsões comuns por serem opticamente transparentes, e principalmente pela estabilidade termodinâmica, pois, o sistema forma-se espontaneamente, quando a energia remanescente da interface é muito próxima a zero (OLIVEIRA e SCARPA, 2001). O equilíbrio hidrofílico-lipofílico (EHL) é usado para se conhecer a contribuição relativa dos fragmentos hidrofílicos e lipofílicos das moléculas do tensoativo. Geralmente tensoativos com EHL baixo (3-6) formam microemulsões A/O e tensoativos com EHL alto (8-18) formam microemulsões O/A. Tensoativos iônicos com EHL maior que 20, freqüentemente precisam de um co-tensoativo, para reduzir seu valor de EHL (LAWRENCE et al., 2000). As vantagens normalmente citadas para o uso de microemulsões na administração de medicamentos são: absorção oral mais rápida e eficiente do que as formas farmacêuticas Karen Rossit Sotiro 17 sólidas, melhor absorção transdérmica por maior difusão da substância ativa na pele, inigualável potencial de aplicação no desenvolvimento de eritrócitos artificiais e no direcionamento de medicamentos citotóxicos para células cancerosas (ANSEL et al., 2000). Outro sistema que tem merecido destaque na liberação de fármacos são os cristais líquidos. Os cristais líquidos são caracterizados por apresentarem um grau de ordem molecular intermediário, entre a ordem orientacional e posicional de longo alcance dos sólidos cristalinos e a desordem de longo alcance dos líquidos isotrópicos e gases (BECHTOLD, 2005). São substâncias que escoam como líquidos viscosos, mas suas moléculas ficam em um arranjo moderadamente ordenado, semelhante ao de um cristal (ATKINS e JONES, 2006), ou seja, um estágio intermediário da matéria. Por estarem classificados entre sólidos cristalinos e líquidos, também são chamados de mesofases, o prefixo meso significa intermediário (HYDE, 2001). O fato das suas moléculas estarem ordenadas torna os cristais líquidos anisotrópicos (ATKINS e JONES, 2006). Alguns cristais líquidos, como os de organização lamelar e hexagonal, apresentam anisotropias em suas propriedades ópticas, elétricas e magnéticas, semelhantes às de sólido cristalino anisotrópico, e propriedades mecânicas semelhantes aos líquidos, o que caracteriza sua fluidez. São classificados em mesofases essencialmente por causa de sua simetria e grau de ordenamento. Dessa forma, as mesofases líquido-cristalinas são caracterizadas pelos graus de liberdade que a molécula de cristal líquido apresenta, através de simetria de rotação e translação (BECHTOLD, 2005). As mesofases liotrópicas podem ser consideradas um arranjo molecular de micelas ordenadas, caracterizadas por domínios hidrofóbicos e hidrofílicos alternadamente. Conforme o aumento da concentração do tensoativo, diferentes formas líquido-cristalinas podem se formar, como hexagonais, lamelares e cúbicas (GABBOUN et al., 2001). Karen Rossit Sotiro 18 A forma lamelar (Lα) é formada por camadas paralelas e planares de bicamadas de tensoativo, alternadas por camadas de água, formando uma rede unidimensional. Enquanto que na forma hexagonal (HI ou Hα) ou hexagonal reversa (HII) os constituintes da formulação arranjam-se em formato de extensos cilindros, formando estruturas bidimensionais (WANG et al., 2006; EZRAHI et al., 1999; AMARAL et al., 1992). As formas cúbicas (I 1) apresentam estruturas mais organizadas e de difícil visualização através do microscópio óptico de luz polarizada, em relação as demais formas (WANG et al., 2006). Figura 7: A- micela normal e reversa; B- microemulsão O/A; C- fase lamelar; D- fase hexagonal e hexagonal reversa e E- fase cúbica (EZRAHI et al., 1999). Karen Rossit Sotiro 19 Os materiais que apresentam mesofases líquido-cristalinas se dividem em duas grandes categorias, de acordo com os parâmetros mais relevantes nas transições de fases; os termotrópicos e os liotrópicos (BECHTOLD, 2005). Os cristais líquidos (CLs) termotrópicos são constituídos por substâncias orgânicas, compostas por substâncias anisométricas (BECHTOLD, 2005). Ao serem aquecidos acima de uma temperatura característica tornam-se líquidos isotrópicos, porque as moléculas adquirem energia suficiente para vencer as atrações que restringem seus movimentos (ATKINS e JONES, 2006). Sua importância não está apenas nos aspectos de pesquisa básica, mas também por suas aplicações tecnológicas. Podem ser caracterizados pelo grau de desordem que sofrem com o aumento da temperatura (BECHTOLD, 2005). As primeiras observações de CLs liotrópicos foram feitas por Elliott e Ambrose em 1950, quando observaram a formação de uma fase líquida birrefringente. Estes CLs são sistemas químicos compostos por dois ou mais constituintes. São misturas de compostos anfifílicos em um solvente, em geral a água (BECHTOLD, 2005). Formam estruturas em camadas que resultam da ação de um solvente sobre um sólido ou um líquido, como soluções de detergentes e lipídeos em água (ATKINS e JONES, 2006). Nessa mistura liotrópica de moléculas anfifílicas, acima de uma concentração chamada concentração micelar crítica (CMC), formam-se aglomerados de moléculas que podem assumir formas e dimensões diferentes, chamadas micelas. Nas