ESTUDO DA QUALIDADE DOS EFLUENTES GERADOS EM DIFERENTES 

FASES DO CULTIVO DO CAMARÃO-DA-AMAZÔNIA  

Macrobrachium amazonicum 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

ORIENTADOR: PROF. DR. LUIZ AUGUSTO DO AMARAL 

ALUNA: MAYRA NOGUEIRA 

CENTRO DE AQÜICULTURA, UNESP 

 

 

 
 

Jaboticabal-SP  
2008 

Tese apresentada ao Programa de Pós-
Graduação em Aqüicultura do 
CAUNESP, como parte dos requisitos 
para obtenção do título de Doutor em 
Aqüicultura 



 

 

1 

1. INTRODUÇÃO E REVISÃO DE LITERATURA 

 

A aqüicultura tem apresentado um grande desenvolvimento mundial, 

procurando moldar-se ao conceito de sustentabilidade. Segundo VALENTI 

(2002), a aqüicultura moderna está embasada em três pilares: a produção 

lucrativa, o desenvolvimento social e a preservação do meio ambiente, tendo os 

mesmos uma relação intrínseca e interdependente para que se tenha uma 

atividade perene. Sendo assim, há a necessidade de se pesquisar novas 

tecnologias a fim de reduzir impactos como desmatamentos, desvios de cursos d’ 

água, introdução de espécies exóticas no ambiente natural e emissão de efluente 

nos ecossistemas aquáticos. 

A qualidade da água do efluente pode ser alterada devido a vários fatores, 

incluindo o clima, tipo de viveiro, manejo adotado, taxa de renovação da água, 

densidade de estocagem dos animais, espécies cultivadas, qualidade e quantidade 

de alimento fornecido (SIPAÚBA-TAVARES, 1995). A ração não consumida no 

ambiente, em determinadas quantidades pode estar além da capacidade natural do 

corpo aquático absorver essa carga orgânica, provocando um impacto ambiental 

no corpo d’ água receptor (BRAZ FILHO, 2005; ZIEMANN et al., 1992). 

Visando a manutenção da qualidade da água, atualmente, a troca de água dos 

viveiros é o principal mecanismo adotado pelos produtores.  

Os efluentes de viveiros aqüícolas possuem grande volume e baixas 

concentrações de nutrientes quando comparados com efluentes domésticos, que 

apresentam pouco volume e grande concentração de nitrogênio e fósforo 

(BOYD, 2003). Apesar de ser considerado elevado o valor de diluição dessas 



 

 

2 

descargas de efluentes oriundas da aqüicultura, o seu lançamento direto nos 

ambientes límnicos pode resultar em uma bioacumulação crônica e eutrofização. 

Tal situação pode levar ao aumento excessivo do fitoplâncton, ocasionando 

déficit de oxigênio dissolvido à noite e possível morte de organismos locais 

(SIPAÚBA-TAVARES, 1995; REDING & MILDLEN, 1997; GUO & LI, 2003).   

Destaca-se ainda o fato de extrema relevância de que as alterações sofridas 

pelos corpos d’água receptores vão além dos impactos ambientais, sendo também 

um problema de saúde pública. Em ambiente eutrófico, estudos revelam a 

predominância de cianobactérias e salientam a importância deste fato, uma vez 

que esses organismos produzem toxinas. A ocorrência de toxina na água de 

hemodiálise, de pessoas com insuficiência renal, na cidade de Caruaru/ PE, 

provocando diversas mortes, evidencia a importância dessas águas na veiculação 

das referidas toxinas (POURIA et al., 1998).   

O aumento dos níveis de nutrientes como nitrato e nitrito nos aqüíferos, 

nas últimas décadas é atribuído a intervenções humanas, assim como as 

atividades agrícolas e processos industriais (FORMAN et al.,1985). O nitrato 

presente nas águas pode induzir a ocorrência de metahemoglobinemia em recém-

nascidos e a formação de nitrosaminas e nitrosamidas carcinogênicas (FORMAN   

et al., 1985; FERREIRA, 2001). O nitrito, uma vez presente nas águas pode 

desencadear a metahemoglobinemia, independente da faixa etária, pois seu efeito 

é mais rápido e pronunciado que o do nitrato (BATALHA & PARLATORE, 

1993). 



 

 

3 

Sendo assim, com o crescimento da atividade aqüícola, aumenta 

simultaneamente a preocupação dos órgãos ambientais e de saúde com o impacto 

ambiental gerado pela mesma. Considerando que o controle da poluição da água 

está diretamente relacionado com a proteção da saúde, garantia do meio ambiente 

ecologicamente equilibrado e a melhoria da qualidade de vida, o Conselho 

Nacional de Meio Ambiente estabeleceu que a água destinada ao uso aqüícola 

deva pertencer a Classe II, por meio da Resolução nº 357, de 17 de março de 

2005 (CONAMA, 2005).  

O efluente deve obedecer aos padrões de qualidade da classe em que o 

corpo receptor desse efluente estiver enquadrado. O enquadramento dos corpos 

de água dar-se-á de acordo com as normas e procedimentos definidos pelo 

Conselho Nacional de Recursos Hídricos (CNRH) e Conselhos Estaduais de 

Recursos Hídricos. Enquanto, não aprovados os respectivos enquadramentos, as 

águas doces serão consideradas Classe II, as salinas e salobras Classe I, exceto se 

as condições de qualidade atuais forem melhores, o que determinará a aplicação 

da classe mais rigorosa correspondente (CONAMA, 2005).  

Nas últimas décadas, dentro da aqüicultura, a carcinicultura apresentou um 

elevado crescimento. No início dos anos 80, apenas 1% dos camarões 

consumidos mundialmente foram oriundos do cultivo, sendo que esta proporção 

aumentou para 50% na década de 90 (MACGIN, 1998). 

 No contexto internacional, o Brasil tem um elevado potencial para tornar-

se um grande produtor mundial de camarões, devido a sua grande extensão 

territorial, recursos hídricos abundantes, 75% de sua área encontrar-se na zona 



 

 

4 

tropical, tendo assim um clima favorável durante todo o ano, características essas 

importantes à prática da larvicultutura e crescimento final dos animais 

(CASTAGNOLI, 1992; MACGIN, 1998). 

 Diante disso, visando mitigar a conseqüência negativa do cultivo de 

camarão sobre o ambiente aquático, um grande número de pesquisas tem sido 

realizado a fim de melhorar a qualidade e diminuir a quantidade do seu efluente. 

SIPAÚBA-TAVARES et al. (1999) pesquisaram a influência do uso de 

aeradores na qualidade da água de viveiros aqüícolas e constataram que as 

variáveis como temperatura, transparência, pH, oxigênio dissolvido, bicarbonato, 

CO2 livre, fósforo total, ortofosfato, amônia, nitrato e nitrito diferiram 

significativamente (P < 0,05) com a agitação mecânica da água. Já a 

condutividade, alcalinidade, CO2 total e clorofila a não apresentaram diferenças 

significativas (P > 0,05) com o uso do aerador. 

 GRÄSLUND & BENGTSSON (2001) constatou em uma revisão sobre 

produtos químicos e biológicos utilizados em fazendas de camarões no Sudeste 

Asiático, no tratamento da água, no sedimento dos tanques de engorda e na 

larvicultura, assim como na desinfecção de equipamentos de manejo, uma grande 

quantidade de tipos de antibióticos, compostos de cobre, desinfetantes e 

pesticidas, tendo estes um impacto negativo para a saúde do ser humano e do 

meio ambiente. Com este estudo também se concluiu que há necessidade de mais 

pesquisas sobre os tipos e quantidades desses produtos, para se obter resultados 

mais conclusivos com relação ao seu impacto ambiental. 



 

 

5 

PÁEZ-OSUNA (2001) em seu trabalho sobre a criação de camarão e o 

impacto ambiental gerado por essa atividade, relatou que o maior obstáculo para 

o futuro da carcinicultura são as doenças, provocadas pela elevada disseminação 

de protozoários, fungos, bactérias e vírus, principalmente em cultivo intensivo. 

Embora o uso de produtos químicos na criação de camarão seja baixo quando 

comparado com outras atividades, o crescente uso de antibióticos para combater 

doenças é preocupante, uma vez que possivelmente produz impacto no 

ecossistema natural adjacente. 

FRAGA (2002) verificou que sistemas de cultivo semi-intensivos do 

camarão Litopenaeus vannamei, nos municípios de Barra do Sul e Laguna, no 

estado de Santa Catarina, incrementaram as águas e os sedimentos dos 

ecossistemas costeiros receptores com sólidos suspensos, clorofila a, feotinina, 

matéria orgânica, feopigmento, fósforo disponível e nitrogênio total. 

BENASSI (2003) fazendo uma análise comparativa da qualidade da água 

afluente e efluente de um viveiro de manutenção de estoque de reprodutores de 

camarões Macrobrachium rosenbergii, verificou porcentagens de acréscimo das 

concentrações de nitrogênio total (20% a 180%), fósforo total (30% a 130%), 

valores de turbidez (10% a 35%) e do material em suspensão acima de 50% na 

maioria das vezes. Tais acréscimos estavam relacionados com a ração empregada 

e com a excreta dos camarões, provocando redução da qualidade da água do 

efluente.  

COSTANZO et al. (2004) realizaram um estudo em uma fazenda de 

camarão marinho no nordeste da Austrália em que verificaram a qualidade da 



 

 

6 

água de um riacho que recebia efluente do cultivo de Penaeus merguiensis. Na 

coluna d’água foi encontrada elevada concentração de NH4+ (18,5±8,0 �M) e 

clorofila a (5,5±1,9 �g/L) após o povoamento dos viveiros com juvenis, em 

contraste quando os viveiros estavam desativados (1,3± 0,3 �M e 1,2±0,6 �g/L 

respectivamente). Este resultado indica que a qualidade da água deste curso 

d’água estava sendo diretamente influenciada pela fazenda em operação, 

podendo estar associado com “blooms” de algas ocorridos à jusante do ponto de 

lançamento do efluente. 

FOLKE & KAUTSKY (1992) sugerem como tecnologia alternativa, limpa 

e sustentável, o policultivo. As características deste tipo de cultivo incluem o 

controle para manter a total utilização vertical da coluna d’água, uma proporção 

racional dos organismos que ocupam diferentes níveis tróficos e partes da coluna 

de água, a total utilização de vários tipos de alimento inclusive resíduos, a 

manutenção de alta produtividade e a preservação de condições apropriadas no 

ambiente dos viveiros. 

Outra alternativa para o tratamento de efluentes de várias origens tem sido 

a construção de “Wetlands” ( KNIGHT et al., 2000; STOTTMEISTER et al., 

2003). Esse sistema de tratamento também foi indicado por TILLEY et al. (2002) 

para o cultivo de camarão, sendo utilizado como filtro de recirculação, reduzindo 

de forma eficiente os níveis de fósforo, nitrogênio, amônia, nitrato, sólidos 

suspensos e a demanda bioquímica de oxigênio (DBO). 

BRAZ FILHO (2005) tem estudado e defendido por considerá-los menos 

impactantes, os sistemas de criação em piscicultura com recirculação total da 



 

 

7 

água, metodologia já adotada em muitos países, como a Tailândia. Essa prática 

de recirculação de água vem de encontro aos anseios da Comunidade Européia de 

que seus fornecedores de produtos devem evitar o desperdício de água, melhorar 

a qualidade do produto e do sistema de produção. Os sistemas de recirculação 

geralmente estão associados a organismos vivos como algas, bactérias, animais 

filtradores ou plantas aquáticas, os quais são responsáveis pela remoção e/ou 

transformação dos dejetos, possibilitando o reuso da água para a continuidade do 

cultivo. A eficiência deste sistema depende da relação entre o tipo de alimento 

empregado, o manejo alimentar e a associação adequada das espécies que 

degradarão os resíduos. 

A caracterização do efluente, diagnosticando o problema, assim como 

também solucioná-lo através da aplicação de tecnologia como o uso de aeradores, 

manejo alimentar adequado, policultivo, recirculação total de água e utilização de 

tanques de tratamento de efluente com macrófitas ou organismos filtradores são 

ações importantes para a mitigação do impacto ambiental gerado pela 

aqüicultura. No entanto, há necessidade de que mais pesquisas sejam realizadas 

neste sentido, sobretudo com espécie nacionais como é o caso do 

Macrobrachium amazonicum. 

 O cultivo de camarões de água doce, geralmente causa menor impacto ao 

ambiente que o do camarão marinho, o qual para a construção de seus viveiros 

acaba por destruir os mangues, ecossistema complexo e frágil de grande 

importância para a biodiversidade marinha (NEW et al., 2000). 



