Marila Gaste Martinez Avaliação dos diferentes métodos de análise do dismorfismo eritrocitário, assim como a quantificação da proteinúria e a albuminúria na determinação da origem de hematúria. Dissertação apresentada ao Programa de Pós-graduação em Fisiopatologia em Clínica Médica da Faculdade de Medicina de Botucatu – UNESP para obtenção do título de Mestre em Fisiopatologia em Clinica Médica Luis Cuadrado Martin - Orientador – Vanessa dos Santos Silva - Co-orientadora - Botucatu-SP 2013 FICHA CATALOGRÁFICA ELABORADA PELA SEÇÃO DE AQUIS. E TRAT. DA INFORMAÇÃO DIVISÃO TÉCNICA DE BIBLIOTECA E DOCUMENTAÇÃO - CAMPUS DE BOTUCATU - UNESP BIBLIOTECÁRIA RESPONSÁVEL: ROSEMEIRE APARECIDA VICENTE Martinez, Marila Gaste. “Avaliação dos diferentes métodos de análise do dismorfismo eritrocitário, assim como a quantificação da proteinúria e a albuminúria na determinação da origem de hematúria” / Marila Gaste Martinez. – Botucatu : [s.n.], 2013 Dissertação (mestrado) – Universidade Estadual Paulista, Faculdade de Medicina de Botucatu Orientador: Luis Cuadrado Martin Capes: 40101134 1. Hematúria. 2. Aparelho urinário – Doenças. 3. Urina - Análise. 4. Eritrocitos. 5. Proteinúria. 6. Albuminuria. 7. Microscopia. Palavras-chave: Dismorfismo eritrocitário, acantócitos, codócitos, proteinúria, albuminúria, microscópio óptico convencional, microscópio de contraste de fase. Marila Gaste Martinez Avaliação dos diferentes métodos de análise do dismorfismo eritrocitário, assim como a quantificação da proteinúria e a albuminúria na determinação da origem de hematúria. Dissertação apresentada ao Programa de Pós-graduação em Fisiopatologia em Clínica Médica da Faculdade de Medicina de Botucatu – UNESP para obtenção do título de Mestre em Fisiopatologia em Clinica Médica Botucatu-SP 2013 Dedicatória Dedico este trabalho a: Deus Por me amparar nos momentos difíceis, me dar força interior para superar as dificuldades, mostrar os caminhos nas horas incertas e me suprir em todas as minhas necessidades; Minha Mãe Vanderci Gaste Martinez Meu exemplo de mulher, pelo amor e dedicação, por sua dedicação, pelo amor que me fez mais forte, fazendo entender que sou capaz de ir mais além, por tantas vezes que abdicastes teus sonhos para realizar os meus e abristes mão das tuas vontades para realizar os meus caprichos. A você minha linda que desde o começo me incentivou a busca de novos conhecimentos, me dando conselhos, contribuindo para o meu crescimento. Esta vitória também é sua. Ao meu amado Pai Jose Carlos Martinez (in memorian) Pai agradeço a você por tudo que hoje sou... Se sei o que é ser uma mulher independente, de caráter e personalidade é porque me espelhei em você. Só eu sei o quanto está sendo difícil essa vida sem você e como queria que estivesse ao meu lado neste momento, sentado na primeira fila como sempre me dizia, vivenciando mais essa vitória. Você sempre me deu tudo de melhor. Meu herói, melhor amigo, você foi e sempre será o melhor pai do mundo. Onde estiver, saiba que você é o responsável por este momento tão marcante em minha vida. Eternas Saudades! As minhas irmãs Melissa e Mariana Gaste Martinez Companheiras, amigas inseparáveis, meus maiores exemplos, sempre me dando conselhos, me incentivando a nunca desistir e me apoiando nas minhas decisões, por participarem de todos os momentos bons e difíceis nesta trajetória e pela amizade que com certeza será eterna. A minha Avó Conceição Ap. dos Santos Martinez Por seu exemplo de força, inteligência e por nunca me deixar desistir por mais difícil que fosse o caminho a trilhar. Rodrigo Orfeu Mariano Meu porto seguro, meu grande amor, a você, por ser talvez o meu maior admirador e incentivador, por dividir comigo todos os momentos destas e outras conquistas, e em especial, por estar ao meu lado nos dias mais difíceis ajudando-me a vencer cada obstáculo, por seu carinho amor e amizade. Aos meus avôs José Martinez e Jose Gaste (in memorian) Que com suas alegrias, me mostravam o outro lado da vida sempre sorrindo! Muitas Saudades! Aos meus tios e Padrinhos Paulo Sergio Martinez e Conceição C. Martinez Que sempre estiveram ao meu lado em todos os momentos, Obrigada por todo o carinho e cumplicidade, minha segunda família quem sempre poderei contar. Aos meus primos Paulo Cesar e Marcos e minhas primas Ana Paula e Patrícia Meus irmãos de coração, que estarem sempre presente em todos os momentos de minha vida. As minhas amigas de ontem hoje e sempre Sueli, Fernanda, Anabele, Thais, Deinha, Andréia (Perse), Carol (Venk’s), Vivian e Paulinha, por sempre me apoiarem em todos os momentos alegres ou tristes, pelas risadas, pelos laços atados nesses anos de convivência e por todas as experiências compartilhadas. Suas lindas Amo vocês. Aos meus amigos queridos Alexandre (Spit), Fabrício (Dalva), Eduardo (Du), Luciano (Lu), Felipe (toca), Juber e Sandro, que trago na lembrança e no coração, pelo apoio constante, vibrando por cada vitória, por compreenderem minhas ausências e cobrarem minha presença em momentos inesquecíveis. A minha “sogrinha” Heloisa Que talvez não saiba a importância que teve em mais esta conquista, sempre me apoiando com seu carinho e amizade! A “neninha” Que sempre me incentivou com seu jeitinho simples, a não desistir nunca. Obrigada! Agradecimento Especial Agradecimentos especiais Ao meu Orientador Luis Cuadrado Martin, Sou inteiramente grata por essa orientação que ultrapassa este trabalho, bem como o imenso carinho nas horas mais difíceis de minha vida e nos momentos de dificuldade, agradeço o privilégio de ter confiado em mim e me ajudar a concretizar este sonho. Muito Obrigada! A minha Co-orientadora Vanessa dos Santos Silva Minha admiração por você vai além do trabalho, mulher esposa, mãe dedicada, médica, pesquisadora e acima de tudo uma grande amiga. Obrigada por tudo! Agradecimentos Agradecimentos Agradeço a Faculdade de Medicina de Botucatu - UNESP-, pela existência e permissão para a realização deste trabalho. A todos os pacientes participantes deste estudo, pois sem eles não seria possível a realização desta pesquisa. A Dra. Paula Bottini na qual me concedeu a oportunidade de realizar meu treinamento em dismorfismo eritrocitário no Laboratório de análise clínicas da UNICAMP. Obrigada por esta grande oportunidade. Aos funcionários da Pós-graduação da Faculdade de Medicina de Botucatu, que com muito préstimo, sempre estiveram à disposição para esclarecer e auxiliar-me em qualquer duvida durante o período do curso de mestrado. Especialmente a Ana Mengue, pelos momentos partilhados, sem esmorecimento e a todos os professores no qual tive a honra de ter tido aula e que fizeram parte deste caminhar. A Dra. Carmen Amaro que colaborou com a execução deste trabalho disponibilizando os pacientes do ambulatório de litíase renal, obrigada pela amizade e pela imensa ajuda. Agradeço a Dra. Adriana Polachini do Valle, que me autorizou a utilizar os serviços do Laboratório de Análises Clinicas sempre com um sorriso no rosto, me incentivado na execução deste trabalho. Obrigada por ter sido atenciosa comigo, mesmo quando estava repleta de afazeres. Obrigada a Dra. Maria Luiza C. S. Oliveira, bióloga do laboratório de Patologia que me ensinou as técnicas de coloração descritas neste trabalho, sempre me auxiliando quando precisava com todo carinho e atenção. Ao Prof. Dr. Roberto Jorge da Silva Franco pelo incentivo a minha pesquisa e amizade, antes mesmo de me tornar aluna regular do curso de Fisiopatologia em Clínica Médica. Ao Dr. Newton e ao Prof Dr. Pasqual Barretti, minha banca do exame de qualificação pelas críticas e sugestões apresentadas, pelo incentivo a seguir em frente, e a amizade. Obrigada. Aos amigos do Laboratório de Análises Clínicas Marcos, Paula, Elena por terem me ensinado a técnica de urinálise e sempre me auxiliarem quando foi preciso. A Regina chefe do laboratório de Citologia que me disponibilizou este local, para que fosse executado o presente trabalho, além da amizade, carinho e admiração. Obrigada As amigas do Laboratório de Análises Clínicas Rita Borges dos Santos e Aline Garcia Aun no auxilio da dosagem de proteinúria e albuminúria e a chefe do laboratório de Bioquímica Maria Salete Sartori, por ter permitido o desenvolvimento dessas análises e por me ensinar quando as dúvidas apareciam. Aos Funcionários do Departamento de Clínica Médica, Elizângela, Mario, Bruno, Laura, Renato e Alexandre, pelos serviços prestados, pelo carinho e a amizade durante esses anos de convivência Ao Gap em especial a Rita de Cássia que esteve disposta a me atender sempre que precisei, me auxiliando nas prestações de contas e dúvidas que surgiam, durante essa etapa de minha vida, além do respeito e carinho que cresceu no decorrer desses anos. Ao estatístico José Eduardo Corrente, por ter me ajudado nas comparações estatísticas de curva ROC. Obrigada. Aos funcionários do Comitê de Ética e Pesquisa no auxilio para a permissão e execução no desenvolvimento deste trabalho. A minha amiga e professora de Inglês Priscila, que me auxiliou nas traduções. Obrigada. A Fundação de Amparo a Pesquisa -FAPESP- pelo apoio financeiro concedido. E a todos aqueles que direta ou indiretamente contribuíram para a realização deste trabalho durante todos esses anos e me apoiaram em cada decisão. Muito Obrigada! Epígrafe “Sem sonhos, a vida não tem brilho. Sem metas, os sonhos não têm alicerces. Sem prioridade, os sonhos não se tornam reais. Sonhe, trace metas, estabeleça prioridade e corra riscos para executar seus sonhos. Melhor é errar por tentar do que errar por se omitir! Não tenhas medo dos tropeços da jornada. Não podemos esquecer que nós, ainda que incompleto, fomos o maior aventureiro da história.” (Augusto Cury) Resumo Resumo Há discordância na literatura quanto à necessidade da realização da microscopia de fase para avaliação da origem da hematúria (glomerular ou não glomerular), isso mostra a necessidade de mais estudos para validar as modalidades de avaliação morfológica da hematúria. Os objetivos deste trabalho foram determinar o melhor ponto de corte da porcentagem dos diferentes padrões de células dismórficas na detecção da hematúria glomerular pelo microscópio óptico convencional e contraste de fase, verificar se a presença de proteinúria ou albuminúria pode auxiliar no diagnóstico da origem da hematúria e determinar o melhor ponto de corte para este parâmetro. Foram avaliadas de maneira cega 131 amostras de urina sendo 66 amostras de portadores de glomerulopatias e 65 amostras dos portadores de litíase renal da Faculdade de Medicina de Botucatu. Utilizaram-se amostras isoladas com densidade >1007 e com mais de 5 hemácias por campo de grande aumento. Verificou-se a presença e a porcentagem de codócitos e acantócitos tanto em microscópio óptico convencional com sedimento fresco e fixado submetidos à coloração de Papanicolaou e Panótico rápido LB e sedimento urinário