micelas, as cabeças hidrofóbicas estão localizadas em permanente contato com a água, enquanto que as caudas hidrofóbicas são mantidas no interior da micela sem contato com o solvente, e mesmo após o aparecimento de micelas, continua havendo moléculas anfifílicas dispersas na solução. Se utilizarmos solventes não-polares, serão formadas micelas reversas, onde a cauda fica na parte externa da micela em contato com o solvente e a cabeça polar no interior (BECHTOLD, 2005). Karen Rossit Sotiro 20 Investiga-se a estrutura micelar das fases liotrópicas e a sua similaridade com a membrana celular e estruturas do interior da célula (BECHTOLD, 2005), devido folhas espontaneamente formadas por tensoativo e água, nas quais as moléculas estão alinhadas em fila formando uma camada dupla (ATKINS e JONES, 2006). A classificação das mesofases, feita por Friedel em 1922 (Figura 8), de acordo com suas propriedades estruturais e ordem molecular, propôs a divisão em três classes tanto para liotrópicos como para termotrópicos; mesofase nemáticas, as moléculas ficam juntas, todas na mesma direção, mas não alinhadas. Do ponto de vista da estrutura molecular, possuem ordem orientacional de longo alcance onde as moléculas se orientam paralelas entre si; mesofase colestérica, as molécuals formam camadas ordenadas porem as camadas vizinhas tem moléculas em ângulos diferentes. A estrutura líquido-cristalina é formada por moléculas quirais. Mesofase esmética, as moléculas se alinham e formam camadas paralelas, apresentam ordem posicional ao longo de uma dimensão, onde as moléculas estão organizadas em camadas periódicas com ordem bem definida no interior das camadas, conforme Figura 8. Além destas fases líquido-cristalinas existem muitas outras como: colunares, cúbicas, hexagonais, etc. (BECHTOLD, 2005; ATKINS e JONES, 2006). Karen Rossit Sotiro 21 Figura 8: Texturas líquido-cristalinas típicas, observadas em um microscópio óptico de luz polarizada. A- nemática; B- colestérica; C- esmética (BECHTOLD, 2005). A microscopia de luz polarizada é uma técnica muito usada, que permite estudar estruturas designadas por anisotrópicas e birrefringentes. Fundamenta-se em um campo elétrico de raio luminoso polarizado que uma substância birrefringente é capaz de provocar (RESENDE, 2004). O microscópio de luz polarizada é um microscópio óptico comum, onde junto ao condensador se coloca um polarizador, que orienta as ondas luminosas provenientes da fonte de luz em uma só direção, em um só plano. As alterações que uma substância birrefringente provoca na direção da propagação da luz, em um equipamento desse tipo, são feitas graças ao analisador, um segundo sistema de polarização, junto a ocular. O máximo de luz é obtido quando o polarizador e analisador estão com eixos em paralelo e, ao contrário, a luz extingue quando são perpendiculares (ABRAMOWITZ et al, 2005). O fenômeno de difração é importante para o conhecimento sobre a estrutura cristalina dos sólidos, através de interferência entre ondas que surge quando existe um objeto em seu A B C Karen Rossit Sotiro 22 caminho. A difração ocorre quando o comprimento de onda da radiação é comparável aos espaçamentos característicos do objeto que causa a difração (ATKINS e JONES, 2006). Os raios-X são gerados na aceleração de elétrons até velocidades muito altas. Na difração de raios-X que utiliza a radiação intensa de uma fonte, na qual os elétrons são acelerados em um círculo por campos eletromagnéticos (ATKINS e JONES, 2006). Luz síncrotron é a intensa radiação eletromagnética produzida por elétrons de alta energia num acelerador de partículas. A luz síncrotron abrange uma ampla faixa do espectro eletromagnético, tais como: Raios-X, Luz Ultravioleta e Infravermelha, além da Luz Visível, que sensibiliza o olho humano, são emitidas pela fonte. Essa luz é utilizada na descoberta de novas propriedades físicas, químicas e biológicas existentes em átomos e moléculas, os componentes básicos de todos os materiais (www.lnls.br). A irradiação ocorre através de uma amostra relativamente fina, colocada perpendicularmente a um feixe monocromático (luz visível, raios-X, nêutrons, elétrons), onde pode-se observar, na vizinhança angular próxima ao feixe transmitido, o espalhamento de suas partículas a baixos ângulos (URBAN, 2004). Em análises semi-quantitativas de valores de espalhamento, o parâmetro estrutural d, corresponde à distância média entre as partículas, dada pela equação: d = 2π / q max (Eq. 1) Na qual; q é o vetor de espalhamento e q max correspondente à intensidade de espalhamento máxima. Esta equação é usada em sistemas ordenados, pois a distância média depende em particular do tipo do arranjo encontrado em cada partícula do sistema (CRAIEVICH, 2001). Através das curvas de SAXS, podem se obter informações sobre o tamanho, forma, quantidade e o arranjo dos objetos espalhadores dos raios-X no sistema estudado. Karen Rossit Sotiro 23 A técnica de SAXS é utilizada na caracterização de sistemas e confirmação de dados semelhantes aos obtidos por outras técnicas de caracterização, alem de possibilitar determinar o tamanho médio das partículas