 

 

8 

 Durante as décadas de 70 e 80 ocorreu um aumento da taxa de produção 

do camarão marinho, 24 e 27%/ano, respectivamente. Posteriormente a taxa de 

produção diminuiu para 6% na década de 90 (FAO, 2004). Entretanto, ocorreu o 

oposto com a produção de camarão de água doce, esta cresceu 5% na década de 

70, 15% na de 80 e 19% na de 90. Recentemente houve uma grande expansão 

desta atividade, sendo de 36% entre os anos de 1999 e 2002. Esse rápido 

crescimento ocorreu principalmente devido ao grande desenvolvimento na 

tecnologia de produção e sua sustentabilidade ambiental (VALENTI & 

TIDWELL, 2006). 

  A espécie de camarão de água doce mais utilizada em cultivos de escala 

comercial, em vários países tropicais e subtropicais é o Macrobrachium 

rosembergii, proveniente da Malásia. (VALENTI et al., 1998a; NEW, 2005; 

VALENTI & TIDWELL, 2006). Entretanto, o problema de introdução de 

espécies exóticas é tão grave que foi considerada pela União para Conservação 

Mundial (IUCN) como a segunda maior causa da perda da biodiversidade.  

As espécies exóticas disputam espaço e alimento com as espécies nativas, 

podendo ainda transmitir para essas parasitas, vírus, bactérias ou fungos, contra 

os quais não apresentam resistência imunológica (MAGALHÃES et al., 2005). 

Além disso, as espécies exóticas quando possuem parentes próximos na biota 

nativa podem cruzar com indivíduos dessa, provocando a eliminação de 

genótipos únicos das espécies locais, e assim poderá ocorrer perda da diversidade 

genética, geração de híbridos e indefinição nos limites taxonômicos existentes 



 

 

9 

(MAGNUSSON et al., 1998; PRIMACK & RODRIGUES, 2001; MYRICK, 

2002).    

 Na costa Nordeste do Brasil, introduzidos a partir de criadouros 

despreparados para contê-los em seus limites, os camarões da Malásia e o 

Vanamey podem ser capturados com mais facilidade do que as espécies 

nacionais de camarões (DESISKY, 2004; INSTITUTO HORUS, 2004).  

O camarão M. amazonicum foi muito consumido no Nordeste Brasileiro, o 

que causou o declínio de sua população no ecossistema aquático. Atualmente, o 

cultivo desta espécie autóctone consiste em uma alternativa que elimina os 

potenciais malefícios de introdução acidental de espécies exóticas e ainda 

promove subsídios para a reposição nos estoques naturais (REIS et al., 2004). 

Sendo assim, buscando cada vez mais uma produção sustentável, tem 

aumentando a quantidade de estudos para conhecer a biologia e desenvolver a 

tecnologia de produção do M. amazonicum.  

Esta pesquisa está inserida no Programa para o Desenvolvimento de 

Tecnologia de Cultivo de M. amazonicum, implantado no Centro de Aqüicultura 

da UNESP – CAUNESP em 1999, com a participação de dez instituições de 

pesquisa e universidades de várias regiões do Brasil.  

Neste projeto multidisciplinar, pesquisas foram realizadas até o presente 

momento, com diferentes enfoques: Nutrição e produtividade das larvas 

(ARAÚJO, 2005; MACIEL, 2007), crescimento relativo (MORAES-

RIODADES & VALENTI, 2002), descrita a ocorrência de morfotipos para 

machos adultos da espécie (MORAES-RIODADES & VALENTI, 2004a), os 



 

 

10 

estágios de maturação dos machos (PAPA, 2003) e das fêmeas (RIBEIRO, 

2003), foram testadas taxas de estocagem das larvas e a viabilidade técnica e 

econômica da atividade (VETORELLI, 2004), qualidade da água e efluente em 

viveiros de crescimento final (KEPPELER, 2005; MORAES-RIODADES et al., 

2006), produção em viveiros estocados com diferentes densidades (MORAES-

RIODADES & VALENTI, 2004b), entre outras. 

No entanto, muitos aspectos relacionados ao cultivo do M. amazonicum, 

ainda não foram estabelecidos, havendo a necessidade da realização de mais 

pesquisas sobre esta espécie. 

Portanto, na aqüicultura tem se buscados meios para a obtenção de uma 

produção lucrativa e sustentável que atenderão as necessidades de um meio 

ambiente equilibrado, assim como do mercado consumidor interno e externo 

cada vez mais ecologicamente consciente e exigente. 

Devido à relevância e atualidade do tema e também das poucas pesquisas 

realizadas com Macrobrachium amazonicum, a presente pesquisa propõe avaliar 

as águas dos afluentes e efluentes de todas as fases do processo de produção 

desta espécie. Para tanto, foram realizadas análises microbiológicas, físicas e 

químicas da água de entrada e saída dos tanques e viveiros de todas as fases de 

criação dessa espécie, para a obtenção de informações importantes que auxiliem 

na tomada de medidas de controle da qualidade desses efluentes, visando à conservação 

ambiental. 

  

 

 



 

 

11 

2. OBJETIVOS 

 

Diante do exposto anteriormente, o presente trabalho tem como objetivos: 

A) Verificar a presença de indicadores de contaminação fecal por meio das 

determinações do Número Mais Provável de Escherichia coli das águas de 

afluente e efluente em cada uma das fases do cultivo do M. amazonicum. 

B) Verificar as características físicas e químicas, por meio das determinações de 

pH, temperatura, sólidos em suspensão, DBO, nitrato, nitrito, nitrogênio total, 

das águas de afluente e efluente em cada uma das fases do cultivo do M. 

amazonicum. Ressalta-se ainda, verificar a DQO, entretanto, somente na fase 

de crescimento final. 

C) Comparar os efluentes de cada fase de cultivo entre si, considerando as 

variáveis estudadas.  

D) Calcular na fase de crescimento final, o balanço da massa de DBO, sólidos 

totais suspensos e nitrogênio total que entrou, que foi assimilado e que saiu do 

viveiro por meio do efluente, assim como calcular a quantidade dessas 

variáveis nos efluentes por Kg de camarão produzido nos viveiros estocados 

com camarões em diferentes densidades: 40, 60, 80 e 100 juvenis de M. 

amazonicum /m2. 

E) Comparar as variáveis analisadas nos efluentes com os padrões estabelecidos 

pela legislação vigente (CONAMA, 2005), considerando como referência os 

valores para água doce - Classe II, já que a maioria dos corpos d’água 

receptores no Brasil se enquadram nesta categoria e o efluente não deverá 

alterá-la. 



 

 

12 

3. MATERIAL E MÉTODOS 

3.1. Caracterização do Ciclo de Cultivo Experimental do Macrobrachium 

amazonicum 

O ciclo de cultivo experimental de M. amazonicum foi realizado de 

novembro de 2005 a abril de 2006, no Departamento de Carcinicultura, 

localizado no Centro de Aqüicultura (CAUNESP) da UNESP-Jaboticabal/SP 

(Figura 1).   

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Legenda 
1 a 12 - Viveiros de crescimento final de Macrobrachium amazonicum 
A a F  - Viveiros de reprodutores de Macrobrachium amazonicum, Macrobrachium rosenbergii, 
e esporadicamente usados como berçários secundários 
a- Laboratórios de Larvicultura e Análises de Água 
b-Berçário 
c-Laboratório de Biometria 
 
Figura 1: Localização da área de estudo. Fonte KEPPLER, 2005. 



 

 

13 

O referido ciclo experimental foi dividido em 3 etapas: larvicultura, 

berçário e crescimento final.  As mesmas serão descritas a seguir: 

 

A) Larvicultura 

A larvicultura é a primeira fase do cultivo de camarões de água doce, esta 

teve seu início em novembro de 2005 e se estendeu por aproximadamente 18 dias 

de cultivo. Este processo consiste na produção de pós-larvas, ou seja, na 

obtenção e cultura das larvas, até completar a metamorfose. Caracteriza-se por 

ser um sistema intensivo. 

 As larvas utilizadas foram obtidas de fêmeas ovígeras dos viveiros 

existentes no setor de Carcinicultura do CAUNESP, sendo tais animais 

descendentes de reprodutores trazidos do nordeste do Pará (1º 13' 25" S, 48º 17' 

25" W) em 2001. 

Após sofrerem anti-sepsia em solução de formol a 25 ppm por 30 minutos, 

as fêmeas foram levadas para um tanque de eclosão com água salobra 5‰  e 

aeração constante. As larvas obtidas foram coletadas, contadas, aclimatadas e 

estocadas em densidade de aproximadamente 80 larvas/litro.  

Foram utilizados 5 tanques de larvicultura, os quais possuíam 120 litros de 

capacidade, filtro mecânico e biológico e foram abastecidos com água salobra  10 

± 5‰ (Figura 2). A água salobra utilizada na larvicultura foi obtida da mistura de 

água doce e salgada e suas condições foram controladas constantemente, a fim de 

permitir a sobrevivência e desenvolvimento das larvas.  

 



 

 

14 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 Dentre os vários sistemas de produção existentes, utilizou-se o Sistema 

Fechado Dinâmico, devido as suas inúmeras vantagens. Neste a água circula 

continuamente, passando por filtros mecânicos e posteriormente pelo biofiltro, o 

qual favorece um processo constante de nitrificação (VALENTI & DANIELS, 

2000).  

 Ressalta-se que neste sistema é necessária a realização de reposição da 

água perdida por evaporação e sifonamento das impurezas para a manutenção da 

sua qualidade. Perde-se por evaporação diariamente, aproximadamente 2 L e sua 

reposição é feita apenas com água doce. No sifonamento é retirado de 4 a 5 L de 

água, o que corresponde a 3 a 4% do volume total do tanque, sendo parte desta 

água utilizada após sua passagem por uma malha de 80 μm. 

1 

2 

3 

  Figura 2: Tanque da larvicultura: Circuito fechado - A água do interior do tanque passa 
primeiro por um filtro mecânico com malha de 125 μm (1) para impedir a 
passagem das larvas, posteriormente à água passa por um outro filtro com 
80 μm (2), o qual retira pequenas partículas e finalmente pelo filtro 
biológico (3), voltando para o tanque.  

 



 

 

15 

No que se refere à alimentação, as larvas foram alimentadas até o 5º dia de 

cultivo somente com náuplios de Artemia e após o 6º dia, a alimentação foi 

complementada com dieta inerte, proposta por MALLASEN & VALENTI 

(1998), que apresenta aproximadamente 45% de proteina bruta, 22% de extrato 

etéreo, 23% de extrativo não nitrogenado, 9% de materia mineral e 18% de 

matéria seca original. A energia bruta é de aproximadamente 5000 Kcal.Kg-1. A 

quantidade de náuplios e dieta inerte fornecida diariamente estão apresentadas na 

Tabela 1 (MACIEL, 2007). 

 Os valores médios referentes à sobrevivência, produtividade e peso seco 

das pós-larvas, obtidos foram 95,2% (±6,6), 75,5 PL/L (±12,8) e 1,18 mg 

(±0,14), respectivamente (MACIEL, 2007). 

 
Tabela 1: Densidade de náuplios de Artemia (NA) nos tanques de cultivo após o 

fornecimento e quantidade de dieta inerte fornecida diariamente 
(MACIEL, 2007). 

 

Dias de cultivo Estágios dominantes 
(NA/mL) Dieta inerte (g) 

2 4,0 - 
3 II-III 6,0 - 
4 III 6,0 - 
5 IV 6,0 - 
6 V 8,0 2,0 
7 V-VI 10,0 2,0 
8 V-VI 10,0 2,5 

9-10 VI-VII 12,0 2,5 
11-12 VIII 11,0 3,0 
13-14 VIII 11,0 3,0 
15-16 VIII-IX-PL 11,0 3,5 
17-18 IX-PL 12,0 4,0 

 

 

 

 



 

 

16 

B) Berçário 

 O berçário é uma fase intermediária, entre a larvicultura e o viveiro de 

crescimento final. Consiste no estoque de pós-larvas recém metaforseadas, em 

altas densidades, até o estágio juvenil em que são encaminhadas para os viveiros 

de crescimento final.  

Este sistema de pré-cultivo permite um maior controle da alimentação, das 

variações da qualidade da água e proteção contra predadores, visando aumentar a 

taxa de sobrevivência das pós-larvas. Esse cuidado se faz necessário, uma vez 

que as pós-larvas oriundas da larvicultura precisam adaptar-se a água doce e são 

mais vulneráveis. 