fresco avaliado em microscópio de contraste de fase, além de determinar o índice de proteinúria e o índice de albuminúria. Os resultados desses métodos foram comparados entre si. Realizou-se regressão linear e diagrama de Bland-Altman das hemácias dismórficas para comparar os diferentes métodos. Curvas ROC foram traçadas para determinar a área sob a curva (ASC) e o melhor ponto de corte (PC) foi determinado pela maior soma de sensibilidade e especificidade. Nesse ponto foram calculadas a sensibilidade (S) e especificidade (Es), Valor Preditivo Positivo (VPP) e Valor Preditivo Negativo (VPN). No microscópio óptico convencional com sedimento urinário fresco, a ASC do dismorfismo eritrocitário total foi a que apresentou melhor resultado no diagnóstico da hematúria com ASC (IC 95%) de 0,93 (0,89-0,97), PC de ≥26% de hemácias dismórficas com S de 82%, Es de 94%, VPP de 93% e VPN de 84%. No microscópio de contraste de fase a ASC dos acantócitos apresentou a melhor performance no diagnóstico da hematúria com ASC (IC 95%) de 0,93 (0,88-0,98) PC de ≥8% de hemácias dismórficas com S de 94%, Es de 89% VPP de 90% e VPN 94%. Assim como, no sedimento urinário fixado na coloração de Papanicolaou, o dismorfismo eritrocitário total apresentou melhor desempenho no diagnóstico da hematúria com ASC (IC 95%) foi de 0,91 (0,86-0,96) PC de ≥ 20% de hemácias dismórficas com S de 92%, Es de 85%, VPP de 86% e VPN 92% . Na coloração de Panótico rápido LB o dismorfismo total também apresentou o melhor resultado com ASC (IC 95%) de 0,90 (0,84-0,95) PC de ≥ 20% de hemácias dismórficas com S de 86%, Es de 85%, VPP de 85% e VPN de 86%. Todos os métodos de avaliação apresentaram poder discriminatório estatisticamente significante, assim como a proteinúria que apresentou ASC (IC 95%) de 0,79 (0,71-0,87) PC de ≥ 300 mg/g de creatininúria com S de 67%, Es de 88% VPP de 84% e VPN de 71% e a albuminúria que obteve ASC (IC 95%) de 0,82 (0,75-0,90) PC de ≥ 54 mg/g de creatininúria com S de 76%, Es de 85% VPP de 83% e VPN de 77%. Em conclusão, este estudo mostrou que é possível verificar a origem da hematúria por meio da avaliação do dismorfismo eritrocitário no exame de urina, tanto por meio do microscópio óptico convencional com sedimento fresco ou fixado quanto pelo microscópio de contraste de fase. Apesar da proteinúria e albuminúria poderem ser utilizadas no auxílio do diagnóstico da origem da hematúria, a avaliação do dismorfismo eritrocitário foi o melhor método na diferenciação da hematúria glomerular. Palavras Chaves: Dismorfismo eritrocitário, acantócitos, codócitos, proteinúria, albuminúria, microscópio óptico convencional, microscópio de contraste de fase. Abstract Abstract- There is disagreement over the literature regarding the performance of phase microscopy to assess the origin f hematuria (glomerular or nonglomerular). This shows the need for further investigation in order to validate the best form of morphological evaluation of hematuria. The aims of this study were to determine the optimal cutoff point percentage for different patterns of dysmorphic cells in the detection of glomerular hematuria by conventional optical microscopy and phase contrast microscopy, to verify whether the presence of proteinuria or albuminuria may assist in the diagnosis of hematuria and also to establish an optimal cutoff point for this parameter. One hundred thirty-one urine samples were blinded evaluated at the Faculdade de Medicina de Botucatu, 66 samples of patients with glomerulopathies and 65 samples of patients with nephrolithiasis. Isolated samples with density greater than 1007 and with more than 5 erythrocytes per high-power field were used. The presence and percentage of codocytes and acanthocytes were verified by conventional optical microscopy using fresh and fixed urinary sediment subjected to Papanicolaou and Panótico Rápido LB staining and fresh urinary sediment was evaluated by phase contrast microscopy. Proteinuria and albuminuria rates were determined. The results of these methods were compared using linear regression analysis and Bland-Altman diagram of dysmorphic red blood cells. ROC curve plots were generated to determine the area under the ROC curve (AUC) and also an optimal cutoff point with the highest sum of sensitivity and specificity. At this point, it was possible to calculate sensitivity (TPR) and specificity (ES), positive predictive value (PPV) and negative predictive value (NPV). In conventional optical microscope with fresh urinary sediment, the AUC of total dysmorphic erythrocytes showed the best result for the diagnosis of hematuria with AUC (IC 95%) of 0,93 (0,89-0,97), cutoff point ≥26% of dysmorphic RBC´s with TPR of 82%, ES of 94%, PPV of 93% and NPV of 84%. In phase contrast microscope, the AUC of acanthocytes had the best performance for the diagnosis of hematuria with AUC (IC 95%) of 0,93 (0,88-0,98), cutoff point ≥8% of dysmorphic RBC´s, TPR of 94%, ES of 89%, PPV of 90% and NPV of 94%. As well as in fixed urinary sediment of Papanicolaou staining, the total dysmorphic erytrhrocytes had the best performance for the diagnosis of hematuria, with AUC (IC 95%) of 0,91 (0.86-0,96), cutoff point ≥20% of dysmorphic RBC´s with TPR of 92%, ES of 85%, PPV of 86% and NPV of 92%. In Panótico Rápido LB staining, total dysmorphism also showed the best result with AUC (IC 95%) of 0,90 (0,84-0,98), cutoff point≥ 20% of dysmorphic RBC´s with TPR of 0,86%, ES of 85%, PPV of 85% and NPV of 86%. All methods of evaluation showed a statistically significant discriminatory power, as well as proteinuria which showed AUC (IC 95%) of 0,79 (0,71-0,87), cutoff point ≥ 300mg/g of creatininuria with TPR of 67%, ES of 88%, PPV of 84% and NPV of 71%, and also for albuminuria which showed AUC (IC 95%) of 0,82 (0,75-0,90), cutoff point >54mg/g of creatininuria with TPR of 76%, ES of 85%, PPV of 83% and NPV of 77%. In conclusion, this study showed that it is possible to confirm the origin of hematuria by evaluating the erythrocyte dysmorphism in urinalysis using conventional optical microscope with fresh and fixed sediment and also phase contrast microscope. Although proteinuria and albuminuria can be used to diagnose the origin of hematuria, evaluation of erythrocyte dysmorphism was the best method to differenciate glomerular hematuria. Key words: Erythrocyte Dysmorphism, Acanthocytes, Codocytes, Proteinuria, Albuminuria, Optical Conventional Microscope, Phase Contrast Microscope. Lista de Quadros Lista de Quadros Quadro 1: Algoritmo diagnóstico da hematúria......................................................................4 Lista de Figuras Lista de Figuras Figura 1: Hemácias isomórficas: sedimento fresco, microscópio óptico convencional............27 Figura 2: Hemácias isomórficas: sedimento fresco, microscópio contraste de fase................27 Figura 3: Hemácias isomórficas: sedimento fixado, coloração Papanicolaou........................28 Figura 4: Hemácias isomórficas: sedimento fixado, coloração de Panótico Rápido LB........28 Figura 5: Codócitos: sedimento fresco, microscópio óptico convencional..............................29 Figura 6: Codócitos: sedimento fresco, microscópio de contraste de fase...............................29 Figura 7: Codócitos: sedimento fixado, coloração de Papanicolaou......................................30 Figura 8: Codócitos: sedimento fixado, coloração de Panótico rápido..................................30 Figura 9: Acantócito: sedimento fresco, microscópio óptico convencional............................31 Figura 10: Acantócito: sedimento fresco, microscópio de contraste de fase..........................31 Figura 11: Acantócito: sedimento fixado, coloração de Papanicolaou..................................32 Figura 12: Acantócito: sedimento fixado, coloração de Panótico rápido LB........................32 Figura 13: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total no microscópio óptico convencional a fresco (dism.total oc), codócitos (codócitos oc) acantócitos (acantócitos oc) e hemácias crenadas (hemácias crenadas oc)..............................34 Figura 14: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total no microscópio de contraste de fase (dism.total cf), codócitos (codócitos cf), acantócitos (acantócitos cf) e hemácias crenadas (hemácias crenadas cf)...................................................37 Figura 15: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total do sedimento fixado na coloração de Papanicolaou observado no microscópio óptico convencional (dism.total fp), codócitos (codócitos fp), acantócitos (acantócitos fp).................40 Figura 16: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total do sedimento fixado na coloração de Panótico rápido LB observado no microscópio óptico convencional (dism.total fpan), codócitos (codócitos fpan), acantócitos (acantócitos fpan).....43 Figura 17: Curvas ROC referentes ao Índice de Albuminúria e ao Índice de Proteinúria..........................................................................................................46 Figura 18: Gráfico de regressão linear referente ao dismorfismo eritrocitário total observado no microscópio de contraste de fase e o dismorfismo eritrocitário total observado no microscópio óptico convencional.....................................................................52 Figura 19: Gráfico de regressão linear referente ao dismorfismo eritrocitário total observado no microscópio de contraste de fase e o dismorfismo eritrocitário total observado no microscópio óptico convencional na coloração de Papanicolaou.....................53 Figura 20: Gráfico de regressão linear referente ao dismorfismo eritrocitário total observado no microscópio de contraste de fase e o dismorfismo eritrocitário total observado no microscópio óptico convencional na coloração de Panótico............................54 Figura 21: Gráfico de regressão linear referente à porcentagem de codócitos observado no microscópio de contraste de fase e a porcentagem de codócitos observado no microscópio óptico convencional.........................................................................55 Figura 22: Gráfico de regressão linear referente ao número de codócitos observado no microscópio de contraste de fase e o número de codócitos observado no microscópio óptico convencional na coloração de Papanicolaou.........................56 Figura 23: Gráfico de regressão linear referente ao número de codócitos observado no microscópio de contraste de fase e o número de codócitos observado no microscópio óptico convencional na coloração de Panótico.................................57 Figura 25: Gráfico de regressão linear referente ao número de acantócitos observado no microscópio de contraste de fase e o número de acantócitos observado no microscópio óptico convencional na coloração de