espalhadoras e a distância entre elas (URBAN, 2004). No âmbito das ciências biológicas e farmacêuticas, a reologia ou caracterização reológica é indispensável para o entendimento de diferentes fenômenos, muitos deles essenciais a vida, eficácia dos medicamentos e dos processos tecnológicos. As características reológicas de um produto estão associadas a aspectos de absorção e biodisponibilidade de um fármaco, bem como a escolha correta dos equipamentos a serem usados na sua produção (NERTZ e ORTEGA, 2002). A instabilidade física das formulações pode ser detectada, em alguns casos, por uma mudança na aparência como, por exemplo, na textura. O estudo científico desse tipo de estabilidade vem sendo feito principalmente através da reologia (LEONARDI, 2004). O termo reologia, do grego rheo (fluxo) e logos (ciência) foram sugeridos para descrever as deformações de sólidos e a fluidez de líquidos. Viscosidade é uma expressão de resistência do fluído ao fluxo: quanto maior a viscosidade, maior a resistência ao fluxo (NERTZ e ORTEGA, 2002; ALMEIDA, et al. 2003; LEONARDI, 2004; WOOD, 2001). A reologia descreve as deformações de um corpo sob a influência de tensão. Sólidos ideais se deformam elasticamente, assim, a energia requerida para a deformação é completamente recuperada quando a tensão é removida, enquanto que os líquidos ideais, tais como, líquidos e gases, deformam-se irreversivelmente, fluem. A energia requerida para a deformação é dissipada sob forma de calor e não pode ser recuperada pela remoção da tensão (SCHRAMM, 2006). A reologia tem sido assunto de grande e crescente importância para a indústria farmacêutica e cosmética, tendo em vista que a consistência e o espalhamento dos produtos devem ser reproduzidos de lote para lote, assegurando a qualidade tecnológica do produto Karen Rossit Sotiro 24 acabado. Além disso, a aceitação de produtos por parte do consumidor depende, principalmente, da eficácia e das qualidades sensoriais do produto, ambas influenciadas pela reologia (LEONARDI, 2004). Nos estudos de reologia, existem os sistemas denominados newtonianos e os não newtonianos. O fluxo newtoniano caracteriza-se por viscosidade constante, independente da tensão de cisalhamento aplicada. Os fluidos newtonianos apresentam baixa interligação molecular (alguns líquidos e gases de baixa densidade, como a água). A viscosidade em sistemas não-newtonianos não é constante e depende, além da temperatura, que a diminui através da redução da atração entre as moléculas (WOOD, 2001), de outros fatores tais como: forma de preparação, manuseio e tempo de repouso, bem como, dispersões heterogeneas, sólidas e líquidas, como dispersões coloidais, emulsões, suspensões líquidas, assim como pomadas e ungüentos (NERTZ e ORTEGA, 2002). A viscosidade (η), representada pela equação 2, é um expressão de resistência ao fluxo (deformação ou escoamento). Quanto maior a viscosidade, maior a resistência, e esta é dada pela razão entre a tensão de cisalhamento aplicada (τ) e o gradiente de cisalhamento (γ), sendo diretamente proporcional a temperatura (WOOD, 2001). η = τ / γ (Eq. 2) Na qual: η é a viscosidade τ = tensão de cisalhamento γ = gradiente de cisalhamento O fluxo não-newtoniano caracteriza-se por mudança de viscosidade com o aumento da tensão de cisalhamento e é representado por três tipos de curvas de consistência (Figura 9); fluido plástico, também conhecido como fluido de Bingham, que só começa a escoar a partir Karen Rossit Sotiro 25 de uma determinada tensão aplicada, logo, este precisa de uma tensão inicial mínima; fluido pseudoplástico, apresenta maior resistência ao escoamento no início, ou seja, com baixa tensão de cisalhamento; representado por uma curva tendo como origem o zero, ao contrário do fluido dilatante que apresenta baixa viscosidade (pouca resistência) frente à baixa tensão de cisalhamento (SCHOTT, 1995; ANSEL et al., 2000; NERTZ e ORTEGA, 2002; ALMEIDA, et al. 2003; LEONARDI, 2004). Figura 9: Vários tipos de comportamento de fluxo (SCHRAMM, 2006). Considerando aspectos de estrutura molecular, observa-se que a maioria das substâncias geradoras de sistemas pseudoplásticos é composta por cadeias poliméricas lineares, que, quando hidratadas ou solvatadas, tendem a estruturar-se de acordo com o sentido da força de cisalhamento aplicada e isso se manifesta como uma diminuição da viscosidade a medida que aumenta a força ou a tensão de cisalhamento (NERTZ e ORTEGA, 2002; SCHRAMM, 2006). Karen Rossit Sotiro 26 Para obter os reogramas fazem-se, inicialmente, as medidas de velocidade de cisalhamento aumentando-se a tensão de cisalhamento progressivamente a fim de se obter a curva ascendente e depois se repete o procedimento ao contrário, ou seja, vai diminuindo-se a tensão de cisalhamento, para obtenção da curva descendente (LEONARDI, 2004). Os reogramas podem apresentar-se com as curvas ascendente e descendente sobreponíveis (sem tixotropia) ou não sobreponíveis (com tixotropia). As curvas não sobreponíveis resultam numa área conhecida como área de histerese. A área entre as curvas representa a medida de tixotropia, ou seja, quanto maior a