O berçário pode ser constituído de uma única etapa ou pode ser bifásico, 

subdividido em berçários I e II. No presente estudo o berçário foi constituído de 

uma única etapa, com duração de aproximadamente 18 dias. 

As pós-larvas utilizadas neste estudo foram provenientes da larvicultura 

descrita no item anterior. A densidade de povoamento foi de aproximadamente 7 

pós-larvas/L.  

Foram utilizados 5 tanques para a estocagem das pós-larvas, os quais 

estavam localizados em um galpão fechado, possuíam 1000 L de capacidade, 

filtro biológico para a manutenção dos níveis dos compostos nitrogenados e 

foram abastecidos com água doce (Figura 3). Assim como na larvicultura, a água 

do sistema circulava, após passar pelo biofiltro. 

 

 



 

 

17 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

As pós-larvas foram alimentadas com ração comercial com 35% de 

proteína bruta na quantidade de 2,0 a 5,0% da biomassa do tanque por dia. 

Durante o manejo da criação quando a temperatura da água estava entre 22 e     

24 oC a alimentação era fornecida pela metade e quando a temperatura da água 

estava abaixo dos 22 oC a alimentação era suspensa. 

As pós-larvas permaneceram no berçário até o estágio juvenil, ou seja, ao 

atingirem aproximadamente de 0,02 g, sendo posteriormente, transferidas para os 

viveiros de crescimento final. 

 

C) Crescimento Final 

A fase de crescimento final foi realizada em sistema semi-intensivo. Esta 

teve início em dezembro de 2005 e se estendeu até abril de 2006, com duração de 

Figura 3: Tanque do berçário: Circuito fechado - A 
água de cultivo passa pelo filtro biológico 
(1), voltando para o tanque. 

 

Detalhes do filtro biológico de cascalho 
existente no interior do tanque. 

1



 

 

18 

133 dias. Os juvenis foram estocados em 12 viveiros de fundo natural, 

abastecidos com água doce, com aproximadamente 0,01 ha de área cada um 

(Figura 4). Antes do povoamento, o solo dos viveiros, foi submetido à calagem 

com a aplicação de 1 t/ha de cal hidratada e fertilização orgânica com adição de 3 

t/ha de ração para camarão.  

A água utilizada para o abastecimento dos viveiros era proveniente de uma 

represa situada à montante dos tanques, sendo distribuída por gravidade. Quando 

a quantidade de água não era suficiente, duas bombas elétricas eram acionadas, 

fornecendo água de duas outras represas para os tanques. A taxa de renovação da 

água dos viveiros era de 5-10% por dia. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Saída do efluente do viveiro 

Figura 4: Viveiro de crescimento final: Circuito aberto - A água abastece o viveiro 
sendo posteriormente lançada para o meio ambiente. 

 



 

 

19 

  O povoamento foi realizado em 12 de dezembro de 2005, com juvenis 

oriundos da fase de berçário descrito no item anterior deste trabalho. Os referidos 

animais possuíam peso médio de 0,02 g. A densidade de povoamento foi de 40, 

60, 80 e 100 juvenis/m2, conforme apresentado na Tabela 2, e cujo delineamento 

experimental utilizado foi blocos inteiramente casualizados com 4 tratamentos e 

3 repetições. 

 

Tabela 2: Densidades de estocagem, número de indivíduos estocados e área dos 
viveiros. Centro de Aqüicultura da Unesp, 2005. 

 

Viveiros Densidades de 

Estocagem

 
 

Quantidade de 
Indivíduos estocados 

 
Área dos 

Viveiros (m2) 
7 80  7120 89 
8 100  8900 89 
9 60 5520 92 

10 40  4000 100 
11 80  8080 101 
12 60 6120 102 
13 100  10600 106 
14 40  4000 100 
15 60 7440 124 
16 40  4600 115 
17 100  12000 120 

18 80 7840 98 

 

A alimentação dos animais foi constituída por ração peletizada com teor 

protéico de 35%, fornecida em duas porções diárias, às 8:00 e 17:00 horas. A 

taxa diária de arraçoamento de cada viveiro foi de 2,5 g/m2 no primeiro mês de 

cultivo e do segundo ao quarto mês de cultivo, os viveiros foram arraçoados a 9, 

7, 5 e 3% da biomassa, sendo esta ajustada semanalmente com o acréscimo de 

20%. A quantidade de ração era fornecida pela metade quando o nível de O2 

dissolvido encontrava-se entre 2,5 a 3,5 mg/L pela manhã. Quando o nível desta 

variável estava abaixo de 2,5 mg/L, a ração era totalmente suspensa.  



 

 

20 

3.2. Colheita das Amostras 

 

A) Larvicultura: Para a determinação da qualidade da água da 

larvicultura e do poder impactante do efluente foram analisadas amostras de 5 

tanques, sendo uma amostra para cada tanque. Essas foram colhidas no período 

da manhã. As amostras foram colhidas antes do povoamento dos tanques, 

representando a água de entrada e também no momento da despesca, 

representando o efluente, pois é nesse momento que a água é depositada no meio 

ambiente.  As amostras da análise microbiológica foram colhidas em fracos de 

250 mL de capacidade esterilizados previamente em autoclave e as amostras das 

análises físicas e químicas, em garrafas pet de 2 L. 

 

B) Berçário: Na fase do berçário, assim como na larvicultura, foram 

analisadas amostras de 5 tanques, sendo uma amostra para cada tanque. As 

amostras foram colhidas no período da manhã, antes do povoamento, 

representando a água de entrada e no momento da despesca, representando o 

efluente. As amostras da análise microbiológica foram colhidas em fracos de 250 

mL de capacidade esterilizados previamente em autoclave e as amostras das 

análises físicas e químicas, em garrafas pet de 2 L. 

 

C) Crescimento final: Nesta fase, foram analisadas a qualidade da água e 

o poder impactante do efluente de viveiros com quatro densidades de camarões 

por viveiro: 40, 60, 80 e 100 juvenis/m2. Para cada densidade foram efetuadas, 3 



 

 

21 

repetições, resultando um total de 12 viveiros. Quinzenalmente, foi colhida uma 

amostra da água de abastecimento e outra do efluente de cada viveiro, durante o 

período de cultivo e na despesca total. As amostras foram colhidas no período da 

manhã. As amostras para análise microbiológica foram colhidas em fracos de  

250 mL de capacidade esterilizados previamente em autoclave e as amostras para 

análises físicas e químicas, em garrafas pet de 2 L. No momento da despesca 

total em que o viveiro foi esvaziado para a retirada dos camarões com a rede, 

foram colhidas amostras do efluente no 1/3 inicial, 1/3 médio e 1/3 final da 

despesca de cada viveiro (Figura 5).  

 

 

 

 

 
Figura 5: Esquema da colheita das amostras no momento da despesca, quando os 

viveiros estão sendo esvaziados para a retirada dos camarões com a 
rede. 

 

3.3. Variáveis Analisadas: Análise Microbiológica, Físicas e Químicas 

3.3.1. Análise microbiológica 
 

Determinação do Número Mais Provável (NMP) de Escherichia coli 

(APHA, 1998). 

 As amostras do afluente e efluente foram diluídas em água peptonada a 

0,1% esterilizada, adicionando-se 10 mL da amostra em 90 mL do diluente, 

1/3 inicial, logo que o viveiro começa a ser esvaziado. 
 
1/3 médio, quando o viveiro se encontra com água pela  metade. 
 
1/3 final, no final da despesca, quando o viveiro está quase vazio.  

Viveiro de crescimento final 



 

 

22 

obtendo-se a diluição 10-1. A partir dessa primeira diluição foram obtidas as 

diluições decimais sucessivas. 

Na amostra de água ou na sua diluição (100 mL) foi adicionado o meio de 

cultura (Colilert) e após homogeneização, a mistura foi transferida para a cartela 

Quanti-tray e esta selada em seladora específica. Em seguida, as cartelas foram 

incubadas a 35 ºC por 24 h. Após a incubação foi realizada a determinação do 

número mais provável de E. coli pelo número de células que apresentaram 

fluorescência após incidirem-se raios UV sobre a cartela, utilizando-se a tabela 

específica se chegou ao NMP de E. coli/100 mL da amostra.  

 

3.3.2. Análises físicas e químicas  

Determinação do pH, Oxigênio Dissolvido, Temperatura e Sólidos Totais 

Para a análise dessas variáveis utilizou-se sonda multiparâmetro -W-22XD Horiba. 

Determinação do Nitrogênio Total (APHA, 1998)  

Os valores do nitrogênio total foram obtidos pelo método Semi-Micro 

Kjedahl que tem como princípio, a transformação do nitrogênio amoniacal em 

amônia (NH3), a qual é fixada pelo ácido bórico e posteriormente titulada com 

ácido sulfúrico (H2SO4) até nova formação do nitrogênio amoniacal, na presença 

do indicador ácido-base.  

Determinação do Teor de Nitrato (APHA, 1998)  

Os valores das concentrações de nitrato foram obtidos pelo método 8039 

(HACH COMPANY, 1991) para água e águas residuárias, método de redução do 

Cádmio, descrita no manual do espectrofotômetro modelo DR -2010 da Hach.   

 



 

 

23 

Determinação do Teor de Nitrito (APHA, 1998) 

Os valores das concentrações de nitrito foram obtidos pelo método 8153 

(HACH, 1991) para água e águas residuárias, o método do sulfato ferroso, 

descrita no manual do espectrofotômetro modelo DR-2000 da Hach.   

Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO) (APHA, 1998)  

As leituras da Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO) foram obtidas através de 

Aparelho AL 320 Aqualic que utiliza solução de hidróxido de potássio a 45% como reagente e 

sensores de pressão internos. As modificações de pressão dentro dos frascos de amostra 

hermeticamente fechados foram convertidas diretamente em DBO (mg.L-1). 

Demanda Química de Oxigênio (DQO)* (APHA, 1998)  

Os valores da Demanda Química de Oxigênio (DQO) foram obtidos por 

método colorimétrico, empregando-se espectrofotômetro modelo DR-2000 da 

Hach e bloco digestor para D.Q.O. de mesma marca. A metodologia descrita nos 

manuais do aparelho faz uso da digestão ácida em meio com dicromato de 

potássio e catalizadores, utilizando-se reta padrão existente na memória do 

aparelho.  

 

 

 

 

 

 

__________________________________________________________________________________ 

* Esta análise não é valida para água com elevado teor de sais, pois o excesso de cloreto interfere em 
seu resultado. Portanto, o referido teste não tem validade para a larvicultura, devido à utilização da água 
salobra.  No presente estudo, a referida análise somente foi realizada na fase de crescimento final. 



 

 

24 

4. ANÁLISE ESTATÍSTICA (BARBIN, 2003) 

 

Para a larvicultura e berçário, as médias dos valores foram analisadas 

aplicando-se:  

O Teste t, para as variáveis: pH, oxigênio dissolvido (OD), temperatura, 

sólidos totais, nitrato, nitrito e o Teste de Wilcoxon, para as variáveis: E. coli, 

demanda bioquímica de oxigênio (DBO) e demanda química de oxigênio (DQO). 

Para o crescimento final, os valores foram analisados aplicando-se o 

método de análise de variância (ANOVA) para experimentos inteiramente 

casualizados. Realizamos uma ANOVA, para cada variável em cada data do 

cultivo, com o objetivo de verificar o efeito das diferentes densidades na água 

dos efluentes.  

 

5. RESULTADOS E DISCUSSÃO 
 
 

Devido à inexistência de dados referente à espécie em estudo, os 

resultados obtidos foram comparados e discutidos, quando possível, com 

pesquisas realizadas com a espécie Macrobrachium rosenbergii. 

 
 

5.1. Larvicultura 
    
  

A boa qualidade da água utilizada na larvicultura é de fundamental 

importância para a sobrevivência e desenvolvimento das larvas, as quais são 

bastante vulneráveis. Portanto, a qualidade da água deve ser monitorada 

constantemente nesta fase. 



 

 

25 

As médias dos resultados obtidos no presente estudo sobre a qualidade da 

água da larvicultura estão apresentadas na Tabela 3. Nesta, podemos observar 

que os resultados da análise microbiológica para E. coli da água de 

abastecimento e efluente foram 14,40 e 0/100 mL, respectivamente. Ou seja, 

ocorreu uma diminuição significativa desses microrganismos durante o cultivo 

das larvas. 

 

Tabela 3: Valores médios e desvio padrão dos resultados obtidos nas análises 
microbiológica, físicas e químicas da água de abastecimento e dos efluentes 
dos tanques de larvicultura. Centro de Aqüicultura da Unesp, 2005. 