Papanicolaou..........................58 Figura 26: Gráfico de regressão linear referente ao número de acantócitos observado no microscópio de contraste de fase e o número de acantócitos observado no microscópio óptico convencional na coloração de Panótico.................................59 Figura 27: Diagrama de Bland- Altman referente ao dismorfismo eritrocitário total (Óptico- Fase) (%) e (Fase+Óptico/2) (%).........................................................................60 Figura 28: Diagrama de Bland- Altman referente ao dismorfismo eritrocitário total (Papanicolaou-Fase) (%) e (Fase+Papanicolaou/2) (%)......................................61 Figura 29: Diagrama de Bland- Altman referente ao dismorfismo eritrocitário total (Panótico- Fase) (%) e (Fase+Panótico/2) (%)....................................................62 Figura 30: Diagrama de Bland- Altman referente ao número de Codócitos (Óptico-Fase) (%) e (Fase+Óptico/2) (%).........................................................................................63 Figura 31: Diagrama de Bland- Altman referente ao número de Codócitos (Papanicolaou- Fase) (%) e (Fase+Papanicolaou/2) (%)..............................................................64 Figura 32: Diagrama de Bland- Altman referente ao número de Codócitos (Panótico-Fase) (%) e (Fase+Panótico/2) (%)...............................................................................65 Figura 33: Diagrama de Bland- Altman referente ao número de Acantócitos (Óptico-Fase) (%) e (Fase+Óptico/2) (%)...................................................................................66 Figura 34: Diagrama de Bland- Altman referente ao número de Acantócitos (Papanicolaou- Fase) (%) e (Fase+Papanicolaou/2) (%)..............................................................67 Figura 35: Diagrama de Bland- Altman referente ao número de Acantócitos (Panótico-Fase) (%) e (Fase+Panótico/2) (%)...............................................................................67 Lista de Tabelas Lista de Tabelas Tabela 1: Dados demográficos e clínicos................................................................................25 Tabela 2: Áreas sob curva do dismorfismo eritrocitário no microscópio óptico convencional a fresco do total de células dismórficas, codócitos, acantócitos hemácias crenadas............................................................................................................35 Tabela 3: Áreas sob curva do dismorfismo eritrocitário no microscópio de contraste de fase codócitos, acantócitos e hemácias crenadas.......................................................38 Tabela 4: Áreas sob curva referentes ao dismorfismo eritrocitário do sedimento fixado na coloração de Papanicolaou observado em no microscópio óptico convencional, codócitos, acantócitos........................................................................................41 Tabela 5: Áreas sob curva referentes ao dismorfismo eritrocitário do sedimento fixado na coloração de Panótico rápido observado em microscópio óptico convencional, codócitos, acantócitos .......................................................................................44 Tabela 6: Áreas sob curva referentes ao Índice de albuminúria e ao Índice de proteinúria........................................................................................................47 Tabela 7: Pontos de corte, Sensibilidade, Especificidade, Valores Preditivos Positivos, Valores Preditivos Negativos, das hemácias dismórficas observadas em cada método e do Índice de Proteinúria e Albuminúria.............................................49 Tabela 8: Comparação entre as curvas ROC (p-valores) referente às áreas sob curva das hemácias dismórficas nos diferentes métodos aplicados....................................50 Tabela 9: Comparação entre as curvas ROC (p-valores) referente às áreas sob curva do Índice de Proteinúria e do Índice de Albuminúria em relação à maior área encontrada nos diferentes métodos de avaliação..................................................................50 Lista de Abreviações • IC: Intervalo de confiança. • dism.total cf: dismorfismo eritrocitário total, contraste de fase. • codócitos cf: codócitos, contraste de fase. • acantocitos cf: acantócitos, contraste de fase. • hemácias crenadas cf: hemácias crenadas, contraste de fase. • dism.total fp: dismorfismo eritrocitário total fixado na coloração de Papanicolaou. • codócitos fp: codócitos fixado na coloração de Papanicolaou. • acantócitos fp: acantócitos fixado na coloração de Papanicolaou. • dism.total fpan: dismorfismo eritrocitário total fixado na coloração de Panótico rápido LB. • codócitos fpan: codócitos fixado na coloração de Panótico rápido LB. • acantócitos fpan: fixado na coloração de Panótico rápido LB. Lista de Abreviações • GESF: Glomeruloesclerose Segmentar e Focal. • IgA: Nefropatia por IgA. • GN mesangial: Glomerulonefrite Mesangial. • DLM: Doença por Lesão Mínima. • GNMP: Glomerulonefrite Membranoproliferativa. • GN Crescêntica: Glomerulonefrite Crescêntica. • GNM: Glomerulonefrite Membranosa. • GNC: Glomerulonefrite Crônica Esclerosante, • GNDA: Glomerulonefrite Difusa Aguda. • PC: Ponto de corte. • Sensib.: Sensibilidade. • Especif.: Especificidade. • VPP: Valores Preditivos Positivos. • VPN: Valores Preditivos Negativos. • ASC: Área Sob a Curva. • dism.total oc: dismorfismo eritrocitário total, óptico convencional. • codócitos oc: codócitos, óptico convencional. • acantócitos oc: acantócitos, óptico convencional. • hemácias crenadas oc: hemácias crenadas, óptico convencional. Sumário SUMÁRIO Lista de Quadros Lista de Figuras Lista de tabelas Lista de abreviações Resumo Abstract 1 – Introdução........................................................................................................................1 2- Objetivos...........................................................................................................................16 2.1- Objetivo geral...........................................................................................................16 2.2- Objetivos Específicos................................................................................................16 3- Material e Métodos.....................................................................................................17 3.1- Critérios de inclusão.................................................................................................17 3.1.2- Critérios de exclusão..............................................................................................17 3.2- Pacientes.............................................................................................................17 3.3- Amostras.................................................................................................................18 3.3.1- Coleta de Urina.....................................................................................................18 3.3.2- Dismorfismo eritrocitário......................................................................................18 3.3.3- Conservação da Amostra.......................................................................................19 3.4- Delineamento...........................................................................................................19 3.5- Métodos de análises..................................................................................................19 3.6- Avaliação em microscópio de fase.............................................................................20 3.7- Técnica de fixação....................................................................................................20 3.7.1- Papanicolaou.........................................................................................................20 3.7.2- Panótico Rápido LB.............................................................................................21 3.8- Proteinúria...............................................................................................................21 3.9- Albuminúria.............................................................................................................22 3.10- Análises estatísticas...............................................................................................22 4- Resultados.........................................................................................................................24 5- Discussão..........................................................................................................................69 6- Conclusões.........................................................................................................................85 7- Referências Bibliográficas.................................................................................................86 7.1- Referências da Web............................................................................................95 8- Apêndice Introdução 1 1- Introdução Hematúria e Proteinúria são sinais de doenças renais ou do trato urinário. A acessibilidade dos testes de urina e a natureza insidiosa da doença renal enfatizam a importância clínica da urinálise, pois muitos pacientes desenvolvem essas doenças com poucos sintomas evidentes ou ocorrem de maneira assintomática, porém podem ser detectadas em um simples exame de urina. (JAYNE, 2009) A detecção precoce da doença renal desempenha um papel fundamental para impedir a sua progressão para um estágio final da doença. A história médica e o exame físico podem fornecer indícios que apontam para o diagnóstico. Para complementar esses dados, testes laboratoriais e exames regulares de urina são realizados. O exame do sedimento urinário é uma ferramenta simples, disponível, acessível e indispensável na abordagem diagnóstica de pacientes. Os objetivos da investigação são, além do esclarecimento diagnóstico, excluir doenças graves. Além disso, a microscopia pode detectar as seguintes anormalidades: hematúria, leucocitúria, presença de cilindros, cristais, leveduras e outros microorganismos. (HUSSEN et al., 2004), contribuindo para esclarecimento dos diagnósticos diferenciais. Nesse sentido, para a mensuração dos elementos celulares utiliza-se atualmente a amostra isolada de urina, em geral analisando-se o sedimento de uma alíquota de 10 a 15 ml, centrifugada a 1.500 – 3000 rotações por minuto (rpm), durante 3 a 10 minutos. A pesquisa semi-quantitativa é uma técnica mais simplificada, que se baseia na contagem de eritrócitos por campo de grande microscópico. Em indivíduos sadios o numero normal de eritrócitos é menor do que um por campo microscópico de 2 aumento 400. Em geral faz-se necessário percorrer três ou quatro campos para que seja identificada uma hemácia (FOGAZZI et al., 1989). Consideram-se normais limites de até duas (LARCOM & CARTER, 1948; SCHUMANN & SCWEITZER, 1991) ou três hemácias por campo (SAYER, MCCARTHY, SCHIMDT, 1990). Devido a sua complexidade, a hematúria apresenta diversas propostas de classificação. (KESSON, 1978). Quanto a sua localização, as hematúrias podem ser classificadas em glomerulares, de origem nefrológica, ou não-glomerulares, de origem urológica. Quanto à intensidade do sangramento, são identificadas como macroscópicas, quando a coloração da urina sugere a presença de sangue, ou microscópicas, quando as hemácias são detectadas somente pela sedimentoscopia urinária. Quanto à freqüência, podem se apresentar de forma permanente (presença constante de hemácias no sedimento urinário), isolada (episódio único de hematúria), ou recorrente, quando há períodos de remissão do episódio hematúrico. Finalmente, quanto à repercussão clínica, são referidas como sintomáticas e assintomáticas. (BASTOS, et al., 1998). A hematuria é um sinal comum a muitas doenças, de diferentes pontos do aparelho urinário. Por este motivo a detecção de seu local de origem vem a ser uma questão de grande importância. Pode originar-se no parênquima renal, em suas estruturas glomerulares, vasculares ou intersticiais ou outras regiões do trato urinário, pelve renal, ureteres, bexiga, próstata ou uretra (STAPLETON, 1987; MOHAMMAD et al., 1993). Investigar a procedência da hematuria significa, muitas vezes, avaliar toda anatomia do trato urinário e, freqüentemente, faz-se necessária a pesquisa de doenças sistêmicas para esclarecer sua etiologia (FAIRLEY & BIRCH, 1982; STAPLETON, 1987; PILLSWORTH et al. 1987). 