área, maior a tixotropia (LEONARDI, 2004). O fluxo tixotrópico é uma transformação gel-sol reversível (ANSEL et al., 2000; SCHRAMM, 2006). Tixotropia é uma propriedade importante em formas farmacêuticas líquidas e semi- sólidas que caracteriza um medicamento mais consistente quando em repouso, mas de elevada fluidez quando agitado pelo paciente. Logo, esse fenômeno esta associado a uma recuperação lenta da consistência do material, perdida pelo cisalhamento através do retorno das ligações quebradas, redefinindo sua estrutura (WOOD, 2001) e desenhado pela curva de histerese (NERTZ e ORTEGA, 2002). A obtenção de formulações com caráter tixotrópico é bastante interessante, pois como elas se deformam durante a aplicação tornando-se mais fluidas e facilitam assim, o espalhamento e recuperam a viscosidade inicial no momento em que se encerra a aplicação, o que evita que o produto escorra. Além disso, o produto tixotrópico tende a ter maior vida de prateleira (“shelf-life”), pois durante o armazenamento, como apresenta viscosidade constante, dificulta a separação dos constituintes da formulação (LEONARDI, 2004; WOOD, 2001). A determinação da viscosidade e do comportamento reológico de produtos semi- sólidos assumem cada vez mais importância, pois, permitem compreender melhor a natureza físico-química do veículo, controlam a qualidade de matérias-primas e produtos acabados, e Karen Rossit Sotiro 27 ainda, através desses estudos pode-se verificar o efeito da consistência do produto na liberação e penetração cutânea de substâncias ativas (LEONARDI, 2004). O comportamento reológico de corpos reais que não se comportam nem como sólidos ideais e nem como fluidos ideais podem ser analisados através de medidas de fluência e relaxamento. A grande maioria dos líquidos classifica-se em uma região entre líquidos e os sólidos: eles são elásticos e viscosos e, por isso, podem ser chamados de viscoelásticos (SCHRAMM, 2006). Conforme pode ser observado no esquema apresentado na Figura 10; Figura 10: Perfis de curvas reológicas para líquidos newtonianos, sólidos hookeanos e materiais viscoelásticos. O termo viscoelasticidade é usado para descrever comportamento de materiais, os quais apresentam comportamento intermediário entre os elásticos clássicos extremos, que são chamados de sólidos hookeanos e líquidos newtonianos. Materiais viscoelásticos têm simultaneamente propriedades elástica e viscosa (KORHONEN, 2003). É possível saber se um material é mais elástico ou viscoso através dos valores de compliância que o mesmo Karen Rossit Sotiro 28 apresenta. Dessa forma, quanto maior a compliância durante a recuperação, mais viscoso é o material, como representado na figura 11; Figura 11: Gráfico de fluência e relaxação. Dentre os corpos viscoelasticos, eles podem ser classificados durante a recuperação em: mais elásticos (ou seja, sólido viscoelastico) ou mais viscosos (líquidos viscoelasticos). Fonte: dp-UNION-TS instruments. Karen Rossit Sotiro 29 2. OBJETIVOS • Obtenção e caracterização do sistema, utilizando tensoativo não-iônico, água e fase oleosa. • Determinar a região de existência de sistemas líquido-cristalinos, através da construção do diagrama pseudoternário de fases. • Caracterização física do sistema de interesse • Estudo da estabilidade física desse sistema • Estudo da estabilidade química e física do fármaco no sistema; • Estudo da liberação in vitro do fármaco no sistema. Karen Rossit Sotiro 30 3. MATERIAL E MÉTODOS 3.1. Material 3.1.2 Reagentes e Solventes • Água purificada Milli-Q • Polymol ADB (adipato de dibutila)-Polytechno/Brasil • Procetyl AWS (álcool cetílico propoxilado e etoxilado)- Volp indústria e comercio LTDA. • Eritromicina base (grau farmacêutico) - Galena • Fosfato de potássio monobásico (KH2O4) - MILLINCKRODT AR • Fosfato de potássio dibásico P.A. anidro (K2HPO4) – Vetec química fina LTDA • Acetonitrila (CH3CN) grau HPLC – J.T.BAKER • Ácido fosfórico P.A. – B. HERZOG Comércio e indústria S.A. • Hidróxido de sódio (Synth) • Álcool butílico terciário P.A. (C4H10O)- Vetec química fina LTDA • Metanol grau HPLC – J.T.BAKER. • Octanol (Sigma –Aldrich) grau HPLC (99%) Karen Rossit Sotiro 31 3.1.3 Equipamentos • Agitador Magnético SELECTA® , mod. MULTIMATIC 9S • Balança analítica - OHAUS® , mod. AP250D • Purificador de água MILLIPORE – mod. Milli-Q Plus • Refratômetro Carl Zeiss Jena • Microscópio óptico Lio Serum (aumento 10X) • Microscópio óptico Leica Leitz DMRXE de luz polarizada • Reômetro modelo Carri–Med CLS rheometer – DP union • Lavadora ultra-sônica-(ultrasonic cleaner UNIQUE) • Estufas de secagem e esterilização FANEM mod. 315SE e SOC.FABBE • Infravermelho com transformada de Fourier – SHIMADZU®, mod.FTIR 8300 • Centrifuga Sorvall mod. TC • Cromatógrafo Líquido de Alta Eficiência - SHIMADZU mod. LC-9A acoplado a detector espectrofotométrico UV-VIS mod. SPD-6AV- SHIMADZU. • Bomba de vácuo • Coluna 250 x 4,6 mm- VARIAN- mod. Hypersil 5 ODS de fase reversa. • Sistema filtrante (membrana de 0,45 µm de acetato de celulose) • Condutivímetro - conductivity meter 441 - CORNING • Dissolutor – Dissolution Hanson Research® - mod. SR8 Plus • Célula dedifusão, membrana de acetate de cellulose (MILLI-Q) Karen Rossit Sotiro 32 3.2 Métodos 3.2.1 Caracterização da eritromicina 3.2.1.1 Espectroscopia de Absorção na Região do Infravermelho com Transformada de Fourier Com a finalidade de identificar algumas funções químicas características, a espectroscopia de absorção na região do infravermelho foi realizada. A amostra foi misturada em brometo de potássio (KBr) e compactada para obtenção de pastilhas de KBr mais fármaco. O espectro de infravermelho foi obtido através do aparelho SHIMADZU FRTI-8300, na região entre 400 e 4.000cm -1, através de modos vibracionais dos grupos funcionais gerados ao absorverem radiação. 