   
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 

Legenda: 
 De acordo com a legislação 

 
 Em desacordo com a 

legislação 
 Não há referência 

 
 Recomendado na literatura 

 

 
Médias seguidas de letras diferentes na mesma linha diferem ao nível de 5% de significância. 

CONAMA

Variáveis 2005 Recomendado

Analisadas água doce Camarão de 

Porcentagem classe II água doce

E. coli  (100 mL) diminuiu 100% até 1000/mL

pH diminuiu 6,95% 5,0 a 9,0 7,5 a 8,5 
(VALENTI, 1996)

Oxigênio dissolvido diminuiu 42,4% acima de 5 mg/L acima de 2,75 mg/L

(mg.L-1) MALECHA (1983)

Temperatura (ºC) diminuiu 0,41%     até 40 ºC          28 a 31 ºC

(VALENTI, 1996)

Sólidos Totais (mg.L-1) diminuiu 2,80% até 500 mg/L

Nitrato (mg.L-1) aumentou 14,5% até 10 mg/L      até 60  mg/L
COHEN & RA'ANAN (1989)

Nitrito (mg.L-1) aumentou 980% até 1 mg/L        até 0,25 mg/L

(VALENTI, 1998)b

Nitrogênio Total (mg.L-1) diminuiu 65%

Demanda Bioquímica diminuiu 14,7% até 5 mg/L

de Oxigênio (mg.L-1)

Efluente

Média Desvio Padrão

Água de abastecimento

Média

11,84a

29,22

6,8

Desvio Padrão

10,68

9,24

0,01b

0,48a

14,4a

8,292a

±8,808

±0,135

±0,348

±0,768

±0,753

±1,834

±0,522

±0,005

±1,73

±0

7,716b ±0,435

0b

6,818b

10,38 ±0,396

0,168b ±0,034

±2,672

29,1 ±0,297

10,58 ±4,975

0,108a ±0,107

5,8 ±2,95



 

 

26 

O CONAMA - Conselho Nacional do Meio Ambiente (2005), estabelece 

que os coliformes termotolerantes não devem exceder 1000 por 100 mL. Sendo 

assim, os resultados obtidos para E. coli nesta pesquisa estão de acordo com a 

legislação vigente. 

As médias de pH foram de 8,29 e 7,72 da água de abastecimento e 

efluente, respectivamente. Este resultado está de acordo com as recomendações 

feitas por VALENTI (1996), segundo o qual as larvas apresentam melhor 

desenvolvimento em águas neutras ou levemente alcalinas, sendo que a faixa 

ideal situa-se entre 7,5 a 8,5. Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do 

Meio Ambiente, o pH deverá estar de 5 a 9. Portanto, os resultados de pH estão 

de acordo com a legislação vigente (CONAMA, 2005). 

Os resultados obtidos da concentração de oxigênio dissolvido (OD) foram 

de 11,84 e 6,82 mg/L na água de abastecimento e efluente, respectivamente. 

Houve uma diminuição significativa do OD ao longo do cultivo das larvas. O OD 

na água da larvicultura deve permanecer sempre acima de 70% de saturação 

(VALENTI, 1996). A decomposição da matéria orgânica no fundo dos tanques 

leva a um consumo de OD na água. Portanto, cuidados devem ser tomados 

quanto à quantidade e qualidade de alimento fornecido aos camarões, evitando 

uma depleção do OD. 

A aeração constante é imprescindível para manter os níveis de OD 

próximo à saturação. Segundo MALECHA (1983), as concentrações mais baixas 

de oxigênio que os camarões suportam, sem estresse, estão entre 2,25 a 2,75 

mg/L à temperatura entre 25 a 30 ºC. 



 

 

27 

A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente determina que 

o OD, em qualquer amostra, não deve ser inferior a 5 mg/L, ou seja, os resultados 

obtidos neste estudo estão de acordo com a legislação (CONAMA, 2005).  

A temperatura média da água de abastecimento foi de 29,22 ºC, enquanto 

a do efluente foi de 29,10 ºC, ou seja, não houve variação significativa da 

temperatura ao longo do processo de larvicultura. Segundo LANDKAMER 

(1994), a faixa de temperatura adequada para as larvas de M. rosenbergii é de 26 

a 30 ºC, já para RODRIGUES et al., (1991) e VALENTI (1996), a faixa ideal de 

temperatura da água é de 28 a 31 ºC, sendo que o melhor desenvolvimento das 

larvas ocorre a 31 ºC. Esses autores ainda ressaltam que em temperaturas abaixo 

de 28 ºC, mesmo por poucos dias são suficientes para retardar o desenvolvimento 

das larvas e prolongar o ciclo produção.  

A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente estabelece que 

os efluentes somente possam ser lançados desde que possuam temperatura 

inferior a 40 ºC. Portanto, os resultados de temperatura do efluente estão de 

acordo com a legislação vigente (CONAMA, 2005). 

Os sólidos totais suspensos refletem os materiais dispersos ou dissolvidos 

na coluna d’água, sejam vivos ou não. Neste trabalho, essa variável teve uma 

média de 10,68 e 10,38 mg/L na água de abastecimento e efluente, 

respectivamente. A diferença foi não significativa, indicando que os processos 

biológicos tiveram pouca ação na qualidade da água ou ocorreram processos 

antagônicos compensatórios. Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do 

Meio Ambiente o valor máximo para essa variável é de 500 mg/L (CONAMA, 



 

 

28 

2005). Portanto, os resultados de sólidos totais suspensos estão de acordo com a 

legislação vigente. 

Em relação aos compostos nitrogenados, as concentrações médias de 

nitrogênio total foram de 0,48 e 0,17 mg/L nas águas de abastecimento e 

efluente, respectivamente, ocorrendo diminuição significativa ao longo do 

cultivo. Vários pesquisadores (JOHNS, 1995; FRANSEN et al., 1998; 

RAJESHWARI et al., 2000; SALMIEN et al., 2001; SALMIEN & RINTALA, 

2002; MANIOS et al., 2003) são unânimes em afirmar que aproximadamente 

90% do nitrogênio total, presentes nas águas estão na forma de nitrogênio 

amoniacal. Sendo assim, a partir dos resultados obtidos para nitrogênio total 

realizou-se uma estimativa da concentração de amônia. Os valores médios 

estimados foram de aproximadamente 0,44 mg/L na água de abastecimento e 

0,15 mg/L no efluente. Entretanto, as concentrações médias de nitrito e nitrato 

aumentaram. Sendo que o aumento das médias de nitrito, de 0,01 na água de 

abastecimento e 0,108 mg/L no efluente, mostrou-se significativo e o aumento 

das médias de nitrato, de 9,24 e 10,58 mg/L nas águas de entrada e saída 

respectivamente, mostrou-se não significativo.  

 O filtro biológico, presente nos tanques de larvicultura contém 

microrganismos nitrificantes, os quais convertem amônia em nitrito, e este numa 

forma menos tóxica que é o nitrato (VALENTI, 1998). O nitrato acumula-se 

progressivamente no Sistema Fechado Dinâmico ao longo do período de 

reutilização da água. O que explica os resultados obtidos na presente pesquisa 

para os compostos nitrogenados.  



 

 

29 

De acordo com VALENTI (1998)b, os níveis de amônia e nitrito não 

devem ultrapassar 0,5 mg/L e 0,25 mg/L, respectivamente, para não prejudicar o 

desenvolvimento larval. COHEN & RA’ANAN (1989) afirmam que valores de 

até 60 mg/L para nitrato são tolerados pelas larvas. 

Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente, para a 

classe 2, o valor limite de nitrogênio amoniacal total varia de 0,5 a 3,7 mg/L  

(CONAMA, 2005), considerando que o pH obtido foi de 5 a 9. Os valores limite 

para o nitrito e nitrato são 1,0 mg/L, 10,0 mg/L, respectivamente. Sendo assim, 

os valores encontrados para as concentrações estimadas de nitrogênio amoniacal 

estão de acordo com a resolução, enquanto as concentrações de nitrito e nitrato 

do efluente se encontram ligeiramente acima do permitido pela legislação. 

As médias da Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO5) foram de 6,8 e 

5,8 mg/L para as águas de abastecimento e efluente, respectivamente. Observa-se 

que houve uma diminuição não significativa da DBO5 ao compararmos as águas 

de abastecimento e efluente. Estes resultados indicam que não está havendo 

eliminação significativa da matéria orgânica para o meio ambiente, esta 

provavelmente está sendo acumulada no interior dos tanques, na biomassa das 

larvas ou retida pelos filtros. Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do 

Meio Ambiente, para águas classificadas em classe 2, o valor máximo de  DBO5  

deve ser de até 5 mg/L. Os valores referentes a DBO5, estão em desacordo com a 

legislação vigente (CONAMA, 2005). Entretanto, a resolução permite exceder o 

valor da DBO 5 mg/L, caso o estudo da capacidade de autodepuração do corpo 



 

 

30 

receptor demonstre que as concentrações mínimas de OD previstas não serão 

desobedecidas.  

 

5.2. Berçário 

 

A criação de larvas de camarões de água doce é mais difícil do que as pós-

larvas. Sendo assim, mais atenção tem sido dada para a qualidade da água 

utilizada na larvicultura. 

Entretanto, as pós-larvas também requerem água de boa qualidade. 

Geralmente a mortalidade em berçário é resultante de baixa concentração de O2 

dissolvido ou altas concentrações de compostos nitrogenados (ZIMMERMANN 

& SAMPAIO, 1998). 

As médias dos resultados obtidos na presente pesquisa estão apresentadas 

a seguir na Tabela 4. 

Os resultados da análise microbiológica de E coli da água de 

abastecimento e efluente apresentaram ausência desses indicadores. Segundo a 

resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente as águas doces 

utilizadas na atividade aquícola devem ser classificadas como classe 2. De acordo 

com este padrão, os coliformes termotolerantes não devem exceder 1000 por 100 

mL. Sendo assim, os resultados obtidos para E. coli nesta pesquisa estão de 

acordo com a legislação vigente (CONAMA, 2005). 

 

 

 



 

 

31 

Tabela 4: Valores médios e desvio padrão dos resultados obtidos nas análises 
microbiológica, fisicas e químicas da água de abastecimento e dos efluentes 
dos tanques de berçário. Centro de Aqüicultura da Unesp, 2005. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 
 
 

As médias de pH foram de 8,54 e 8,32 da água de abastecimento e 

efluente, respectivamente. Podemos verificar ainda que a diferença de pH entre a 

água de entrada e efluente foi significativa estatisticamente. Altos níveis de pH 

podem favorecer o “bloom” de algas e ainda estar associado com o aumento da 

mortalidade das pós-larvas. Essas não devem ser expostas a pH maiores que 9 

nas primeiras semanas (STRAUS et al. 1991; DÍAZ-BARBOSA, 1995) e 

Legenda: 
 De acordo com a legislação 

 
 Em desacordo com a 

legislação 
 Não há referência 

 
 Recomendado na literatura 

 

 
Médias seguidas de letras diferentes na mesma linha diferem ao nível de 5% de significância. 

CONAMA

Variáveis 2005 Recomendado

Analisadas água doce Camarão de 

Porcentagem classe II água doce

E. coli  (100 mL) até 1000/mL

pH diminuiu 2,6% 5,0 a 9,0 8,5 a 9

Straus et al (1991)

Oxigênio dissolvido aumentou 38,2% acima de 5 mg/L acima de 5 mg/L

(mg.L-1) Sandifer et al (1983)

Temperatura (ºC) aumentou 2,8%     até 40 ºC         27 a 31 ºC

Sandifer et al (1983)

Sólidos Totais (mg.L-1) aumentou 166,6% até 500 mg/L

Nitrato (mg.L-1) aumentou 453% até 10 mg/L

Nitrito (mg.L-1) aumentou 75% até 1 mg/L

Nitrogênio Total (mg.L-1) aumentou 133%

Demanda Bioquímica aumentou 34% até 5 mg/L

de Oxigênio (mg.L-1) detecção

3,4 ±0,89

0,18 ±0,11

abaixo da ±0

0,42 ±0,13

5,2a ±0,552

0,014 ±0,0060,008 ±0,001

0,94b ±0,378

0,40a ±0,099

27,1 ±1,298

0,15b ±0,013

27,87 ±0,506

8,318b ±0,115

11,46a ±0,4788,29b ±0,35

8,544a ±0,102

Média Desvio Padrão

0 ±0 0 ±0

Média Desvio Padrão

Água de abastecimento Efluente



 

 

32 

concentrações de amônia maiores que 1mg/L, quando o pH varia de 8,5 a 9 

(STRAUS et al. 1991), sendo que a toxicidade da amônia aumenta com o pH. De 

acordo com STRAUS et al. (1991), juvenis não devem ser expostos a uma 

concentração de amônia maior que 1 mg/L ou 2 mg/L em pH no valor de 9 e 8,5, 

respectivamente. 

Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente  

estabelece que o pH dos efluentes deverá estar entre 6,0 a 9,0. Sendo assim, essa 

variável está de acordo com os valores recomendados (CONAMA, 2005). 

A temperatura média da água de abastecimento foi de 27,10 ºC, enquanto 

a de saída foi de 27,87 ºC, ou seja, não houve variação significativa da 

temperatura ao longo do processo de cultivo.  

Os trabalhos realizados sobre a temperatura ideal no cultivo de camarões 

em berçário são de grande importância, pois essa é um dos principais fatores que 

interfere em seu desenvolvimento. Ressalta-se que ótimas temperaturas para 

camarões estão na faixa de 27 a 31 ºC (SMITH & SANDIFER, 1979; 

SANDIFER et al. 1983). Confirmam tais resultados, os estudos realizados por 

KENEALE & WANG (1979) onde relataram que a melhor taxa de crescimento 

ocorre a 28 ºC. Entretanto, pesquisas realizadas por SANDIFER et al. (1986) 

concluíram que em temperaturas de 20 a 27 ºC diminui a variação do tamanho 

das pós-larvas e aumenta a sua taxa de sobrevivência. 

Outros estudos mostram também que temperaturas baixas ou muito 

elevadas retardam a taxa de crescimento e provavelmente causam mortalidade 

(COELHO et al., 1982; VALENTI, 1985). Segundo SANDIFER & SMITH 



 

 

33 

(1985) as taxas de crescimento e sobrevivência diminuem quando as 

temperaturas são menores do que 22 ºC e estão acima de 32 ºC e MALECHA 

(1983) relatou que as pós-larvas não devem ser estocadas em água com 

temperatura abaixo de 20 ºC. RA’ANAN & COHEN, (1982) confirmam tal 

afirmação, pois mostraram que o crescimento cessa abaixo de 19 ºC e a 

mortalidade inicia a 16 ºC.  

A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente estabelece que 

os efluentes somente possam ser lançados se possuírem temperatura inferior a   

40 ºC (CONAMA, 2005). Portanto, os resultados de temperatura estão de acordo 

com a legislação vigente e com as recomendações dos valores ideais para essa 

fase. 

Os resultados obtidos da concentração de oxigênio dissolvido (OD) foram 

de 8,29 e 11,46 mg/L na água de abastecimento e efluente, respectivamente. 

Houve um aumento significativo do OD ao longo do cultivo das pós-larvas.  

A demanda de O2 pelo camarão varia em função da temperatura e seu 

tamanho (MALECHA, 1983). Estudos mostram que os níveis de O2 dissolvido 

devem ser mantidos em no mínimo aproximadamente 5 mg/L em cultivo 

intensivo (SANDIFER et al., 1983). 

A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente determina que 

o OD, em qualquer amostra, não deve ser inferior a 5 mg/L, ou seja, os resultados 

obtidos neste estudo estão de acordo com a resolução (CONAMA, 2005).  

Os sólidos totais suspensos refletem os materiais dispersos ou dissolvidos 

na coluna d’água, sejam vivos ou não. Neste trabalho, essa variável teve uma 



 

 

34 

média de 0,15 e 0,40 mg/L na água de abastecimento e efluente, respectivamente, 

aumentando significativamente. Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional 

do Meio Ambiente o valor máximo para essa variável é de 500 mg/L 

(CONAMA, 2005). Portanto, os resultados de sólidos totais suspensos estão de 

acordo com a legislação vigente. 

As concentrações médias de nitrogênio total foram de 0,18 e 0,42 mg/L 

nas águas de abastecimento e efluente, respectivamente. Considerando que vários 

pesquisadores (JOHNS, 1995; FRANSEN et al., 1998; RAJESHWARI et al., 

2000; SALMIEN et al., 2001; SALMIEN & RINTALA, 2002; MANIOS et al., 

2003) são unânimes em afirmar que aproximadamente 90% do nitrogênio total, 

presentes nas águas estão na forma de nitrogênio amoniacal. Sendo assim, com 

base nos resultados obtidos para nitrogênio total, estimou-se o nitrogênio 

amoniacal. Este corresponde a 0,16 mg/L na água de abastecimento e 0,38 mg/L 

no efluente. 

As médias de nitrito foram de 0,008 na água de abastecimento e 0,014 

mg/L no efluente, sendo o aumento não significativo. Entretanto, as médias de 

nitrato foram de 0,94 e 5,20 mg/L nas águas de abastecimento e efluente, 

respectivamente, apresentando um aumento significativo.  

Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente, para a 

classe 2, o valor limite de nitrogênio amoniacal total varia de 0,5 a 3,7 mg/L 

dependendo do valor do pH (CONAMA, 2005). Considerando que o pH obtido 

foi de 8,5 e 8,3, o valor limite para a nitrogênio amoniacal é de 1,0 mg/L. Os 

valores limite para o nitrito e nitrato são 1,0 mg/L, 10,0 mg/L, respectivamente. 



 

 

35 

Sendo assim, os valores encontrados para os compostos nitrogenados estão de 

acordo com a resolução. 

As médias da Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO5) foram de abaixo 

do limite de detecção a 3,4 mg/L para as águas de abastecimento e efluente, 

respectivamente. Verificou-se ainda que o referido aumento não foi significativo 

estatisticamente.  Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio 

Ambiente, para águas classificadas em classe 2, o valor máximo de  DBO5  deve 

ser de até 5 mg/L. Portanto, os valores referentes a DBO5, estão de acordo com a 

legislação vigente (CONAMA, 2005). 

 

5.3. Crescimento final 
 
 
 Esta fase potencialmente é a mais impactante do ciclo todo, pois seu 

período de realização é maior do que a larvicultura e o berçário, além do que foi 

utilizado neste ciclo de produção o fluxo contínuo de água. O fluxo contínuo 

possui o benefício de manter a qualidade da água dos viveiros, entretanto, 

elimina grande quantidade de efluente para o meio ambiente.  

 Os resultados obtidos na presente pesquisa estão representados na Tabela 
5.  



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37 

Os resultados da análise microbiológica para E. coli (NMP/100 mL) foram 

84,27 (abastecimento), 47,27 (D40), 30,16 (D60), 77,14 (D80) e 53,16 (D100). 

Tais resultados não apresentaram diferença significativa entre a água de 

abastecimento e os efluentes dos diferentes tratamentos e entre estes quando 

comparados entre si. A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente, 

estabelece que as águas doces utilizadas na atividade aquícola são classificadas 

como classe 2. Segundo este padrão, os coliformes termotolerantes não devem 

exceder 1000 NMP por 100 mL (CONAMA, 2005). Sendo assim, os resultados 

obtidos para E. coli nesta pesquisa estão de acordo com a legislação vigente. 

Os resultados obtidos pra o pH foram 7,71 (abastecimento), 7,59 (D40), 

7,59 (D60), 7,52 (D80) e 7,61 (D100). O pH também não apresentou diferença 

significativa ao compararmos a água de abastecimento e os efluentes dos 

diferentes tratamentos e estes entre si. 

KIMPARA (2004) estudou a qualidade da água de abastecimento e 

efluentes provenientes do cultivo de M. amazonicum estocados nas densidades 10, 

20, 40 e 80. Nesta pesquisa verificou que o pH da água de abastecimento foi 

significativamente superior (pH 7,2) ao valor obtido nos efluentes em todos os 

tratamentos (pH 6,7). Entretanto, não houve diferença significativa entre os 

tratamentos. A autora atribui este fato ao processo de respiração dos organismos 

presentes no viveiro no período da noite, uma vez que este parâmetro foi 

determinado pela manhã, entre 6h30 e 7h30. 

De acordo com VALENTI (1996), a água para criação de camarões deve 

ser ligeiramente alcalina, com pH variando entre 7,0 e 9,0. Valores de pH entre 7,0 



 

 

38 

e 8,5 são considerados ideais ao cultivo de M. rosenbergii (BOYD & 

ZIMMERMAN, 2000). Não há informações sobre a faixa adequada para M. 

amazonicum. 

Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente que o 

pH deva estar entre 6,0 a 9,0. Portanto, essa variável está de acordo com os valores 

recomendados pela legislação (CONAMA, 2005). 

As concentrações de oxigênio dissolvido (mg/L) foram 8,60 

(abastecimento), 8,27 (D40), 8,43 (D60), 8,43 (D80) e 8,38 (D100). Ao 

compararmos a água de abastecimento com os tratamentos e estes entre si, 

concluímos que os resultados não apresentaram diferença significativa.  

KIMPARA (2004) verificou em seu estudo que o OD da água de 

abastecimento foi significativamente superior ao observado nos efluentes dos 

viveiros ao longo do cultivo. A pesquisadora atribui este resultado ao processo de 

respiração realizado a noite pelos organismos existentes no viveiro, pois a coleta 

ocorreu entre 6h30 e 7h30. 

Além da respiração, a decomposição da matéria orgânica no fundo dos 

viveiros leva a um consumo do oxigênio presente na água. Sendo assim, é muito 

importante considerar a quantidade e qualidade do alimento fornecido aos 

camarões. ZIMMERMANN (1998) recomenda para o cultivo de M. rosenbergii, 

oxigênio dissolvido variando entre 3 a 7 mg/L. 

A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente, determina que o 

OD, em qualquer amostra, não deve ser inferior a 5 mg/L, ou seja, os resultados 



 

 

39 

obtidos para a água de abastecimento e efluentes no final do cultivo não estão de 

acordo com a resolução (CONAMA, 2005). 

Os valores médios da temperatura (ºC) foram 27,13 (abastecimento), 27,63 

(D40), 27,41 (D60), 27,47 (D80) e 27,52 (D100). A temperatura da água não 

apresentou diferença significativa ao compararmos a água de abastecimento e os 

efluentes dos diferentes tratamentos e estes entre si. Os resultados obtidos neste 

estudo, para essa variável, são considerados adequados ao cultivo de camarões de 

água doce, uma vez que segundo BOYD & ZIMMERMANN (2000), indicam 

valores entre 25 a 32 ºC, e se encontram de acordo com a legislação. Segundo a 

resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente os efluentes somente 

poderão ser lançados se possuírem temperatura inferior a 40 ºC (CONAMA, 

2005). 

Os resultados obtidos nas análises para sólidos totais suspensos foram 0,006 

(abastecimento), 0,07 (D40), 0,06 (D60), 0,06 (D80) e 0,06 (D100). Tais 

resultados não apresentaram diferença significativa ao compararmos a água de 

abastecimento e os efluentes dos diferentes tratamentos e esses entre si. 

KIMPARA (2004) constatou em sua pesquisa que além da água de abastecimento, 

o teor de sólidos no efluente é influenciado pelo manejo alimentar. Esse deve ser 

definido de modo a reduzir a quantidade de partículas no efluente. De acordo com 

a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente, o valor máximo para 

essa variável é de 500 mg/L (CONAMA, 2005). 

O aumento da concentração dos compostos nitrogenados está relacionado 

com a adição de alimento nos viveiros. Amônia, nitrito e nitrato são formados a 



 

 

40 

partir da degradação de resíduos orgânicos (alimento não consumido, fezes, etc.) 

acumulados no sedimento. Tais nutrientes favorecem a produção primária, 

ocorrendo o crescimento do fitoplâncton e acréscimo de compostos orgânicos nos 

sólidos em suspensão (MARTIN et. al., 1998 apud KIMPARA, 2004) 

As concentrações médias obtidas para nitrogênio total foram 0,44 

(abastecimento), 0,45 (D40), 0,48 (D60), 0,48 (D80) e 0,46 (D100). Segundo os 

resultados obtidos não houve diferença significativa ao compararmos a água de 

abastecimento e os efluentes dos diferentes tratamentos e esses entre si. Neste 

estudo não houve elevação da concentração desta variável com o aumento da 

quantidade de ração fornecida, provavelmente porque o nitrogênio foi incorporado 

ao plâncton, a biomassa dos camarões ou ainda tenha ficado retido no sedimento.  