3 A investigação da hematúria requer anamnese e exame físico detalhado, bem como a utilização de exames complementares adequados, sejam laboratoriais ou de imagem. A observação clínica e exames complementares simples devem ser realizados de maneira adequada para evitar procedimentos agressivos, onerosos e muitas vezes desnecessários. A hemorragia glomerular é classicamente acompanhada pela presença de proteinúria e cilindros hemáticos. Entretanto, nem todos os pacientes portadores de glomerulonefrite apresentam tais alterações. (KESSON, et al.,1978, BASTOS et al., 1998, PENIDO, 1995). Diante disto, a existência de meios de investigação que permitam distinguir a hematúria glomerular da não glomerular com antecipação aos exames invasivos seria muito útil para orientar mais precocemente a abordagem (BIRCH & FAIRLEY, 1982; PILLSWORTH et al., 1987). Atualmente, têm-se valorizado achados na sedimentoscopia urinária, principalmente aqueles baseados na morfologia das hemácias, indicando com maior precisão o local do sangramento, se glomerular ou não-glomerular. (BIRCH, 1983, GROSSFELD et al., 2001). O grau de hematúria pode ser medido quantitativamente por determinação do número de hemácias por mililitro de urina excretada, pelas fitas reagentes de urina e pela análise do sedimento urinário (contagem dos sedimentos). (GROSSFELD et al., 2001). Separar as hematúrias glomerulares das não-glomerulares nos parece extremamente conveniente, pois são a partir desta diferenciação que indicaremos os exames complementares posteriores os quais, na maioria das vezes nos permitirão firmar o diagnóstico etiológico da hematúria. (Bastos, et al 1998). 4 Segundo Cohen e Brown (2003) logo após a confirmação da hematúria na avaliação do sedimento urinário, a análise da morfologia das hemácias é o fator que diferencia se o paciente vai ser investigado para doenças glomerulares ou não glomerulares. Isso significa que, a partir do achado de dismorfismo eritrocitário, pode ser sugerida biópsia renal, especialmente em pacientes com proteinúria associada à hematúria e, em caso contrário, tomografia helicoidal, cistoscopia podem ser indicadas para confirmar ou afastar litíase, neoplasias de bexiga ou outras causas de hematúria não glomerular (Quadro1). Quadro 1: Algoritmo diagnóstico da hematúria Fita reagente de urina Positiva Confirma a positividade da fita reagente de urina Hemácias presentes no sedimento urinárioAvaliação do dismorfismo eritrocitário Avaliar a presença de Proteinúria Avaliar a necessidade de biópsia renal Cistoscopia e/ou Citologia urinária Tomografia helicoidal Hemácias Isomórficas 5 Para análise do sedimento urinário, o microscópio óptico convencional é o método mais acessível e disponível. Porém a análise por meio de microscópio de contraste de fase parece ser a mais indicada para a determinação do dismorfismo eritrocitário. O custo deste equipamento é maior que o microscópio óptico convencional e não está disponível em grande parte dos serviços de urinálise, Mas a visualização da morfologia das hemácias neste método parece ser mais fácil e clara, sendo até então, considerado o melhor método de avaliação de dismorfismo eritrocitário. Em 1979, Birch e Fairley publicaram um editorial onde foi sugerido que a hematúria glomerular poderia ser distinguida das demais através da análise da forma dos eritrócitos em microscopia de contraste de fase e demonstraram a possibilidade de distinção entre hematúrias glomerulares e não-glomerulares, baseando-se não apenas no encontro de proteinúria e cilindrúria, mas também na diferenciação morfológica das diversas populações de hemácia na urina. Neste ponto a urinálise é fundamental, pois é uma propedêutica simples barata e não invasiva e que pode ser repetida quantas vezes forem necessárias. Segundo esses autores, a hematúria não-glomerular caracterizar-se-ia por hemácias urinárias isomórficas, com tamanho uniforme, conteúdo de hemoglobina e morfologia semelhantes às encontradas na circulação sanguínea. Por outro lado, na hematúria glomerular, as hemácias se apresentariam dismórficas, com alterações em forma, cor, volume e conteúdo de hemoglobina, podendo-se encontrar diversas projeções em suas membranas celulares, bem como heterogeneidades citoplasmáticas em forma bicôncava ou esférica. Sendo assim, entre as diversas formas de hemácias observadas, os acantócitos e as células glomerular shapes (G1) 6 são os mais específicos para lesões glomerulares (NAGAHAMA et al., 2005, HEINE et al., 2004, KÖHLER,1991). As células glomerular shapes (G1) foram descritas inicialmente por Tomita e Cols (1992) que utilizou uma classificação proposta por Chu et al. (1990) esta consiste em dividir os eritrócitos em morfologias glomerulares “G” e não glomerulares ou normais “N”. Estes se subdividem em números, sendo G1 a forma mais importante de eritrócito glomerular, que as caracterizavam como hemácias em forma de rosca e com uma ou mais projeções vesiculares na superfície celular (o correspondente ao Acantócito da classificação de BESSIS, (1972). Kitamoto e Cols (1993) observaram que a presença de ≥ 5% das células G1 em pacientes com hematúria é altamente sugestiva de hematúria glomerular. Nos estudos desses autores, o método mostrou-se altamente sensível (100%) e específico (100%), principalmente em urinas ácidas e concentradas. Outro padrão de hemácias é o acantócito ou hemácia em forma de anel e com protusões citoplásmaticas vesiculiformes na superfície (BESSIS; 1972, KÖHLER et al.; 1991) Estas células são muito semelhantes às células G1 e a identificação de um percentual ≥ 5 na urina de pacientes com hematúria glomerular apresenta uma especificidade de 98% e sensibilidade de 53%. Assim, a presença de um percentual ≥ 5 de hemácias G1 ou de acantócitos na urina de pacientes com hematúria é altamente sugestiva da origem glomerular. (SINGALA, et al., 1978) e os Codócitos são hemácias em “alvo”,(“doughnut-like cell”) que vista lateralmente assume um aspecto de sino. Além desses padrões, Bessis (1972), classifica as outras formas de hemácias na urina da seguinte forma: discócito; apresenta uma forma discóide com duas cavidades concêntricas, anulócito; como forma discóide plana com uma membrana 7 densa, esquizócito; forma fragmentada, freqüentemente mostrando-se com a forma de meio disco com duas ou três extremidades pontiagudas, podendo apresentar-se com um fragmento pequeno e irregular; estomatócito; com uma forma tubular, nizócito; com aspecto tri-côncavo. Em urinas hipertônicas que foram armazenadas por um período de tempo excessivo, encontram-se hemácias crenadas (equinócitos). Em urinas hipotônicas em que ocorre a lise osmótica das hemácias com o vazamento da hemoglobina, encontram-se as chamadas “células fantasmas”. (JAYNE 2009, NAGAHAMA et al., 2005, HEINE et al., 2004) Essas alterações não tem necessariamente significado de lesão glomerular. Dessa forma, mesmo aceito que as alterações morfológicas das hemácias constituem um útil recurso diagnóstico na investigação da causa da hematúria, uma padronização metodológica não é universalmente seguida, mesmo a etiopatogênese das transformações estruturais das hemácias glomerulares ainda não é suficientemente esclarecida, fatores como trauma mecânico, alterações osmóticas, influencia de enzimas e fagocitose eritrocitária, estejam envolvidos nas deformidades dos eritrócitos (SURITA, 1995). Quando o dismorfismo ocorre devido a um trauma mecânico, as modificações da forma da hemácia ocorreriam durante sua transposição pela membrana basal glomerular. Os eritrócitos impulsionados pela pressão hidrostática no capilar glomerular passariam através de poros da parede glomerular. Como resultados desta passagem surgiriam às deformações da membrana celular, de natureza lipoprotéica e conseqüentemente “amoldável” (STAPLETON, 1987). As alterações osmóticas ocorrem em conseqüência da hipotonicidade do néfron distal (“stress hipotônico”), este efeito poderia ser anulado em situações de 8 hematúria maciça, onde eritrócitos glomerulares poderiam ser eliminados na urina de forma isomórfica (CHANG, 1984, 1982; VAN ISEGHEM, et al. 1983). Quando esse fator ocorre devido a influencia de enzimas, que liberadas dos lisossomos das células inflamatórias glomerulares atuariam na membrana celular, deformando-a, ressaltando que nem todas as causas de hematúria glomerular são de natureza inflamatória, contradizendo esta teoria (ROTH et al. 1991a, 1991b). A fagocitose de hemácias, papel que seria exercido por células epiteliais tubulares, também é considerada como possível fator das alterações morfológicas, Scuetz et al. (1985) observaram que o aumento do volume urinário por diuréticos ou ingestão hídrica forçada promove significativa porcentagem de eritrócitos dismórficos. Entendem por isso que “forças tubulares” causam deformações, mas não concluem quais são os fatores em questão. As alterações ocorreriam durante a passagem das hemácias pelos túbulos, conseqüentes aos efeitos osmóticos, enzimáticos ou mecânicos. A própria origem da hematúria glomerular não possui uma explicação universalmente aceita, considera-se que o processo inflamatório glomerular possa promover alterações na parede capilar com formação de “poros” que permitam a transposição de eritrócitos dos capilares para o interior do espaço de Bowman e conseqüentemente aos túbulos (JAI-TRUG et al.1983). Ainda que desde a descrição original do dismorfismo eritrocitário muitos estudos tenham sido realizados, algumas questões permanecem polêmicas. Uma das controvérsias se refere à quantidade de hemácias dismórficas em relação às normais que seria considerada indicativa de hematúria glomerular. Alguns autores consideram hematúria a presença de cinco ou mais hemácias por campo microscópico de grande aumento (400x), após a centrifugação da amostra urinária. 