3.2.2 Construção do Diagrama de Fases A construção do diagrama de fases partiu da preparação de formulações iniciais, com determinadas proporções de tensoativo não-iônico (álcool cetílico etoxilado 20 OD e propoxilado 5 OP), fase oleosa (adipato de dibutila) e água purificada, como ilustrado na Figura 12. Cada uma dessas formulações foi preparada por pesagem dos três constituintes, seguidos de homogeneização. Diariamente foi adicionado 0,1 mL de água a essas formulações iniciais, as quais foram agitadas manualmente, seguidas de aquecimento em banho-maria, também sob agitação manual, num intervalo de 1 à 2 minutos à 50°C, suficientes para solubilizar todos os componentes. As formulações foram deixadas em repouso por 24 horas a temperatura ambiente para que os sistemas se estabilizassem e para que o ar incorporado fosse Karen Rossit Sotiro 33 espontaneamente eliminado. Decorridas as 24 horas as formulações foram observadas e classificadas em diferentes sistemas. A adição de água foi realizada até que se completasse 99% de fase aquosa. óleo0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 Tensoativo 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 Água 0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 formulações iniciais Figura 12: Diagrama de fases referente as formulações iniciais de onde partiram as adições de água purificada. As linhas (...) representam à fase aquosa, as linhas (__) a fase oleosa e as linhas (---) a fase tensoativa. 3.2.3 Formulações Escolhidas Um sistema de liberação destinado à aplicação facial da eritromicina para o tratamento da acne, deve possuir viscosidade considerável para que a formulação possa ter aplicação em uma área definida, fase oleosa e tensoativa mínimas com o intuito de tornar o sistema menos irritante e mais agradável ao toque e o menos engordurante possível, uma vez que o veículo destina-se a pessoas com problemas muitas vezes relacionados à oleosidade excessiva da pele, fator esse, causador e agravador da acne. Assim, as formulações da Tabela 2 foram Karen Rossit Sotiro 34 selecionadas para serem caracterizadas e estudas como veículo para administração cutânea da ER. Tabela 2: Formulações selecionadas e respectivas porcentagens de cada componente da formulação e classificações AMOSTRAS PROCETYL (%) ADIPATO (%) ÁGUA (%) CLASSIFICAÇÃO F1 45 5 50 SMT F2 50 5 45 SMT F3 55 5 40 SMT F4 60 5 35 SMT SMT (sistema microestruturado) 3.2.4 Incorporação da eritromicina nos Sistemas A incorporação de 2% (p/p) do fármaco nos sistemas foi realizada a 25°C triturando a eritromicina com um pistilo em um gral, onde foi acrescentado individualmente e lentamente cada formulação, homogeneizando. Ao término da incorporação, cada sistema foi observado a olho nú buscando alguma alteração na transparência do sistema, como turvação e também em microscópio óptico (Lio Serum), aumento de 10 vezes, para observar se houve total dissolução dos cristais de ER. Realizou-se também um controle negativo, ou seja, cada sistema microestruturado sem o fármaco, foi igualmente observado para possíveis comparações (REZENDE, 2004). Karen Rossit Sotiro 35 3.2.5 Caracterização Física 3.2.5.1 Índice de Refração A determinação do índice de refração das amostras foi realizada utilizando-se um refratômetro Carl Zeiss Jena, em sala climatizada a 20°C, usando água destilada como líquido padrão, cujo índice de refração a 20°C é de 1,3330 (KOROLKOVAS, 1988). Conforme metodologia descrita na farmacopéia brasileira (1997), as leituras foram realizadas em triplicata, colocando-se quantidade suficiente de cada amostra individualmente para cobrir a face do prisma (KOROLKOVAS, 1988). A leitura foi efetuada um dia após a preparação das amostras. 3.2.5.2 Condutividade Eletrolítica Os ensaios no condutivímetro CORNING foram realizados em triplicata, conforme metodologia da Farmacopéia Britânica, 2001. 