Considerando que vários pesquisadores (JOHNS, 1995; FRANSEN et al., 

1998; RAJESHWARI et al., 2000; SALMIEN et al., 2001; SALMIEN & 

RINTALA, 2002; MANIOS et al., 2003) são unânimes em afirmar que 

aproximadamente 90% do nitrogênio total, presentes nas águas estão na forma de 

nitrogênio amoniacal. Sendo assim, realizou-se uma estimativa da concentração de 

nitrogênio amoniacal. Esta variável, assim como o nitrogênio total não apresentou 

diferença significativa ao compararmos a água de abastecimento e os efluentes dos 

diferentes tratamentos e esses entre si. 

Os resultados obtidos para nitrito foram 0,01 (abastecimento), 0,01 (D40), 

0,01 (D60), 0,01 (D80) e 0,01 (D100), enquanto para nitrato foram 0,92 

(abastecimento), 0,74 (D40), 0,46 (D60), 0,59 (D80) e 0,68 (D100).  O nitrito e o 

nitrato não apresentaram diferença significativa ao compararmos a água de 



 

 

41 

abastecimento e os efluentes dos diferentes tratamentos e esses entre si. Resultados 

semelhantes foram obtidos por KIMPARA (2004), tendo constatado em seu 

estudo, que não houve diferença significativa entre os teores de nitrogênio total, 

amônia, nitrito e nitrato entre os tratamentos e entre estes e a água de 

abastecimento. Entretanto, ZIEMANN et.al. (1992) ao analisar a qualidade da 

água afluente e efluente de viveiros de peixes e camarões de água doce e peixes e 

camarões marinhos, constatou que o efluente apresentou qualidade inferior ao 

afluente na maioria dos parâmetros analisados, tendo os peixes e os camarões de 

água doce as concentrações mais elevadas de materiais suspensos e pigmentos em 

seus efluentes. Em contraste, as concentrações de nitrato e nitrito foram menores 

nos efluentes do que nos afluentes. Segundo o autor, este resultado evidencia que 

em alguns casos os viveiros aqüícolas funcionam como sistemas de tratamento 

absorvendo esses nutrientes. Provavelmente a diminuição do nitrato e nitrito está 

relacionada com o aumento de algas e essas por sua vez estão associadas ao 

aumento das concentrações de pigmento e turbidez da água.  

Segundo a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente, para a 

classe 2, o valor limite de nitrogênio amoniacal total varia de 0,5 a 3,7 mg/L 

dependendo do valor do pH. Considerando que o pH obtido variou de 7,52 a 7,71, 

o valor limite para o nitrogênio amoniacal é de 1,0 a 2,0 mg/L. Os valores limite 

para o nitrito e nitrato são 1,0 mg/L, 10,0 mg/L, respectivamente. Sendo assim, os 

valores encontrados para os compostos nitrogenados estão de acordo a resolução 

(CONAMA, 2005). 



 

 

42 

Os valores médios em relação à Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO5) 

(mg/L) foram 8,44 (abastecimento), 11,75 (D40), 12,00 (D60), 11,33 (D80) e 

12,21 (D100). Esses resultados não apresentaram diferença significativa ao 

compararmos a água de abastecimento e os efluentes dos diferentes tratamentos e 

esses entre si. Este resultado indica que não está havendo eliminação significativa 

da matéria orgânica para o meio ambiente, a mesma está provavelmente, sendo 

acumulada no interior dos viveiros, na biomassa dos camarões e outros 

organismos ou no sedimento. KIMPARA (2004) obteve resultados semelhantes 

para a DBO5.  

A resolução 357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente estabelece para 

águas classificadas em classe 2, o valor máximo de  DBO5  até 5 mg/L, podendo 

exceder este valor caso o estudo da capacidade de autodepuração do corpo 

receptor demonstre que as concentrações mínimas de oxigênio dissolvido (OD) 

previstas não serão desobedecidas (CONAMA, 2005). Entretanto, como os 

resultados obtidos foram superiores a 5 mg/L, não se pode obter conclusões em 

relação à legislação, pois dependerá das características do corpo receptor. 

Os valores médios referente à Demanda Química de Oxigênio (DQO) 

foram 27,06 (abastecimento), 35,48 (D40), 35,13 (D60), 28,77 (D80) e 35,56 

(D100). Esses resultados não apresentaram diferença significativa ao compararmos 

a água de abastecimento e os efluentes dos diferentes tratamentos e esses entre si. 

KIMPARA (2004) obteve resultados semelhantes, verificou em seu estudo que 

não houve diferença significativa entre a água de abastecimento e os tratamentos 



 

 

43 

para esta variável. A pesquisadora atribui esse fato provavelmente devido à grande 

variabilidade de seus resultados. 

 

5.4. Comparação entre os Efluentes das Fases do Cultivo de M. amazonicum 

 

 Os efluentes de todas as fases do cultivo do camarão M. amazonicum, 

larvicultura, berçário e crescimento final foram comparados entre si. Os valores 

médios encontrados para efeito de comparação estão representados a seguir, nas 

Figuras 6 a 14. 

 

  
Figura 6: Valores médios da concentração de 

E. coli (NMP/100mL) dos efluentes 
das diferentes fases de cultivo do M. 
amazonicum. 

Figura 7: Valores médios do pH dos efluentes 
das diferentes fases de cultivo do M. 
amazonicum. 

 
 
 

Oxigênio dissolvido dos efluentes

6,82

11,46

8,38

Larvicultura Berçário Crescimento Final

 
 

 
 

 
 

Figura 8: Valores médios do Oxigênio 
Dissolvido (mg/L) dos efluentes das 
diferentes fases de cultivo do M. 
amazonicum. 

 

Figura 9: Valores médios da Temperatura (ºC) 
dos efluentes das diferentes fases de 
cultivo do M. amazonicum. 

 

pH dos efluentes 

7,72 
8,32 

7,58 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 

E. coli dos efluentes 

0,00 
51,93 

0,00 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 

Temperatura dos efluentes 

27,87 27,51 

29,10 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 



 

 

44 

 
 

 
 

 

Figura 10: Valores médios dos Sólidos Totais 
Suspensos (mg/L) dos efluentes das 
diferentes fases de cultivo do M. 
amazonicum. 

 
 

Figura 11: Valores médios do Nitrogênio Total 
(mg/L) dos efluentes das diferentes 
fases de cultivo do M. 
amazonicum. 

 
 

 

  
Figura 12: Valores médios de Nitrito (mg/L) 

dos efluentes das diferentes fases 
de cultivo do M. amazonicum. 

 
 
 

Figura 13: Valores médios do Nitrato (mg/L) 
dos efluentes das diferentes fases de 
cultivo do M. amazonicum. 

 

 

 

 
Figura 14: Valores médios da Demanda 

Bioquímica de Oxigênio (mg/L) 
dos efluentes das diferentes fases 
de cultivo do M. amazonicum. 

 

 
 

 
 

Sólidos totais suspensos dos efluentes 

10,38 

0,40 0,06 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 

Nitrogênio total dos efluentes 

0,17 

0,42 0,47 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 

Nitrito dos efluentes 

0,11 

0,01 0,01 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 

Nitrato dos efluentes 

5,20 

0,62 

10,58 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 

Demanda bioquímica de oxigênio dos 
efluentes 

5,80 
3,40 

11,82 

Larvicultura Berçário Crescimento Final 



 

 

45 

Os efluentes da larvicultura e berçário apresentaram ausência de E. coli, 

Entretanto, os efluentes dos viveiros de crescimento final apresentaram uma 

concentração média de E. coli de 51,93 NMP/100 mL (Figura 6), provavelmente 

devido ao fato dos viveiros serem mais vulneráveis a contaminação fecal de 

animais homeotermos, pela sua localização em áreas abertas, qualidade da água de 

abastecimento e arraste da água da chuva.  

  O efluente do berçário apresentou a maior média de pH, assim como a 

maior concentração média de oxigênio dissolvido. Os valores médios de pH foram 

7,72, 8,32 e 7,58 nos efluentes da larvicultura, berçário e crescimento final, 

respectivamente (Figura 7). Enquanto os valores médios de OD foram 6,82, 11,46 

e 8,38 mg/L nos efluentes da larvicultura, berçário e crescimento final, 

respectivamente (Figura 8). 

A maior média da temperatura da água ocorreu na fase de larvicultura, 

29,10 ºC (Figura 9). Esta fase requer controle rigoroso da temperatura, que deve 

ser mantida entre 28 e 31 ºC. Segundo RODRIGUES et al., (1991) e VALENTI 

(1996) temperaturas abaixo de 28 ºC, mesmo por poucos dias, podem retardar o 

desenvolvimento larval e prolongar o ciclo de produção. 

A maior média para a concentração de sólidos totais ocorreu no efluente da 

larvicultura, sendo 10,38 mg/L (Figura 10). Este resultado se deve a água salobra 

utilizada nesta fase do cultivo. A elevada concentração de sais aumenta os sólidos 

totais presentes na água. Ao compararmos as concentrações de compostos 

nitrogenados presente nos efluentes, verificamos para o nitrogênio total os valores 

médios de 0,17, 0,42 e 0,47 para os efluentes da larvicultura, berçário e 



 

 

46 

crescimento final, respectivamente (Figura 11). Os seja, os efluentes dos viveiros 

de crescimento final apresentaram maiores concentrações, enquanto os efluentes 

da larvicultura apresentaram menores concentrações para esta variável. 

O inverso ocorreu com as concentrações de nitrito e nitrato, sendo elas 

maiores no efluente da larvicultura e tendo valores menores no berçário e menores 

ainda na fase de crescimento final (Figura 12 e Figura 13).  

Tais resultados são explicados provavelmente devido à ação dos biofiltros 

presentes nos tanques de larvicultura e berçário. Esses filtros biológicos por onde a 

água circula, contém microrganismos nitrificantes, os quais convertem o 

nitrogênio total em nitrito, e este numa forma menos tóxica que é o nitrato.  

A maior média de DBO foi obtida no efluente da fase de crescimento final, sendo 

sua concentração 11,82 mg/L. A larvicultura e berçário apresentaram em seus 

efluentes DBO de 5,80 e 3,40 mg/L, respectivamente (Figura 14). Provavelmente a 

maior concentração desta variável nos viveiros de crescimento final se deve a 

qualidade da água de abastecimento, assim como a quantidade e qualidade da 

ração fornecida aos camarões. 

 

5.5. Qualidade da Água do Efluente dos Viveiros de Crescimento Final 

Durante a Despesca Total dos Camarões 

 

No momento da despesca total em que o viveiro foi esvaziado para a 

retirada dos camarões com a rede, foram colhidas amostras do efluente dos 



 

 

47 

viveiros no 1/3 inicial, 1/3 médio e 1/3 final da despesca de cada viveiro (Figura 

5).  

 Os valores médios obtidos no momento da despesca final e seu desvio 

padrão estão apresenta na Tabela 6. 

Para a realização da ANOVA aplicou-se a transformação de Box-Cox para 

verificar qual variável necessitava de transformação e identificar tal 

transformação. Verificamos que somente as variáveis E. coli (EC), sólidos totais 

suspensos (STS), nitrato (NTRA), nitrogênio total (NT) e demanda química de 

oxigênio (DQO) necessitavam de transformação e as transformações foram, 

respectivamente: 01,0+EC , (STS)8, log (NTRA + 0,01), 1/(NT)2 e DQO . 

Os resíduos de todas as variáveis, após as devidas transformações, 

atenderam às suposições de normalidade e homoscedasticidade. 

 
Tabela 6: Valores médios e seus respectivos desvios padrão das variáveis analisadas dos 

efluentes dos viveiros de crescimento final durante a despesca total: 1/3 inicial, 
1/3 médio e 1/3 final da despesca de cada viveiro. Centro de Aqüicultura da 
Unesp, 2006. 

 
Variáveis Analisadas 1/3 inicial 1/3 médio 1/3 final F_despesca 

E. coli 17,26(±13,56)AB 15,38(±9,5)B 34,10(±20,43)A 3,76** 

pH 7,20(±0,56) 7,22(±0,51) 7,22(±0,5) 0,004NS 

Oxigênio dissolvido 4,81(±0,37) 4,67(±0,39) 4,39(±0,36) 2,97NS 

Temperatura 20,82(±1,94)B 22,18(±2,31)AB 23,74(±2,64)A 3,57** 

Sólidos totais 0,052(±0,001)A 0,050(±0,002)B 0,047(±0,003)C 15,52** 

Nitrato 1,00(±0,74) 0,72(±0,61) 0,33(±0,51) 3,17NS 

Nitrito 0,01(±0,006) 0,01(±0,007) 0,01(±0,012) 0,07NS 

Nitrogênio total 0,27(±0,04)B 0,30(±0,05)AB 0,39(±0,17)A 4,62** 

Demanda química de oxigênio 43,00(±54,63) 53,56(±42,73) 82,67(±90,93) 0,81NS 

Demanda bioquímica de oxigênio 11,89(±4,04) 13,33(±6,58) 16,67(±6,2) 1,65NS 

Médias seguidas de mesma letra não diferem significativamente entre si ao nível de 5% de 
probabilidade pelo teste de Tukey. 
** - significativo pelo teste F ao nível de 5% de probabilidade; 
NS - não significativo pelo teste F ao nível de 5% de probabilidade; 

 



 

 

48 

A maior concentração de E. coli ocorreu no final da despesca e essa foi 

significativamente maior, em relação ao 1/3médio, provavelmente devido à 

suspensão do sedimento e microrganismos que se encontravam no fundo do 

viveiro (Tabela 6). 