9 (BASTOS, et al 1998, PENIDO 1995). Outros consideram hematúria um número superior a dez hemácias por campo (400x) (CHANG, 1984; ABDURRAMAN et al., 1985; STAPLETON, 1987) outros autores citam como necessário encontrar 60% (LOPEZ-VERDE et al.1968), 75% (DANTAS et al. 1985), 80% (FASSET et al. 1982; RAMAN et al, 1986) ou outras proporções de hemácias “dismórficas”, cuja descrição também varia conforme o pesquisador para assegurar a origem glomerular da hematúria. Na definição de dismorfismo eritrocitário, Birch e Fairley (1979) consideraram o limite para a caracterização de hemorragia glomerular a presença de quatro ou mais diferentes agrupamentos de hemácias. Mesmo não definindo um valor percentual limítrofe de normalidade, esses autores já haviam observado que, quando maior fosse esse percentual, maior seria a probabilidade de lesão glomerular. No entanto estudo posterior, do sedimento urinário de 107 pacientes, com causas urológicas e nefrológicas conhecidas, observou que um valor de 40% de hemácias dismórficas era um ponto de corte confiável para diferenciar hematuria glomerular e não glomerular (SNOEK, et al,, 1994). A sensibilidade para o diagnóstico de uma causa de hematuria urológica foi de 100% e a especificidade de 66,7%, incluindo a ausência de eritrócitos ou cilindros hematúricos como um parâmetro adicional, a especificidade subiu para 88,1%. Mais de 40% dos eritrócitos dismórficos em microscopia de contraste de fase foi diagnóstico para hematúria glomerular, principalmente quando o padrão dismórfico foi acompanhado pela descoberta dos cilindros eritrocitários (HUUSSEN, et al., 2004). Nesse mesmo estudo o ponto de corte para microscopia de luz foi de 20 % de hemácias dismórficas. 10 Quanto ao valor limítrofe para o encontro de acantócitos, Köhler et al., (1991) relataram especificidade de 98% e sensibilidade de 52% para hematúria glomerular, considerando a presença de pelo menos 5% na urina. Recentemente, Catala et al (2002) adotando esse mesmo limite, também evidenciaram bons resultados, com sensibilidade de 88% e especificidade de 100% para lesão glomerular. Com essas análises a maioria dos autores prefere adotar o valor de ≥ 5% de acantócitos ou de células G1 como referência para caracterização da hematúria de origem glomerular, obtendo melhores resultados em relação o percentual de 80% de dismorfismo. (GROSSFELD et al., 2001, BIRCH & FAIRLEY, 1979). Para resumir, hematúria glomerular é caracterizada na maioria dos trabalhos, pela presença de cilindros eritrocitários com mais de 40% dos eritrócitos dismórficos em um padrão polimórfico, enquanto na hematúria não glomerular, menos de 40% de hemácias dismórficas são encontrados, um padrão monomórfico existe e cilindros eritrocitários estão ausentes. Entretanto, apenas dois trabalhos, avaliaram o melhor ponto de corte para hematúria glomerular utilizando-se do tratamento estatístico apropriado que é a curva ROC (BARROS SILVA et al. 2010). Este trabalho mostrou que o melhor ponto de corte para microscópio de contraste de fase foi de 30% e para microscópio óptico comum foi de 40%, divergindo da literatura previamente apresentada no corrente projeto. E Pillsworth et al. (1987) adotou um ponto de corte de 14% com uma sensibilidade de 88% e especificidade de 94%. Assim, evidencia- se a necessidade de mais estudos que avaliem o melhor ponto de corte do dismorfismo eritrocitário no diagnóstico da hematúria glomerular. Rotineiramente, o sedimento é analisado por microscopia óptica convencional baseia-se no princípio de que o material interposto no microscópio para observação promove modificações nestas propriedades da onda luminosa e são desta forma 11 perceptível. Chang (1984) e Roth et al. (1991), validaram o estudo do dismorfismo com a microscopia ótica convencional ao adotarem colorações (corante de Wright e Papanicolaou respectivamente) para destacar os elementos figurados da sedimentoscopia urinária. Esses autores sustentam a possibilidade de execução em qualquer laboratório e também um menor custo, já que dispensa a necessidade de microscópio de contraste de fase, além de fornecer uma lâmina que pode ser revista sempre que se desejar. Embora não realizada rotineiramente, o uso da microscopia de contraste de fase é uma estratégia bastante útil para a observação de detalhes estruturais dos elementos presentes no sedimento urinário. Este tipo de microscopia que se propaga sob a forma de ondas eletromagnéticas, foi idealizado em 1934 por Zernicke (1955). O principio desse tipo de microscopia é transformar as alterações de fase em alterações de amplitude que são visíveis e pode ser interpretada como diferenças de brilho, através de uma combinação de lentes que despolarizam a onda, acelerando ou retardando a relação de fase e produzindo um contraste positivo (escuro) ou negativo (brilhante) (DAVIS, 1983). Com isso, esse sistema de contraste de fase, que oferece melhor detalhamento das estruturas apresentadas, é hoje considerado o melhor método para a análise da sedimentoscopia e nos permite dispensar o uso de colorações especiais na urinálise. (BRODY et al., 1968, BIRCH et al., 1994). As primeiras referências sobre o uso da microscopia de contraste de fase na análise da rotina laboratorial de exame de urina datam de 1968. Brody, Webster, Karl (1968) descrevem que a microscopia de contraste de fase permite a visualização e melhor definição de objetos transparentes à microscopia óptica convencional, freqüentes na urina não corada. 12 Sendo assim, para a diferenciação entre hematúria urológica e nefrológica, a microscopia de contraste de fase parece ser o melhor método de análise do sedimento urinário, principalmente para o estudo do dismorfismo eritrocitário. (HUSSEN et al., 2004, BIRCH 1979, NAGAHAMA et al., 2005, OSMANI et al1987, TOMITA et al 1992). O microscópio de contraste de fase mostrou sensibilidade de 90% e especificidade de 100% na detecção de hematuria glomerular, comparado com 82 e 100% com microscópio óptico comum, quando o ponto de corte para o dismorfismo eritrocitário de 20% foi utilizado como indicador de hematúria glomerular, a biópsia renal utilizada como padrão ouro para diagnosticar a doença glomerular (DINDA, et al. 1997). Além da adoção do dismorfismo eritrocitário para a investigação de sangramento glomerular, existem outros marcadores laboratoriais para diferenciação entre as hematúrias glomerulares e não glomerulares. (VASCONCELLOS et al., 2005). Os cilindros hemáticos são estruturas formadas no interior dos túbulos renais com aprisionamento de hemácias pela muco proteína de Tamm-Horsfall em precipitação. É sinal específico, porém pouco sensível, assim, sua presença é altamente sugestiva de hematúria glomerular, muito embora sua ausência não exclua o diagnóstico de glomerulonefrite. (PENIDO, 1995, TROMPETER et al., 1994) Muitas vezes a presença de proteína no exame de urina sugere o diagnóstico de glomerulopatia. Há de se ressaltar, porém alguns aspectos deste sinal. Em primeiro lugar nem sempre a proteinúria está presente em glomerulopatias, por outro lado não se pode atribuir sua presença à existência de doença glomerular sem uma análise mais acurada da quantidade e qualidade da perda protéica urinária. (MALLICK & SHORT, 1992). 13 A quantificação da proteinúria (ou albuminúria) é importante no diagnóstico, indicação terapêutica e no prognóstico da doença renal. Quanto maior a proteinúria mais rápida a perda da função renal (ALVES, 2004). A proteinúria pode ser estratificada em três estágios: leve (0,15 a 1g/24h), moderada (1 a 3g/24h) e maciça (se > 3g/24h ou se > 40mg/m2/hora); ou ainda, se em urina de amostra única matinal com jejum, a relação proteína/creatinina está < 0,2 (normal), entre 0,2 e 0,5 (proteinúria leve), entre 0,5 e 2 (proteinúria moderada) e > 2 (proteinúria maciça ou nefrótica). Uma fração desta proteinúria é composta por albumina e obedece a um ritmo circadiano, sendo maior durante o dia na posição ortostática. A presença de proteinúria inferior a 0,5g/24h sugere sangramento não- glomerular, e, em quantidade superior a 0,5-1g/24h lesão glomerular (PENIDO, 1995, TROMPETER et al., 1994). Entretanto, conforme estudos de Fasset et al. (1982), existem casos de glomerulonefrite nos quais ocorre sangramento na ausência de proteinúria; assim, esse autor considerou a avaliação do dismorfismo crucial para a determinação da hematúria. Nos últimos anos, muita importância tem sido atribuída ao valor da albuminúria. Essa alteração urinária foi inicialmente observada em pacientes diabéticos insulinodependentes e definida como sendo a excreção urinária de pequenas quantidades de albumina insuficientes para serem detectadas pelos métodos habituais de dosagem de proteínas, ou seja, uma elevação subclínica da excreção urinária de albumina 150mg/24horas (VIBERTI, et al.,1982). Quantitativamente, a definição de albuminúria varia com o tipo de amostra coletada e com a forma de expressão dos resultados. Das 150 mg/24horas de proteína encontrada na urina, cerca de 1/3 é albumina que atravessa o capilar glomerular, quantidade muito abaixo da sensibilidade das fitas reagentes, não sendo 14 assim rotineiramente detectada na urinálise de rotina (LEVEY et al., 1991). É definida como albuminúria a excreção entre 30 e 300 mg/dia ou entre 20 e 200 µg/minuto em urina de 12 horas ou entre 30 e 300mg/g de creatinina em amostra urinária isolada. A albuminúria ocorre quando houver perda da seletividade da membrana basal glomerular para a carga, diminuição do catabolismo tubular da albumina normalmente filtrada, ou quando ocorrer uma alteração na hemodinâmica glomerular, como acontece na nefropatia diabética (DECKERT et a., 1989, GLASSOCK et al., 1995, FAVARO et al., 1994). Em revisão de literatura, encontraram-se apenas dois estudos que avaliaram o valor da albuminúria na predição de lesões glomerulares na presença de hematúria. A excreção de albumina urinária anormal, ainda que subclínica foi indicativa de lesão glomerular, e a associação de albuminúria e hematúria foi altamente sugestiva de hematúria glomerular em crianças (ASSADI, 2005). A albuminúria pode ser usada como preditor de hematúria glomerular. Estudo retrospectivo, em adultos, avaliou a presença de albuminúria como preditor de hematúria microscópica glomerular (EARDLEY et al., 2004). Foram avaliados 169 pacientes, 119 destes com albuminúria