3.2.5.3. Microscopia de Luz Polarizada As amostras com e sem ER, foram observadas em microscópio de luz polarizada Leica Leitz DMRXE, com auxílio de lâmina e lamínula, um dia após a mistura das fases, como descrito anteriormente. Karen Rossit Sotiro 36 3.2.5.4. Reologia O comportamento reológico das amostras foi determinado em reômetro modelo CSL CARRI-MED a 25ºC e 37°C. Os parâmetros do processo encontram-se relatados abaixo: • Medida de escoamento: Fluxo • Temperatura: 25 ºC e a 37 °C • Distância entre as placas: 200 µm • Diâmetro da placa utilizada: 2 cm • Gradiente de Velocidade crescente: 0 a 300 1/s; • Gradiente de Velocidade decrescente: de 300 a 0 1/s. Além das medidas de escoamento de fluxo, foi realizada a reologia com medidas de fluência e relaxação, com o intuito de estudar a viscoelasticidade dos sistemas. Os parâmetros para determinação da região viscoelastica linear (RVL) foram: bn Medida de escoamento: Fluência e relaxação • Temperatura: 25 ºC • Distância entre as placas: 200 µm • Freqüência: 1 Hz • Região de fluência utilizada: 50 Pa. • Valor inicial: 0,1 Pa. • Valor final: 100,0 Pa. • Diâmetro do cone utilizado: 2 cm • Tempo: 180 segundos. Karen Rossit Sotiro 37 3.2.5.5 Espalhamento de raios-X a baixo ângulo (SAXS) A análise estrutural das formulações em função do teor das fases tensoativa e aquosa, foi realizada por SAXS. Os resultados foram coletados no Laboratório Nacional de Luz Sincroton (LNLS) em Campinas, na estação de medidas D11-A SAS, a qual é equipada com um monocromador do tipo Si (111), com comprimento de onda de 1,608 Å. O espalhamento de partículas existentes no sistema sem amostra foi subtraído da intensidade total da amostra. 3.2.6 Estabilidade Física dos Sistemas 3.2.6.1 Teste de Prateleira e Estabilidade Preliminar das Formulações O teste de prateleira é realizado a temperatura ambiente (25° C), enquanto que o estudo de estabilidade preliminar é realizado a temperaturas superiores a esta, em estufas por 90 dias. Dessa forma, as formulações foram acondicionadas em frascos de vidro transparente com tampa garantindo a vedação e colocadas em estufas com temperaturas controladas de 25 +/- 2° C, 45 +/- 2° C e 60 +/- 2° C (GUIA DE ESTABILIDADE DE PRODUTOS COSMÉTICOS, 2004) A avaliação da estabilidade física dessas formulações frente à centrifugação, deu-se por 30 minutos a 3.000 rpm RCF = 2.550,717 x g, a 25° C, em centrifuga Sorvall mod. TC, utilizando 3g de cada formulação com e sem o fármaco, avaliadas em intervalos de tempo, T:0, T:45 e T:90 (dias) (GUIA DE ESTABILIDADE DE PRODUTOS COSMÉTICOS, 2004). O mesmo se deu para os ensaios de pH, viscosidade e estruturação interna através Karen Rossit Sotiro 38 microscopia de luz polarizada, bem como os organolépticos; tato, cor, aspecto e odor, avaliados nesses mesmos intervalos. 3.2.7 Metodologia Analítica para Cromatografia Líquida de Alta Eficiência (CLAE) 3.2.7.1 Condições Cromatográficas As condições cromatográficas experimentais encontram-se na Farmacopéia Americana (2006). Porém, houve necessidade de serem feitas algumas adaptações durante as análises. • Coluna cromatográfica: Hypersil C18 de fase reversa, Varian • Composição da fase móvel: solução A: acetonitrila: água (5:2:1), a: solução A é composta por 77% de fase aquosa (tampão fosfato e água) 20% álcool butílico terciário e 3% acetonitrila . • Vazão da fase móvel: 1,0 ml/min. • Comprimento de onda: 215nm • Volume de injeção: 20µL • Temperatura da coluna: 65° C • Detector espectrofotométrico: UV-VIS A fase móvel foi previamente filtrada em membrana de acetato de celulose 0,45µm e em seguida, deaerada através de banho de ultra-som, por 30minutos. 3.2.7.2 Validação da metodologia analítica Para garantir que um novo método analítico gere informações confiáveis e interpretáveis sobre a amostra, ele deve sofrer uma validação. Independente da originalidade do método analítico empregado no controle de medicamentos, todos devem ser previamente Karen Rossit Sotiro 39 validados. A validação é uma documentação exigida pela legislação para comprovação de que determinado processo ou método é adequado e confiável (GIL, et al., 2005). Exatidão A exatidão foi determinada pela recuperação, adicionando-se quantidades pré- estabelecidas do padrão a amostra. O experimento foi realizado em triplicata e o resultado foi determinado pela razão do valor encontrado na análise da amostra simulada pela quantidade real adicionada do padrão, multiplicada por 100 (ICH, 1996). A exatidão é expressa pela equação: Exatidão = concentração média experimental x 100 (Eq. 3) concentração teórica A exatidão depende e esta relacionada com a seletividade, linearidade do método, validação dos padrões utilizados, calibração da instrumentação e condições de recuperação. Precisão Precisão é definida pelo grau de repetibilidade entre os valores obtidos. Dessa forma relacionou-se a repetibilidade dos resultados obtidos em uma mesma análise, ou reprodutibilidade do método quando executado em diferentes condições. É estabelecida durante o estágio de desenvolvimento do produto (GIL, et al., 2005). A precisão é expressa pela fórmula: CV% = desvio-padrão x 100 (Eq. 4) Média Karen Rossit Sotiro 40 Robustez e Resistência Relacionam-se á precisão a vulnerabilidade que o método tem de ser afetado por pequenas variações das condições de ensaio, ambientais ou operacionais, tais como; temperatura, pH, grau de pureza dos reagentes e até iluminação ambiente (GIL, et al., 2005). A robustez foi estabelecida durante todo o desenvolvimento do ensaio. Especificidade ou Seletividade A capacidade que o método teve de avaliar de forma inequívoca a ER em uma mistura de água purificada, adipato dibutila e tensoativo, foi determinada através do exame da