 O pH, assim como o oxigênio dissolvido não apresentou diferença 

significativa em nenhum momento da despesca. 

 A temperatura da água aumentou significativamente durante a despesca. 

KIMPARA (2004) verificou em sua pesquisa que a temperatura da água na 

superfície sempre foi superior à do fundo do viveiro. Sendo assim, quando se 

inicia o processo de esvaziamento do viveiro pela tubulação de drenagem 

localizada no fundo, a água é drenada de baixo para cima, eliminando 

primeiramente a água que está no fundo e possui, portanto, temperatura mais baixa 

do que a da superfície. 

 As concentrações de sólidos totais foram diminuindo significativamente 

durante a despesca. Este fato se deve provavelmente porque no início desta, há um 

maior acúmulo de lama nas imediações da tubulação de drenagem, 

consequentemente lançando no meio ambiente uma maior quantidade de sólidos 

totais, logo quando começa o escoamento de água do viveiro. 

 As concentrações de nitrogênio total foram aumentando significativamente 

durante a despesca, enquanto as concentrações de nitrito e nitrato não 

apresentaram diferença significativa em nenhum momento desta.  

 Os valores médios de DBO e DQO durante a despesca, não apresentaram 

diferença significativa.  



 

 

49 

As variáveis OD e DBO5 na despesca total apresentaram resultados em 

desacordo com a legislação (CONAMA, 2005).  Entretanto, a resolução permite 

exceder o valor da DBO 5 mg/L, caso o estudo da capacidade de autodepuração do 

corpo receptor demonstre que as concentrações mínimas de OD previstas não 

serão desobedecidas.  

A concentração de oxigênio varia ao longo do dia, sendo menor pela manhã 

devido ao processo de respiração realizada pelos animais do viveiro durante a 

noite e maior no final da tarde devido ao processo de fotossíntese realizada pelo 

fitoplâncton. Sendo assim, a renovação da água, assim como as despescas deverão 

ser realizadas no final da tarde e/ou deverá ser implantado o uso de aeradores, afim 

de que sejam atendidas as exigências da resolução. 

As demais variáveis apresentaram resultados de acordo com a resolução 

357 do Conselho Nacional do Meio Ambiente (CONAMA, 2005).  

 

5.6. Produtividade e Balanço das Quantidades de Nitrogênio Total, Demanda 

Bioquímica de Oxigênio (DBO) e Sólidos Totais Suspensos (STS) 

 

A produtividade de camarões foi calculada (MORAES-VALENTI, em fase de 

redação) e relacionada como o balanço das quantidades de nitrogênio total, DBO e 

STS, visando avaliar se houve diferença entre as densidades estudadas. Essas 

informações são de extrema importância para o sucesso do cultivo, pois é 

necessário que haja uma produção lucrativa, sem que ocorram danos ao meio 



 

 

50 

ambiente. Ou seja, a aqüicultura moderna busca atingir o equilíbrio entre essas 

variáveis e assim a sustentabilidade do sistema. 

 

5.6.1 Produtividade 

A intensificação desses sistemas de cultivo tem sido alvo de estudos, já que em 

altas densidades a água é utilizada de forma otimizada, reduzindo o volume gasto 

por unidade de biomassa produzida. Em estudo realizado anteriormente, 

MORAES-RIODADES et al. (2006), avaliou o efeito da intensificação do cultivo 

de M. amazonicum nas características da água dos viveiros, os quais foram 

estocados nas densidades 10, 20, 40 e 80 juvenis/m2. Esse sistema de produção 

apresentou alta capacidade de assimilação do material alóctone (ração, 

fertilizante). Portanto, MORAES-RIODADES et al. (2006), concluíram que esta 

espécie pode ser cultivada em altas densidades de estocagem (até 80 juvenis/m2) 

com alta produtividade e sem mudanças significativas na qualidade da água.  

Resultados semelhantes referente à produtividade foram encontrados no 

ciclo de produção da presente pesquisa. Comparou-se o peso médio dos camarões, 

a produtividade e a sobrevivência nas densidades de estocagens 40, 60, 80 e 100 

pós-larvas de M. amazonicum /m 2 (MORAES-VALENTI, em fase de redação) 

(Tabela 7). 

   
 
 
 
 
 
 



 

 

51 

Tabela 7: Valores médios do peso (g), da produtividade (kg/ha) e sobrevivência (%) dos 
camarões cultivados em diferentes densidades de estocagem, 40, 60, 80 e 100 
pós-larvas de M. amazonicum /m 2. Centro de Aqüicultura da Unesp, 2006. 
(MORAES-VALENTI, em fase de redação) 

  

Densidade Peso (g) Produtividade (Kg/ha) Sobrevivência (%) 
de estocagem       

D40 4,02a 1174b 76,67 

D60 3,82b 1312b 59,33 

D80 3,59b 1543ab 56,00 

D100 3,36b 2039a 61,67 
 

De acordo com os resultados obtidos neste estudo, o peso médio dos camarões 

foi significativamente maior estatisticamente na densidade 40 ao compará-la com 

a densidade 100. Entretanto, não houve diferença significativa para essa variável 

entre as densidades 60, 80 e 100. Os resultados de sobrevivência não apresentaram 

diferença entre as densidades. A produtividade entre as densidades 40, 60 e 80 não 

apresentou diferença significativa. No entanto, a produtividade na densidade 100 

foi significativamente superior ao compará-la com as demais densidades.  Ou seja, 

a intensificação do cultivo até a densidade 100 juvenis/m2 não provocou queda na 

produtividade. 

   

5.6.2. Balanço das Quantidades de Nitrogênio Total, Demanda Bioquímica de 

Oxigênio (DBO) e Sólidos Totais Suspensos (STS) 

 O Balanço das quantidades de nitrogênio total, demanda bioquímica de 

oxigênio (DBO) e sólidos totais suspensos (STS) foram calculados e relacionados 

com a produtividade, visando obter mais informações do comportamento dessas 

variáveis na dinâmica desse sistema de cultivo. 



 

 

52 

A) Balanço de Nitrogênio Total: 

A partir dos resultados obtidos foi realizado o cálculo do balanço de 

Nitrogênio Total na fase de crescimento final, considerando as diferentes 

densidades de estocagem: 40, 60, 80 e 100 juvenis de M. amazonicum/m2. 

Calculou-se a quantidade de Nitrogênio Total (Kg)/ hactare/dia presente na água 

de abastecimento e efluente dos viveiros, a diferença entre a água do efluente e de 

abastecimento diário, ou seja, a quantidade que foi assimilada pelo viveiro 

diariamente, a quantidade de Nitrogênio Total que entrou no viveiro pela água, 

ração e fertilizante durante os 133 dias de cultivo e quantidade de Nitrogênio total 

(Kg) presente no efluente por Kg de camarão produzido durante todo o período de 

cultivo. Os resultados obtidos estão apresentados a seguir na Tabela 8. 

Tabela 8: Valores médios e desvio padrão do cálculo da quantidade de Nitrogênio Total 
(Kg)/ hactare/dia da água de abastecimento e efluente, diferença entre a água 
que do efluente e de abastecimento diário, quantidade de Nitrogênio Total que 
entrou no viveiro (água/ ração /fertilizante) durante os 133 dias de cultivo e 
quantidade de Nitrogênio total (Kg) presente no efluente por Kg de camarão 
produzido durante os 133 dias. 

                          

  Densidades de Estocagem 
    D40   D60   D80   D100 
  Média Desvio   Média Desvio   Média Desvio   Média Desvio 

      Padrão     Padrão     Padrão     Padrão 

KG N/HA/DIA  2,99 0,64  2,19 0,23  1,79 0,32  2,41 1,12 

(abastecimento)            
             
KG N/HA/DIA  1,23 1,11  0,73 0,58  0,95 0,74  0,93 0,92 

(efluente)            
             
Saída - Entrada  -1,77 0,71  -1,46 0,62  -0,84 0,68  -1,48 0,45 

(Dia)            
             

Kg N/HA  -234,89 94,30  -193,79 82,55  -111,51 89,96  -196,26 63,71 
(cultivo 133 dias)            
             

Kg N/Kg  0,147 0,139  0,080 0,069  0,087 0,076  0,070 0,078 
Camarão 

(cultivo 133 dias)                       

             



 

 

53 

           
Verificou-se que as médias das quantidades de Nitrogênio Total (Kg)/ha/dia 

da água de abastecimento é sempre maior que a encontrada na água do efluente, 

em todas as densidades analisadas. Este resultado se deve à assimilação de parte 

do Nitrogênio pelo próprio viveiro. 

Considerou-se que a quantidade de Nitrogênio Total que entrou no viveiro 

durante os 133 dias de cultivo foi oriunda da água de entrada, da ração e do 

fertilizante. As percentagens das médias do Nitrogênio Total proveniente da água 

de abastecimento foram: 52,47% (D40), 45,20% (D60), 40,54% (D80) e 46,27% 

(D100); da ração: 38,26% (D40), 43,28% (D60), 47,59% (D80) e 41,83% (D100) 

e do fertilizante: 9,26% (D40), 11,52% (D60), 11,87% (D80) e 11,89% (D100). 

Esses resultados e seu desvio padrão estão apresentados na Figura 15.  

Percentagem de Nitrogênio Total que entrou no viveiro 

0
10

20
30

40
50

60
70

D40 D60 D80 D100

Densidades de estocagem de pós-larvas de M. amazonicum /m 2

N
it

ro
g

ên
io

 T
o

ta
l (

%
)

A

C

F

 

Figura 15: Percentagem de Nitrogênio Total presente na água de entrada (A), na ração 
(C) e fertilizante (F) na fase de crescimento final, em diferentes densidades 
de estocagem: 40, 60, 80 e 100 juvenis de M. amazonicum/m2. 

 

  Com base na quantidade de Nitrogênio Total que entrou no viveiro 

calcularam-se a percentagem das médias da quantidade dessa variável que foi 

assimilada pelo viveiro e liberada no efluente durante os 133 dias de cultivo. Os 



 

 

54 

resultados de assimilação pelo viveiro foram: 82,01% (D40), 87,23% (D60), 

81,70% (D80) e 85,03% (D100) e desta variável liberada pelo efluente, 17,99% 

(D40), 12,77% (D60), 18,30% (D80) e 21,62% (D100).  Esses resultados e seu 

desvio padrão estão apresentados na Figura 16.  

 

 

 Nota-se que grande parte do Nitrogênio Total é assimilado pelo viveiro, 

sendo apenas uma pequena percentagem eliminada no efluente.  

Quantidade de Nitrogênio total (Kg) presente no efluente por Kg de 

camarão produzido apresentados pela Tabela 8, foram 0,147 (D40), 0,080 (D60), 

0,087 (D80) e 0,070 (D100). Tais resultados são de grande importância, pois nos 

revelam que com a intensificação do cultivo até a densidade de 100 juvenis/m2, 

não reflete em um acréscimo na quantidade de Nitrogênio total (Kg) presente no 

efluente / hactare/ Kg de biomassa de camarão produzido. Esses dados corroboram 

a sustentabilidade do sistema para a variável analisada. 

Percentagem de Nitrogênio Total assimilado pelo viveiro e eliminado no 
efluente 

0

20

40

60

80

100

120

D40 D60 D80 D100

Densidades de estocagem de pós-larvas de M. amazonicum /m2

N
it

ro
g

ên
io

 T
o

ta
l (

%
)

%Viveiro

%Efluente

 

Figura 16: Percentagem de Nitrogênio Total assimilado pelo viveiro e presente no efluente na 
fase de crescimento final, em diferentes densidades de estocagem: 40, 60, 80 e 100 
juvenis de M. amazonicum/ m2. 



 

 

55 

B) Balanço da Demanda Bioquímica de Oxigênio (DBO): 

A partir dos resultados obtidos foi realizado o cálculo do balanço de DBO 

na fase de crescimento final, considerando as diferentes densidades de estocagem: 

40, 60, 80 e 100 juvenis de M. amazonicum/m2. 