negativa e 50 com albuminúria maior que 30 mg/g creatinina. Dentre os normoalbuminúricos, apenas 11% eram portadores de nefropatia por IgA. Ao contrário, dentre os pacientes portadores de albuminúria relevante, 48% tinham nefropatia por IgA. Esse autor considerou que a dosagem de albuminúria pode auxiliar os nefrologistas na decisão de indicar ou não biópsia renal em pacientes hematúricos, entretanto, em sua casuística, havia pouquíssimos casos de hematúria não glomerular. Dessa maneira, ainda há necessidade de mais 15 estudos para avaliar o valor da albuminúria na predição de lesões glomerulares na presença de hematúria. Apesar da existência de estudos que avaliaram a predição da origem da hematúria (glomerular ou não glomerular), há discordância entre os autores desses estudos. Isto aponta para a necessidade de mais trabalhos para validar as várias modalidades de avaliação morfológica da hematúria na urinálise, além da interpretação conjunta tanto da proteinúria como da albuminúria para auxiliar o diagnóstico diferencial das hematúrias. Dessa forma, têm-se as seguintes hipóteses. • O dismorfismo eritrocitário pode ser avaliado por diferentes metodologias: microscopia de fase, óptica convencional ou lâminas fixadas. • O melhor ponto de corte da porcentagem de dismorfismo para predição da origem da hematúria pode diferir de acordo com o método e com a célula dismórfica avaliada (dismorfismo eritrocitário total, codócito e acantócito). • A quantificação da proteinúria e a albuminúria podem auxiliar na determinação da origem da hematúria. Objetivos 16 2- OBJETIVOS OBJETIVO GERAL Avaliar o papel da urinálise no diagnóstico da origem da hematúria. OBJETIVOS ESPECÍFICOS 1. Determinar o melhor ponto de corte para a porcentagem dos diferentes padrões de células dismórficas na detecção da hematúria glomerular pelos métodos aplicados no estudo, tanto por meio do microscópio óptico convencional com sedimento fresco ou fixado quanto pelo microscópio de contraste de fase. 2. Verificar se a presença de proteinúria ou albuminúria pode auxiliar no diagnóstico da origem glomerular da hematúria e determinar o melhor ponto de corte para esta correlação. Material e Métodos 17 3- MATERIAL E MÉTODOS Foram avaliadas de maneira cega 131 amostras de urina sendo 66 amostras de portadores de glomerulopatias e 65 amostras de portadores de litíase renal da Faculdade de Medicina de Botucatu. 3.1- Critérios de inclusão • Pacientes portadores de glomerulopatias com hematúria de origem sabidamente nefrológica e confirmada por biópsia renal ou pacientes portadores de litíase renal com hematuria sabidamente urológica e confirmada por exame de imagem. 3.1.2- Critérios de exclusão • Pacientes portadores de glomerulopatia que apresentaram litíase renal ou pacientes portadores de litíase que apresentaram glomerulopatias; • Amostra de urinas de pacientes menstruadas; • Amostra de urinas de pacientes com infecção no trato urinário; • Amostra de urinas de pacientes com trauma renal; • Amostra de urinas de pacientes que foram congeladas ou que tenham sido adicionados conservantes na amostra; • Amostra de urinas de pacientes com grande quantidade de células escamosas epiteliais, pois dificulta a visualização da hematúria; • Amostra de urinas de pacientes com densidade menor que 1007. 3.2- Pacientes O tamanho amostral das 131 urinas foi calculado de maneira a detectar uma área sob a curva ROC de 0.65 com 50 % da amostra composta por hematúria glomerular, 50% não-glomerular e intervalo de confiança a 95%. 18 Este estudo obedeceu à resolução 196/96 do Conselho Nacional de Saúde e foi aprovado no Comitê de Ética em Pesquisa da Faculdade de Medicina de Botucatu-UNESP (março, FMB-PC-29/2010). Todos os pacientes que aceitaram livremente participar do estudo receberam as orientações da autora acerca da coleta da urina, e assinaram o Termo de Consentimento Livre e Esclarecido e os pacientes com idade inferior a 18 anos foram consentidos pelos pais a participarem do estudo. 3.3- Amostras 3.3.1- Coleta de Urina Foram coletadas amostras isoladas do jato médio da primeira urina da manhã, colhida após a assepsia da região genital, e entregues no laboratório em até 2 horas após a coleta, sem sobrecarga hídrica ou realização de exercícios físicos intensos prévios. A coleta foi feita no ambiente do hospital das Clínicas, ou na casa dos pacientes, se estes fossem moradores de Botucatu. Não foram coletadas amostras no período menstrual, ou pós-trauma urinário recente (5 a 7 dias), para garantir a não contaminação da amostra. 3.3.2- Dismorfismo eritrocitário Foram avaliadas pela autora deste trabalho, a presença e a porcentagem de hemácias isomórficas, codócitos, acantócitos e dismorfismo eritrocitário total que é a soma da porcentagem de codócitos e porcentagem dos acantócitos, na amostra de urina fresca tanto em microscópio de fase como em microscópio óptico convencional com lâmina fresca ou fixada. A presença de hemácias crenadas em sedimento fresco também foi avaliada. 19 3.3.3- Conservação da Amostra A urina coletada foi armazenada por um período máximo de 2 horas em temperatura ambiente. Não se adicionou conservante na amostra, estas não foram refrigeradas e nem congeladas. 3.4- Delineamento Após a coleta, as urinas dos pacientes foram encaminhadas para o observador, ressaltando que o observador não sabia o diagnóstico do paciente cuja urina foi analisada. Em seguida, outras alíquotas das amostras foram encaminhadas ao laboratório clínico, no qual foi realizada a dosagem da relação proteína/ creatinina e albumina/creatinina para diagnosticar a presença ou a ausência de proteinúria e albuminúria respectivamente e suas quantidades excretadas na urina. 3.5- Métodos de análises Foram utilizadas urinas com densidade maior que 1007 para garantir que não fossem amostras de urinas hipotônicas. Centrifugou-se 10 ml de urina durante 5 minutos numa velocidade de 1500 rpm, posteriormente, removeu-se 9,5 mL do líquido sobrenadante e gentilmente suspendeu-se o sedimento em 0,5 mL de urina restante do qual retirou-se pequena alíquota de 20 µL com uma pipeta automática. Colocou-se sobre uma lâmina lapidada 72 x 24 mm coberta por uma lamínula 24 x 32 mm, para o exame microscópico. Nessa alíquota identificaram-se as populações celulares e a presença de pelo menos cinco ou mais hemácias por campo microscópico de grande aumento (400x). Amostras com mais de cinco hemácias por campo foram incluídas no estudo. Nova avaliação da hematúria foi feita na urina fresca analisada em microscópio óptico convencional, e microscópio de contraste de fase e fixada, avaliada em 20 microscópio óptico convencional. A porcentagem de codócitos e acantócitos assim como o dismorfismo eritrocitário total e hemácias crenadas, comparados entre si. 3.6- Avaliação em microscópio de contraste de fase: A mesma amostra utilizada para identificação de mais de cinco hemácias por campo foi imediatamente levada ao microscópio de contraste de fase para avaliar a presença de dismorfismo eritrocitário. 3.7- Técnica de fixação: As amostras foram coradas pelo método de Papanicolaou técnica utilizada para coloração de materiais citológicos e histológicos e o método de Panótico Rápido LB usado para coloração de lâminas hematológica. 3.7.1- Papanicolaou O material fixado em lâmina foi submetido à ação de uma série de diluições de etanol absoluto até 70%, a ação de um corante nuclear (Hematoxilina de Harris), posteriormente a ação e alcoóis e corantes citoplasmáticos orange G e EA36 e finalmente a utilização e desidratante de álcool e xilol. Os reagentes utilizados foram: Solução de Hematoxilina de Harris, hematoxilina de Harris (0,5%), alúmen potássico (10%) e óxido de mercúrio (0,25%); e a solução EA36: Verde Luz (0,2%), eosina amarela (0,2%) e marrom Bismark (0,05%), e solução de Orange G a 0,5%. Para o armazenamento do material ele foi mantido em temperatura ambiente em local fresco e isento da incidência de luz solar e contaminação química ou biológica, e as lâminas observadas posteriormente quanto à contagem da porcentagem de codócitos e acantócitos assim como o dismorfismo eritrocitário total. 21 3.7.2- Panótico Rápido LB O Panótico Rápido LB baseia-se no princípio de coloração hematológica estabelecida por Romanowsky, atuado em 15 segundos. A extensão hematológica é submetida à ação de um fixador e duas soluções corantes, por meio de imersões de 5 segundos em cada, e ao final da ultima imersão encontra-se pronta para leitura. Os reagentes utilizados foram: Panótico rápido 1, compõe-se de uma solução de triarilmetano a 0,1%, o Panótico rápido 2 compões-se por uma solução de xantenos a 0,1% e o Panótico rápido 3 compõe-se de uma solução de tiazinas a 0,1%. O armazenamento da amostra deve ser mantido em temperatura ambiente, em local fresco seco e protegido contra incidência direta de luz solar, permanecendo assim estável até a data de validade expressa em rótulo, isenta de contaminação química ou biológica. As lâminas fixadas também forma observadas posteriormente quanto à porcentagem de codócitos, a porcentagem de acantócitos e o dismorfismo eritrocitário. 3.8- Proteinúria Inicialmente a pesquisa de presença de proteinúria foi realizada em fitas reagentes de urina, pois essas fitas tradicionais são sensíveis para detectar a presença de proteinúria (exceto quando a constituição protéica não incluir albumina), porém não para a detecção de albuminúria. A proteinúria foi avaliada em uma amostra de urina isolada, pois o uso da razão proteinúria/creatininúria é um método de mensuração menos sujeito a erros de coleta, principalmente quando utilizada a primeira amostra da manhã, calculando-se a relação da proteína pela creatinina em mg/g, pelo método de Química Seca através do procedimento operacional padrão do laboratório bioquímico (POP) desta 22 instituição. Após a medida e alicotagem da urina, colocou-se uma amostra no autoanalaiser (Vitrox 950) e solicitou-se o teste, que dosou a proteína existente pela creatinina em mg/dl. Caso não se obtivesse o resultado dentro da linearidade do aparelho dilui-se uma parte de urina mais duas partes de água deionizada e o resultado então deverão ser multiplicados pelo valor da diluição (1:3). 