solução padrão do fármaco e amostra, ou o padrão na presença de componentes que possam interferir na sua determinação (GIL, et al., 2005). É expressa pela concordância entre resultados obtidos para solução-padrão e amostra. A especificidade é expressa pela equação: % concordância (C%) = teor de solução-padrão x 100 (Eq.5) teor de solução-amostra Sensibilidade Definida como a capacidade que o método tem de avaliar baixas concentrações de um determinado analito (GIL, et al., 2005). Limite de detecção (LD) é a mais baixa concentração detectável pelo método (semi- quantitativo). (equação 6). Karen Rossit Sotiro 41 Limite de quantificação (LQ) é a menor concentração que pode ser determinada quantitativamente por um método. (equação 7). LD = desvio-padrão médio x 3 (Eq.6) inclinação da reta LQ = desvio-padrão médio x 10 (Eq. 7) inclinação da reta Linearidade A linearidade do método foi determinada através da curva analítica da ER. Preparou-se uma solução padrão em fase móvel na concentração de 4000µg/mL. Em seguida, foram obtidas as diluições de 2000 µg/mL, 1000 µg/mL, 500 µg/mL, 250 µg/mL, 125 µg/mL, 62,5 µg/mL e 31,25 µg/mL. Essas soluções foram filtradas em membrana de acetato de celulose (0,22 µm) e analisadas por CLAE. Para cada concentração foram realizadas 3 determinações. Os resultados foram utilizados para o cálculo de regressão linear (ICH, 1996). 3.2.7.3 Curva Analítica Para a quantificação da eritromicina, foi construída curva analítica em fase móvel composta por solução A: acetonitrila: água (5:2:1), a: solução A é composta por 77% de fase aquosa (tampão fosfato e água) 20% álcool butílico terciário e 3% acetonitrila. Partiu-se de uma solução padrão (estoque) de ER, na concentração de 4000µg/mL. Foram preparadas diluições a partir dessa solução; 2000µg/mL, 1000µg/mL, 500µg/mL, 250µg/mL, 125µg/mL, Karen Rossit Sotiro 42 62,5 µg/mL, as quais foram filtradas em membrana 0,22µm de poro. As análises foram realizadas em triplicata. A média das áreas dos picos obtidos foram relacionada diretamente com as suas respectivas concentrações e colocadas em gráfico, e a equação de reta calculada. 3.2.8 Estabilidade Química da Eritromicina no Sistema Alíquotas de 0,5g das formulações mantidas em estufas a temperaturas 25 e 60 °C, foram tomadas e solubilizadas primeiramente em 5mL de acetonitrila, e em seguida, completado o volume para 25 mL em balão volumétrico com fase móvel. Essas amostras foram filtradas em membrana com poros de 0,22 µm e submetidas à análise por CLAE, em intervalos de sete dias, num total de 13 semanas. A estabilidade da ER frente à alta temperatura foi calculada, através da curva analítica, utilizando as áreas encontradas para cada concentração. 3.2.9 Coeficiente de Partição óleo/água Com o objetivo de traçar um perfil de penetração cutaneamente da ER, determinou-se o coeficiente de partição octanol/água do fármaco, preparando uma solução aquosa de eritromicina a 20%, a qual foi submetida à agitação constante por 12 horas. Posteriormente essa solução foi filtrada em membrana de acetato de celulose 0,22µm. Uma alíquota (3mL) dessa solução foi misturada em octanol 1:1 (v/v) e submetida a agitação em funil de separação, por 30 minutos. Após esse período, essa mistura foi deixada em repouso para a separação das fases. A fase aquosa foi retirada e submetida à centrifugação por 30 minutos a 3800 rpm, cuja RCF (Relative Centrifugal Force) é 2.550,717 x g ou G, para separação do sobrenadante orgânico. Karen Rossit Sotiro 43 A solução aquosa resultante foi submetida a análise por CLAE e comparada com uma amostra da mesma solução aquosa de ER, antes da mistura com octanol e submetida a mesma análise. O coeficiente de partição foi calculado através da equação; K o/a = (C1 – C2) / C2 (Eq. 8) Na qual: C1 é a concentração de ER na fase aquosa antes da partilha com o octanol; C2 é a concentração da ER na fase aquosa depois da partilha com o octanol. 3.2.10 Variação do Tempo de Retenção (TR) da ER 3.2.10.1 Fase Móvel Realizou-se o estudo da variação do tempo de retenção em relação à constituição da fase móvel. Desse modo, manteve-se fixa a porcentagem de acetonitrila, variando-se somente a porcentagem de álcool butílico terciário (B OH) e consequentemente a fase aquosa da solução A da fase móvel (solução A é composta por 77% de fase aquosa (tampão fosfato e água) 20% álcool butílico terciário e 3% acetonitrila) (BRITISH PHARMACOPOEIA, 2001). 