Os resultados obtidos estão apresentados a seguir na Tabela 9. 

Tabela 9: Valores médios e desvio padrão do cálculo da quantidade de DBO (Kg)/ha/dia 
da água de abastecimento e do efluente, diferença entre a água de 
abastecimento e efluente diario, quantidade de DBO que foi assimilada pelo 
viveiro durante os 133 dias de cultivo e quantidade de DBO (Kg) presente no 
efluente por Kg de camarão produzido durante os 133 dias. 

                         

  Densidades de Estocagem 
    D40   D60   D80   D100 
  Média Desvio   Média Desvio   Média Desvio   Média Desvio 

      Padrão     Padrão     Padrão     Padrão 

KG DBO/ha/DIA  57,85 12,34  42,29 4,38  34,51 6,15  46,54 21,56 

(abastecimento)            
             

KG DBO/ha/DIA  33,09 33,64  19,27 14,43  24,14 21,51  23,41 21,27 
(efluente)            

             
Saída - Entrada  -24,76 23,58  -23,02 14,87  -10,36 19,32  -23,13 8,13 

(Dia)            
             

Kg DBO/ha  -3293,08 3135,76  -3062,16 1978,17  -1378,4 2569,75  -3076,4 1080,82 
(cultivo 133 dias)            

             
Kg DBO/Kg  3,90 4,17  2,09 1,83  2,22 2,14  1,69 1,76 
Camarão 

(cultivo 133 dias)            
                        

 

Verificou-se que as médias das quantidades de DBO (Kg)/ha/dia da água de 

entrada é sempre maior que a encontrada na água do efluente, em todas as 

densidades analisadas. Os resultados obtidos devem-se à assimilação da DBO pelo 

próprio viveiro.  

Quantidade de DBO (Kg) presente no efluente/ hactare/ Kg de biomassa de 

camarão produzido apresentada pela Tabela 9 nos permite concluir que a 



 

 

56 

intensificação do cultivo até a densidade de 100 juvenis/m2, não corresponde a um 

acréscimo na quantidade dessa vaiável. Esses dados corroboram a sustentabilidade 

do sistema para a variável analisada. 

 

C) Balanço de Sólidos Totais Suspensos (STS): 

A partir dos resultados obtidos foi realizado o cálculo do balanço de STS na 

fase de crescimento final, considerando as diferentes densidades de estocagem: 40, 

60, 80 e 100 juvenis de M. amazonicum/m2. 

Os resultados obtidos estão apresentados a seguir na Tabela 10. 

 
Tabela 10: Valores médios e desvio padrão do cálculo da quantidade de STS (Kg)/ ha/dia 

da água de abastecimento e do efluente, diferença entre a água de 
abastecimento e efluente diário, quantidade de STS que foi assimilada pelo 
viveiro durante os 133 dias de cultivo e quantidade de STS (Kg) presente no 
efluente por Kg de camarão produzido durante os 133 dias. 

                         

  Densidades de Estocagem 
    D40   D60   D80   D100 
  Média Desvio   Média Desvio   Média Desvio   Média Desvio 

      Padrão     Padrão     Padrão     Padrão 
KG 

STS/HA/DIA  0,44 0,09  0,32 0,03  0,26 0,05  0,35 0,16 

(abastecimento)            
             

KG 
STS/HA/DIA  0,17 0,15  0,28 0,28  0,13 0,1  0,19 0,23 

(efluente)            
             
Saída - Entrada  -0,26 0,1  -0,04 0,25  -0,13 0,09  -0,16 0,1 

(Dia)            
             

Kg STS/HA  -35,17 12,81  -5,28 32,62  -17,83 12,26  -21,5 12,97 
(cultivo-133 dias)            
             

Kg STS/Kg  0,020 0,019  0,011 0,010  0,012 0,010  0,004 0,001 
Camarão 

(cultivo 133 dias)            
                        
             

 



 

 

57 

Verificou-se que as médias das quantidades de STS (Kg)/ha/dia da água de 

entrada é sempre maior que a encontrada na água do efluente, em todas as 

densidades analisadas. Os resultados obtidos devem-se à assimilação de STS pelo 

próprio viveiro.  

Quantidade de STS (Kg) presente no efluente/ ha/ Kg de biomassa de 

camarão produzido apresentada pela Tabela 10 nos revelam que a intensificação 

do cultivo até a densidade de 100 juvenis/m2, não reflete um acréscimo na 

quantidade dessa variável. Esses dados corroboram a sustentabilidade do sistema 

para a variável analisada. 

Alguns estudos têm sido realizados no sul da Tailândia referentes à 

intensificação da produção e ao balanço de nutrientes.  Tais estudos revelam que a 

intensificação da produção e a elevada concentração de animais, assim como o 

aumento do material orgânico oferece condições ideais para o aparecimento de 

novas doenças, especialmente as doenças virais. A quantidade real de nutrientes 

assimilados na biomassa do camarão é uma fração pequena, sendo a maior parte 

incorporada na biomassa do plâncton, volatilizados ou aprisionados no sedimento. 

O material orgânico excessivo acumulado no sedimento pode provocar a liberação 

de compostos tóxicos como a amônia, além do déficit de oxigênio presente na 

água. Sendo assim, se faz necessário conhecer a capacidade de suporte do sistema 

como um todo, pois os sistemas intensivos utilizando altas taxas de alimentação, 

desperdício de nutrientes e doenças pode causar um colapso na produção e nos 

ecossistemas costeiros (FUNGE-SMITH & BRIGGS, 1998).  



 

 

58 

A biogeoquímica do nitrogênio é dominada por transformações biológicas e 

a aplicação em excesso de ração e fertilizantes, além da capacidade do sistema 

assimilar pode levar à deterioração da qualidade da água causando sérios prejuízos 

na produtividade e ao meio ambiente (HARGREAVES, 1998). 

Em Bangladesh, estudo realizado em fazendas de produção de camarões, P. 

monodon, verificou em relação ao nitrogênio que a água de abastecimento 

contribui com 55% e o fertilizante 29% do que entra no sistema, no efluente são 

eliminados 78% e o camarão assimila 12%. Contatou-se ainda que 78 g de 

nitrogênio foi eliminado para cada kg de camarão produzido (ISLAM et al., 2004). 

Na Austrália, em fazendas onde também se produzia a espécie P. monodon, 

Verificou que a maior parte do nitrogênio, 90% foi proveniente da ração utilizada 

e a água de abastecimento contribuiu com 5%, sendo 22% assimilado e 

incorporado na biomassa dos camarões, 14% retido no sedimento e 61% eliminado 

pelo efluente. Somente 3% do nitrogênio não foram contabilizados, assumindo que 

esta fração foi perdida para atmosfera por desnitrificação ou volatilização da 

amônia (JACKSON et al., 2003). 

 No Japão, realizou-se uma pesquisa com o cultivo de P. monodon em 

tanques de concreto, em sistema fechado, sem troca de água por um período de 90 

dias para determinar o efeito das densidades 25 e 50 juvenis/m2. A sobrevivência 

não foi significativamente diferente e a produção foi maior no tratamento com 

maior densidade. O balanço de nutrientes que o camarão assimilou foi de 23 a 

31% de nitrogênio e 10 a 13 % do fósforo que entraram no sistema. A alimentação 

foi a principal fonte desses nutrientes, contribuindo a ração com 76 a 92% do 



 

 

59 

nitrogênio e 70 a 91% do fósforo. O efluente final da despesca apresentou de 14 a 

28% de nitrogênio e 12 a 29% de fósforo. Esse estudo demonstrou a viabilidade do 

sistema fechado para manter a qualidade da água aceitável para o desenvolvimento 

dos camarões e reduzir a perda de nutrientes no efluente (THAKUR & LIN, 2002). 

  

 

6. CONCLUSÕES 

• Verificou-se durante a fase de larvicultura que as concentrações médias 

referente às variáveis: E. coli, pH, oxigênio dissolvido e nitrogênio total, 

diminuíram; nitrito, aumentou e temperatura, sólidos totais, nitrato e 

demanda bioquímica de oxigênio não tiveram alterações significativas. 

 

• Na fase de larvicultura os resultados obtidos para o efluente referente às 

variáveis: E. coli, pH, oxigênio dissolvido, temperatura e sólidos totais 

estavam de acordo com a resolução 357 do Conselho Nacional do Meio 

Ambiente (CONAMA, 2005). Entretanto, nitrito, nitrato e demanda 

bioquímica de oxigênio estavam ligeiramente acima do padrão estabelecido 

pela legislação. 

 

• Verificou-se durante a fase de berçário que as concentrações médias 

referente às variáveis: pH, diminuíram; oxigênio dissolvido, sólidos totais 

suspensos e nitrato, aumentaram e E. coli, temperatura, nitrito, nitrogênio 

total e demanda bioquímica de oxigênio não tiveram alterações 

significativas. 



 

 

60 

• Na fase de berçário os resultados obtidos para o efluente referente a todas 

variáveis analisadas estavam de acordo com a resolução 357 do Conselho 

Nacional do Meio Ambiente (CONAMA, 2005), com exceção do 

nitrogênio total, para qual não há legislação. 

 

• Na fase de crescimento final, para as variáveis analisadas, não houve 

diferença significativa entre a água de abastecimento e os efluentes, 

indicando que a matéria orgânica adicionada por meio da ração e 

fertilizante, ficaram retidos no interior dos viveiros, podendo estar na 

coluna d’água, na biomassa dos camarões ou retido no sedimento. 

 

• Não houve diferença significativa para as variáveis analisadas, entre as 

diferentes densidades de estocagem 40, 60, 80 e 100. Sendo assim, a 

intensificação do cultivo não provoca alteração da água até a densidade de 

100 juvenis de M. amazonicum/m2.   

 

• Todas as variáveis estão de acordo com a legislação vigente (CONAMA, 

2005), com exceção da demanda bioquímica de oxigênio. Entretanto, para 

essa variável devemos considerar ainda as características do corpo receptor. 

 

• Constatou-se ao se compararem os efluentes da larvicultura, berçário e 

engorda que as variáveis: temperatura, sólidos totais suspensos, nitrito e 

nitrato, apresentaram maiores concentrações na fase de larvicultura; pH e 



 

 

61 

oxigênio dissolvido apresentaram maiores concentrações na fase de 

berçário e E. coli, nitrogênio total e demanda bioquímica de oxigênio, 

apresentaram maiores concentrações na fase de crescimento final. 

 

• Durante a despesca total, ao compararmos 1/3 inicial, 1/3 médio e 1/3 final 

constatou-se que as concentrações médias de E. coli diminuíram e voltou a 

aumentar no final, a temperatura e nitrogênio total aumentaram e os sólidos 

totais suspensos diminuíram ao longo da despesca. 

 

• Constatou-se na fase de crescimento final, por meio do cálculo do balanço 

de nitrogênio total, demanda bioquímica de oxigênio e sólidos totais, que a 

maior parte desses ficaram retidos no interior dos viveiros, podendo estar 

na coluna d’água, na biomassa dos camarões ou retido no sedimento. 

 

• Constatou-se na fase de crescimento final, por meio do cálculo do balanço 

de nitrogênio total, demanda bioquímica de oxigênio e sólidos totais, que 

não houve diferença significativa para tais variáveis, entre as diferentes 

densidades de estocagem 40, 60, 80 e 100. Portanto, a intensificação do 

cultivo até a densidade de 100 juvenis de M. amazonicum/m2 não provocou 

alteração da água.   

 

 
 
 
 



 

 

62 

7. CONSIDERAÇÕES FINAIS 

 

O cultivo de M. amazonicum, referente à qualidade do efluente, apresentou 

baixo potencial de impacto ambiental. Sendo assim, pesquisas deverão ser 

realizadas com densidades mais elevadas, visando conhecer a capacidade de 

suporte do sistema, já que a intensificação do cultivo é positiva, desde que não 

comprometa a produtividade e a qualidade do ambiente, pois promove a 

otimização do uso da água. Deverão ser realizados estudos de balanço de 

nutrientes que verifiquem também as características do sedimento, já que foi 

verificada a possibilidade dos nutrientes estarem sendo retidos pelo mesmo. 

Ressalta-se ainda, tendo em vista a sustentabilidade desse sistema de produção, a 

importância de serem realizadas pesquisas na fase de crescimento final com 

recirculação total de água, o que minimizaria o impacto ambiental provocado pela 

quantidade de água utilizada por Kg de biomassa de camarão produzido. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 

 

63 

8. REFERÊNCIAS 
 

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