3.9- Albuminúria A albuminúria foi avaliada em amostra de urina isolada, e os resultados foram expressos em albuminúria por creatininúria sendo considerados normais valores abaixo de 30 mg de albumina/grama de creatinina, valores entre 30 e 300mg/g definem albuminúria. A albumina urinária foi detectada pela técnica de Turbidimetria, essa técnica apresenta sensibilidade adequada para a dosagem de proteínas em fluidos biológicos como a urina e consiste em medir a turbidez das soluções causada pela proteína precipitada pelo agente ácido sulfosalisilico. Em uma reação antigeno- anticorpo, a presença de complexos insolúveis reflete ou dispersa a luz que é proporcional a concentração dos imunocomplexos. Foi expressa a quantidade de albumina em mg/dl e dividida pela quantidade de creatinina em g/dl, assim o resultado final será expresso em mg/g. 3.10- Análises estatísticas Análises estatísticas foram efetuadas para determinação da sensibilidade, especificidade, valor preditivo positivo, valor preditivo negativo, além dos respectivos intervalos de confiança dos vários parâmetros utilizados para o diagnóstico da origem da hematúria. Curvas ROC foram traçadas para verificar o poder discriminatório de cada análise por intermédio do método da maior soma de especificidade e sensibilidade (índice de Youden). Sendo que os valores encontrados nas áreas sob a curva, 23 foram considerados estatisticamente significantes caso o intervalo de confiança para 95% não interaja com o valor 0,5. Gráficos de Regressão linear foram traçados assim como o diagrama de Bland-Altman na avaliação do dismorfismo eritrocitário pelos vários métodos avaliados. Posteriormente realizou-se a comparação entre curvas ROC utilizando o programa STATA, v.9.0. O teste utilizado para tal comparação surge de um ajuste de um modelo logístico considerando o diagnóstico (glomerular ou litiásico) como variável dependente e as demais (codocitos,etc) como variáveis independentes. Ajustado o modelo logístico, obtém-se as curvas ROC utilizando o comando lroc. Através do comando roctab, obtém-se a mesma curva e, conseqüentemente, a mesma área sob a curva. Fazendo, desse modo, o ajuste para cada variáveis explanatória, as comparações são feitas utilizando-se os valores preditos em cada situação através da aplicação de um teste qui-quadrado para cada ponto, ou seja, para cada valor predito, tabelas de contingência são formadas afim de verificar se, em cada ponto, existe diferença significativa entre as curvas. Esta diferença é então calculada pelo comando rorcomp, através de um teste qui-quadrado final. Caso haja diferença significativa entre as áreas, isto sugere que os modelos têm diferentes habilidades preditivas. Para dados paramétricos, foram expressas médias e desvio padrão. Foi considerado significante p < 0,05. Resultados 24 4- Resultados A média de idade dos pacientes portadores de glomerulopatias foi de 40,5 ± 15,5 variando de 9 a 70 anos, sendo quarenta e um pacientes do sexo feminino e vinte e cinco do sexo masculino. Nos portadores de litíase renal a média de idade foi de 45,8 ± 13,3 variando de 17 a 83 anos, sendo quarenta e três pacientes do sexo feminino e vinte e dois pacientes do sexo masculino. Dos portadores de litíase renal, cinqüenta e seis pacientes eram de cor branca e nove de cor não-branca. Dos portadores de glomerulopatia, quarenta e oito eram de cor branca e dezoito não-brancos. Quanto ao resultado da biópsia renal destes pacientes, nove apresentaram glomeruloesclerose segmentar e focal, onze nefrite lúpica, dezessete, apresentaram nefropatia por IgA, quatro pacientes apresentaram glomerulonefrite mesangial, dois pacientes com doença por lesão mínima, um paciente apresentou glomerulonefrite membranoproliferativa, um paciente com glomerulonefrite crescêntica, dez com glomerulonefrite do tipo membranosa, sete com glomerulonefrite crônica esclerosante e quatro pacientes apresentaram glomerulonefrite difusa aguda, dados esses observados na tabela 1. Vale ressaltar que em cada uma das amostras, foram avaliados 100 eritrócitos e classificadas de acordo com a morfologia apresentada, isomórfica (célula de padrão circular com conteúdo de hemoglobina normal), crenadas, codócitos (hemácias em alvo) e acantócitos (forma anelar com protusões citoplasmáticas vesiculares na superfície). A mediana de hemácias por campo avaliadas foi de 13 para os dois grupos com intervalo interquartílico de 8 a 23 hemácias para os pacientes de glomerulopatias e de 8 a 13 hemácias nos pacientes de calculose renal. Todos 25 esses dados podem ser observados na tabela 1. Os dois grupos foram homogêneos em relação às variáveis avaliadas. Tabela 1: Dados demográficos e clínicos Glomerulopatias (n=66) Litíase renal (n=65) p Idade (anos) 40,5 ± 15,5 45,8 ± 13,3 0,906 Sexo feminino 41 43 0,765 Raça branca 48 56 0,497 Anatomia Patológica GESF Nefrite lúpica IgA GN Mesangial DLM GNMP GN Crescêntica GNM GNC GNDA 9 11 17 4 2 1 1 10 7 4 - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - Hemácias (por campo) 13 (8 - 23) 13 (8 - 13) 0,201 GESF: Glomeruloesclerose Segmentar e Focal, IgA: Nefropatia por IgA, GN mesangial: Glomerulonefrite Mesangial, DLM: Doença por Lesão Mínima, GNMP: Glomerulonefrite Membranoproliferativa, GN Crescêntica: Glomerulonefrite Crescêntica, GNM: Glomerulonefrite Membranosa, GNC: Glomerulonefrite Crônica Esclerosante, GNDA: Glomerulonefrite Difusa Aguda. A figura 1 refere-se às hemácias isomórficas em sedimento urinário fresco, observadas em microscópio óptico convencional, a figura 2 refere-se às hemácias isomórficas também em sedimento urinário fresco, observadas em microscópio de contraste de fase. A figura 3 observa-se as hemácias isomórficas avaliadas em sedimento urinário fixada pela coloração de Papanicolaou e a figura 4 hemácias isomórficas em sedimento urinário fixado pela coloração de panótico rápido LB observados em microscópio óptico convencional. 26 A figura 5 refere-se à presença de codócitos em sedimento urinário fresco, observados em microscópio óptico convencional. Na figura 6 encontram-se representados codócitos em sedimento urinário fresco, avaliados em microscópio de contraste de fase. Na figura 7 observam- se codócitos avaliados em sedimento urinário fixado pela coloração de Papanicolaou e a figura 8 encontram-se representados codócitos fixados pela coloração de Panótico rápido LB observados em microscópio óptico convencional. Na figura 9 encontram-se representados os acantócitos avaliados em sedimento urinário fresco, observado em microscópio óptico convencional e na figura 10 encontram-se representados os acantócitos avaliados em sedimento urinário fresco, observados pelo microscópio de contraste de fase. Na figura 11 observam-se os acantócitos em sedimento urinário fixado através da coloração de Papanicolaou e na figura 12 os acantócitos observados em sedimento urinário fixado pela coloração de Panótico rápido LB e observados em microscópio óptico convencional. Vale ressaltar que todas as fotografias aqui apresentadas foram realizadas pela própria autora deste trabalho. 27 Figura 1: Hemácias isomórficas: sedimento fresco, microscópio óptico convencional. Figura 2: Hemácias isomórficas: sedimento fresco, microscópio contraste de fase Figura 1: Hemácias isomórficas: sedimento fresco, microscópio óptico convencional 28 Figura 4: Hemácias isomórficas: sedimento fixado, coloração de Panótico Rápido LB Figura 3: Hemácias isomórficas: sedimento fixado, coloração de Papanicolaou 29 Figura 5: Codócitos: sedimento fresco, microscópio óptico convencional Figura 6: Codócitos: sedimento fresco, microscópio de contraste de fase 30 Figura 7: Codócitos: sedimento fixado, coloração de Papanicolaou Figura 8: Codócitos: sedimento fixado, coloração de Panótico rápido LB 31 Figura 10: Acantócito: sedimento fresco, microscópio de contraste de fase Figura 9: Acantócito: sedimento fresco, microscópio óptico convencional 32 Figura 12: Acantócito: sedimento fixado, coloração de Panótico rápido LB Figura 11: Acantócito: sedimento fixado, coloração de Papanicolaou 33 Na figura 13 encontram-se representadas as curvas ROC relativas à porcentagem de dismorfismo eritrocitário total, a porcentagem de codócitos, acantócitos e hemácias crenadas em relação à presença de hematúria glomerular observada em microscópio óptico convencional com o sedimento urinário fresco. Na tabela 2, encontram-se as áreas sob a curva a probabilidade estatística e o Intervalo de confiança de 95%. Pode se observar que o dismorfismo eritrocitário total, codócitos, acantócitos e hemácias crenadas avaliadas em microscópio óptico convencional, apresentaram áreas sob as respectivas curvas com significância estatística inferior a 0,05 em relação à área de 0,50. Dessa maneira todos esses parâmetros foram capazes de discriminar a presença de hematúria glomerular. Analisando os melhores pontos de corte para diferenciar hematúria glomerular e não glomerular pelo índice de Youden. Verificou-se que, o dismorfismo eritrocitário total em sedimento fresco no microscópio óptico convencional apresentou um ponto de corte de 26 % com sensibilidade de 82% e especificidade de 94% com área sob a curva (ASC) Intervalo de Confiança (IC) 95% de 0,93 (0,89 -0,97), valor preditivo positivo (VPP) de 93% e valor preditivo negativo (VPN) de 84%. Os codócitos apresentaram um ponto de corte de 15% com sensibilidade de 88% e especificidade de 82% e ASC (IC 95%) de 0,90 (0,85-0,95), valor preditivo positivo de 83% e valor preditivo negativo de 87%, os acantócitos apresentaram um ponto de corte de 6% com sensibilidade de 85% e especificidade de 83% com ASC (IC 95%) de 0,87 (0,80-0,94), valor preditivo positivo de 84% e valor preditivo negativo de 84%. Já as hemácias crenadas não apresentaram uma área sob a curva estatisticamente significante com ASC (IC 95%) de 0,50 (0,41-0,60). 34 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1 - Especificidade 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 Se ns ib ili da de Área sob a Curva Codócitos oc Acantócitos oc dism.totall oc Hemácias crenadas oc Linha de Referência Figura 13: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total no microscópio óptico convencional a fresco (dism.total oc), codócitos (codócitos oc) acantócitos (acantócitos oc) e hemácias crenadas (hemácias crenadas oc) 35 Tabela 2. Áreas sob curva do dismorfismo eritrocitário total no microscópio óptico convencional a fresco do total de células dismórficas (dism.total oc), codócitos (codócitos oc), acantócitos (acantócitos oc) e hemácias crenadas (hemácias crenadas oc). Intervalo de confiança (IC) de 95% e p < 0,05 Variável teste Área Erro padrão p Intervalo de Confiança 95% Limite Limite Inferior superior Codócitos oc 0,905 0,025 0,000 0,856 0,955 Acantócitos oc 0,871 0,034 0,000 0,806 0,937 Dism. Total oc 0,934 0,022 0,000 0,890 0,978 Hemácias crenadas oc 0,507 0,051 0,887 0,408 0,606 Com um ponto de corte abaixo de 9% na avaliação do dismorfismo eritrocitário total, apresentou uma sensibilidade de 100% e especificidade de 25% no diagnóstico de hematúria glomerular e com um ponto de corte acima de 58% apresentou uma sensibilidade de 16% e especificidade de 100% no diagnóstico de hematúria glomerular. Para os codócitos verificou-se que um ponto de corte abaixo de 8% apresentou uma sensibilidade de 100% e especificidade de 42% para o diagnóstico de hematúria glomerular e um ponto de corte de 32% apresentou uma sensibilidade de 30% e especificidade de 100% no diagnóstico da hematúria glomerular, nos acantócitos a ausência total, ou seja, com um ponto de corte de 0% verificou-se uma sensibilidade de 100% e uma especificidade de 0% no diagnóstico da hematúria glomerular e em um ponto de corte de 36% verificou-se uma sensibilidade de 4% e uma especificidade de 100% na avaliação da hematúria glomerular. 