1. variação 1 : acetonitrila 3%, B OH12%, fase aquosa 85% 2. variação 2: acetonitrila 3%, B OH 14%, fase aquosa 83% 3. variação 3: acetonitrila 3%, B OH 16,5%, fase aquosa 80,5% 4. variação 4: acetonitrila 3%, B OH 18%, fase aquosa 79% 5. variação 5: acetonitrila 3%, B OH 20%, fase aquosa 77% 6. variação 6: acetonitrila 3%, B OH 25%, fase aquosa 72% 3.2.10.2 Constante de dielétrica Karen Rossit Sotiro 44 A variação do tempo de retenção em relação a constante dielétrica da fase móvel também foi estudada. Esse estudo teve como objetivo principal, observar a influência da variação da constante dielétrica em função da constituição da fase móvel. As constantes dielétrica de cada variação do eluente foi calculada utilizando a equação 9 abaixo: ε = (ε fase aquosa . % fase aquosa) + (ε ACN . %ACN) + (ε BOH . %BOH) (Eq. 9) 100 Na tabela 3, encontram-se os valores de ε : Tabela 3: Constantes dielétrica dos solventes utilizados (DEAN, 1992). solvente Constante dielétrica (ε) Temperatura (° C) água 88,75 25 acetonitrila 37,5 25 Álcool butílico terciário 10,9 25 3.2.11 Perfil de liberação da ER in vitro Para o ensaio de liberação in vitro foi utilizado um modelo de célula de difusão adaptada ao equipamento de dissolução (Dissolution SRO Plus). A célula de difusão (Figura 13) é composta por uma tampa removível com três aberturas; uma para a coleta e reposição do meio receptor, outra para a passagem da haste que mantém o meio receptor sob constante agitação e uma terceira na qual é adaptado um tubo de Karen Rossit Sotiro 45 ensaio de 1,24 cm de diâmetro, onde foi colocada com auxílio de anel de borracha uma membrana de acetato de celulose, previamente hidratada através de sua submersão pernoite em água destilada.; Pesou-se uma quantidade 0,3g de Cristal líquido contendo 6.048 mg de ER, suficiente para se estabelecer as condições sink de ensaio. Essa amostra foi distribuída sobre a membrana, homogeneamente, evitando a formação de bolhas. O tubo foi acoplado a célula de difusão entrando em contato com o meio receptor. O mesmo procedimento foi realizado com a ER livre a fim de determinar o perfil de dissolução da mesma. A simulação das condições sink normalmente é obtida, usando-se um grande volume de meio receptor, ou usando-se mecanismos pelos os quais o meio de dissolução é constantemente reposto, de modo que a concentração do soluto não alcance mais do que 10 a 15% da sua solubilidade máxima (MAINARDES, 2004). A liberação do fármaco foi determinada por CLAE. Através de coleta de 50µL de amostra retirada do meio de dissolução, e em seguida, o mesmo volume foi reconstituído pela adição do meio receptor recentemente preparado, corrigindo-se, dessa maneira, o volume. O ensaio foi realizado em triplicata. O equipamento de dissolução foi utilizado para se manter condições de temperatura e agitação, e as leituras foram realizadas em intervalos pré-determinados, partindo-se de intervalos de 5 minutos até 60 minutos, sendo o tempo total do ensaio 24 horas. Os ensaios foram realizados em triplicata para cada amostra. Assim, a média das áreas dos picos obtidos, foi lançada na equação da reta da curva analítica em solução tampão pH 6.8 0,05 M, e a concentração de ER calculada. • Temperatura 37 °C • Membrana de acetato de celulose (0,22µm) Karen Rossit Sotiro 46 • Agitação constante (200 rpm) • Meio de liberação: tampão fosfato pH 6,8 0,05M (USP, 2004). • Volume do meio receptor: 16 mL. Figura 13: Esquema de célula de difusão (à esquerda), adaptada ao equipamento de dissolução (a direita). (a) dispositivo de agitação do meio receptor, (b) abertura para coleta e reposição do meio, (c) orifício de colocação do tubo com a membrana. (a) (b) (c) Karen Rossit Sotiro 47 4. RESULTADOS E DISCUSSÃO 4.1 Caracterização da eritromicina 4.1.1 Espectroscopia de Absorção na Região do Infravermelho com Transformada de Fourier A espectroscopia de absorção na região do infravermelho, é uma das técnicas mais utilizadas na identificação das funções químicas. Através dos diferentes modos vibracionais gerados por grupos funcionais ao absorverem radiação na região do infravermelho em comprimentos de onda característicos, é possível determinar o grupo funcional existente no composto (SILVERSTEIN, et al. 1994). Uma amostra de eritromicina, grau farmacêutico, foi utilizada para a realização da espectroscopia de absorção na região do infravermelho, que se situa entre 400 e 4.000 cm -1. O espectro obtido nesse trabalho esta ilustrado na figura 14 juntamente com o espectro de referência da ER na figura 15. Os números e letras das bandas indexadas estão referidos entre parênteses no texto. A eritromicina foi caracterizada por duas banda de absorção na região de 1700 a 1735 cm-1 referentes a bandas de deformação (MOFFAT, et al., 1986) do grupo cetona não conjugada (a), porém nessa região encontra-se também a deformação do grupo éster de 1200 a 1720 cm-1 (difícil de diferenciar das cetonas, pois não apresenta banda característica) (b). A seguir, estão as bandas de deformação angular simétrica no plano de CH2 e CH3 em 1300 a 1480 cm-1 (c). E finalmente na região de 1000 a 1200 cm-1 observa-se as bandas de deformação do grupo éter (d) (MOFFAT, et al., 1986; SILVERSTEIN, et al.1994). Através da comparação entre os espectros, pode se dizer que a amostra analisada apresenta o mesmo espectro de absorção na região do infravermelho que a ER. A banda de Karen Rossit Sotiro 48 número 1 refere-se a provável hidratação da amostra no momento do preparo, enquanto que as bandas 2 e 3, referem-se as bandas de ligações C-H3 dos alcanos e da ligação C-OH do álcool, que aparecem antes de 2000 cm -1. Figura 14: Espectro da eritromicina comercial na região do infravermelho. Os números referem-se a bandas não encontradas no espectro de referência, e as letras, referem-se às bandas indexadas em comum entre os espectros.