36 Comparando as áreas sobre a curva (p-valor inferior a 0,05) das diferentes formas de hemácias (codócito, acantócito e dismorfismo eritrocitário total) no microscópio óptico convencional, houve diferença estatística somente entre a área sob a curva dos acantócito em relação à área sob a curva do dismorfismo eritrocitário total, neste método, favorecendo a avaliação do dismorfismo eritrocitário total (p= 0,0043). Não ocorreram diferenças estatísticas nas outras comparações (figura13). Na figura 14 encontram-se representadas as curvas ROC relativas à porcentagem de dismorfismo eritrocitário total, porcentagem de codócitos, acantócitos e hemácias crenadas em relação à presença de hematúria glomerular observada em microscópio de contraste de fase com o sedimento urinário fresco. Na tabela 3, encontram-se as áreas sob a curva, o Intervalo de confiança de 95% que foi considerado estatisticamente significante com p menor que 0,05 quando este intervalo não abrangia a área de 0,50. Pode se observar que o dismorfismo eritrocitário total, codócitos, acantócitos e hemácias crenadas avaliadas em microscópio de contraste de fase, apresentaram áreas sob as respectivas curvas com significância estatística. 37 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1 - Especificidade 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 Se ns ib ili da de Área sob a Curva Codócitoscf Acantócitos cff Dismtotal cf Hemácias crenadas cf Linha de referencia Figura 14: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total no microscópio de contraste de fase (dism.total cf), codócitos (codócitos cf), acantócitos (acantócitos cf) e hemácias crenadas (hemácias crenadas cf) 38 Tabela 3: Áreas sob curva do dismorfismo eritrocitário total no microscópio de contraste de fase (dism.total cf), codócitos (codócitos cf), acantócitos (acantócitos cf) e hemácias crenadas (hemácias crenadas cf). Intervalo de confiança (IC) de 95%e p < 0,05 Variável teste Área Erro padrão p Intervalo de Confiança 95% Limite Limite Inferior Superior Codócitos cf 0,816 0,038 0,000 0,742 0,891 Acantócitoscf 0,931 0,025 0,000 0,882 0,980 Dism. Total cf 0,902 0,028 0,000 0,848 0,956 Hemácias crenadas cf 0,507 0,051 0,887 0,408 0,606 Analisando os melhores pontos de corte pelo índice de Youden a porcentagem de dismorfismo eritrocitário do sedimento fresco avaliado no microscópio de contraste de fase apresentou ponto de corte de 41 % com sensibilidade de 80% e especificidade de 88% e ASC (IC 95%) de 0,90 (0,85 -0,96), valor preditivo positivo de 87% e valor preditivo negativo de 82%. Os codócitos apresentaram um ponto de corte de 27% com sensibilidade de 73% e especificidade de 78% e ASC (IC 95%) de 0,81 (0,74-0,90) com valor preditivo positivo de 77% e valor preditivo negativo de 74%. Nos acantócitos observou-se um ponto de corte de 8% com sensibilidade de 94% e especificidade de 89% com ASC (IC 95%) de 0,93 (0,88-0,98) com valor preditivo positivo de 90% e valor preditivo negativo de 94%. As hemácias crenadas não apresentaram área sob a curva estatisticamente significante com ASC (IC 95%) de 0,50 (0,41-0,60). Com um ponto de corte abaixo de 13% na avaliação do dismorfismo eritrocitário total, a sensibilidade era de 100% e a especificidade de 31% no diagnóstico de hematúria glomerular. Com um ponto de corte acima de 89% houve 39 uma sensibilidade de 3% e especificidade de 100% no diagnóstico de hematúria glomerular. Para os codócitos verificou-se que o ponto de corte abaixo de 9% apresentou uma sensibilidade de 100% e especificidade de 26% para o diagnóstico da hematúria glomerular e apresentou um ponto de corte de 82% com uma sensibilidade de 0% e especificidade de 100% no diagnóstico da hematúria glomerular, já com os acantócitos a ausência total, ou seja, com um ponto de corte de 0% apresentou uma sensibilidade de 100% e uma especificidade de 0% no diagnóstico da hematúria glomerular e um ponto de corte acima de 29% apresentou uma sensibilidade de 26% e uma especificidade de 100% na avaliação da hematúria glomerular. Comparando as áreas sob a curva (p-valor inferior a 0,05) das diferentes formas de hemácias (codócito, acantócito e dismorfismo total) no microscópio de contraste de fase, houve diferença estatística entre a área sob a curva dos codócitos em relação à área sob a curva dos acantócitos (p= 0,0038) e entre a área sob a curva dos codócitos em relação a área sob a curva do dismorfismo eritrocitário total (p=0,000), neste método, favorecendo a avaliação dos acantócitos pois foi o que apresentou melhor sensibilidade e especificidade em relação as outras comparações, em que não foram encontradas diferenças estatísticas (figura14). Na figura 15 encontram-se representadas as curvas ROC relativas à porcentagem de dismorfismo eritrocitário total, porcentagem de codócitos e acantócitos em relação à presença de hematúria glomerular observada em microscópio óptico convencional com sedimento urinário fixado submetido à coloração de Papanicolaou. 40 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1 - Especificidade 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 Se ns ib ili da de Àrea sob a Curva Codócitosfp Acantócitosfp dismtotalfp Linha de referência Figura 15: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total do sedimento fixado na coloração de Papanicolaou observado no microscópio óptico convencional (dism.total fp), codócitos (codócitos fp), acantócitos (acantócitos fp) 41 Na tabela 4, encontram-se as áreas sob a curva, a probabilidade estatística e o Intervalo de confiança de 95% com significância estatística menor que 0,05 quando este intervalo não abrangia a área de 0,50. Pode se observar que o dismorfismo eritrocitário total, codócitos, acantócitos avaliados em microscópio óptico convencional com sedimento fixado pela coloração de Papanicolaou apresentaram áreas sob as respectivas curvas com significância estatística. Tabela 4: Áreas sob curva referentes ao dismorfismo eritrocitário total do sedimento fixado na coloração de Papanicolaou observado no microscópio óptico convencional (dism.total fp), codócitos (codócitos fp), acantócitos (acantócitos fp). Intervalo de confiança (IC) de 95%e p menor 0,05 Variável teste Área Erro padrão p Intervalo de Confiança 95% Limite Limite Inferior Superior Codócitos fp 0,882 0,029 0,000 0,826 0,939 Acantócitos fp 0,880 0,031 0,000 0,819 0,942 Dism. Total fp 0,914 0,026 0,000 0,863 0,965 A porcentagem de dismorfismo eritrocitário do sedimento fixado avaliado no microscópio no microscópio óptico convencional submetido à coloração de Papanicolaou pelo índice de Youden apresentou ponto de corte de 20 % com sensibilidade de 92% e especificidade de 85% com ASC (IC 95%) de 0,91 (0,86 - 0,96), valor preditivo positivo de 86% e valor preditivo negativo de 92%. Os codócitos apresentaram em um ponto de corte de 15%, uma sensibilidade de 75% e especificidade de 92% e ASC (IC 95%) de 0,88 (0,82-0,93) com valor preditivo 42 positivo de 79% e valor preditivo negativo de 80%. Os acantócitos apresentaram um ponto de corte de 9% apresentaram uma sensibilidade de 73% e especificidade de 92% com ASC (IC 95%) de 0,88 (0,81-0,94) com valor preditivo positivo de 90% e valor preditivo negativo de 77%. Com um ponto de corte abaixo de 6% na avaliação do dismorfismo eritrocitário total a sensibilidade era de 100% e a especificidade de 25% no diagnóstico de hematúria glomerular. Com um ponto de corte acima de 48% a sensibilidade foi de 24% e especificidade de 100% no diagnóstico de hematúria glomerular. Para os codócitos verificou-se que um ponto de corte abaixo de 5% apresentou sensibilidade de 100% e especificidade de 20% para o diagnóstico da hematúria glomerular e um ponto de corte de 31% apresentou uma sensibilidade de 30% e especificidade de 100% no diagnóstico da hematúria glomerular, já com os acantócitos a ausência total, ou seja, com um ponto de corte de 0% a sensibilidade era de 100% e a especificidade de 0% no diagnóstico da hematúria glomerular. Um ponto de corte acima de 22% apresentou uma sensibilidade de 16% e uma especificidade de 100% na avaliação da hematúria glomerular. Comparando as áreas sob a curva (p-valor inferior a 0,05) das diferentes formas de hemácias (codócito, acantócito e dismorfismo eritrocitário total) no microscópio óptico convencional, com lâmina fixada submetido à coloração de Papanicolaou ocorreu diferença estatística somente entre a área sob a curva dos codócitos em relação à área sob a curva do dismorfismo eritrocitário total, neste método, favorecendo a avaliação do dismorfismo eritrocitário total (p= 0,0355). Não ocorreram diferenças estatísticas nas outras comparações (figura 15). Na figura 16 encontra-se representadas as curvas ROC relativas à porcentagem de dismorfismo eritrocitário total, porcentagem de codócitos e 43 acantócitos em relação à presença de hematúria glomerular observada em microscópio óptico convencional com sedimento urinário fixado submetido à coloração de Panótico rápido LB. 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1 - Especificidade 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 Se ns ib ili da de Área sob a curva Codócitosfpan Acantócitosfpan dismtotalfpan Linha de referrência Figura 16: Curvas ROC referentes ao dismorfismo eritrocitário total do sedimento fixado na coloração de Panótico rápido LB observado no microscópio óptico convencional (dism.total fpan), codócitos (codócitos fpan), acantócitos (acantócitos fpan) 44 Na tabela 5, encontram-se as áreas sob a curva a probabilidade estatística e o Intervalo de confiança de 95% com significância estatística menor que 0,05 quando este intervalo não abrangia a área de 0,50. Pode se observar que o dismorfismo eritrocitário total, codócitos, acantócitos avaliados em microscópio óptico convencional com sedimento fixado pela coloração de Panótico rápido LB também apresentaram áreas sob as respectivas curvas com significância estatística. Tabela 5: Áreas sob curva referentes ao dismorfismo eritrocitário total do sedimento fixado na coloração de Panótico rápido LB observado no microscópio óptico convencional (dism.total fpan), codócitos (codócitos fpan), acantócitos (acantócitos fpan). Intervalo de confiança (IC) de 95%e p menor 0,05 Variável teste Área Erro padrão p Intervalo de Confiança 95% Limite Limite Inferior Superior Codócitos fpan 0,871 0,032 0,000 0,808 0,934 Acantócitos fpan 0,883 0,029 0,000 0,826 0,940 Dism. Total fpan 0,902 0,028 0,000 0,848 0,956 A porcentagem de dismorfismo eritrocitário do sedimento fixado avaliado pelo índice de Youden no microscópio óptico convencional submetido à coloração de Panótico rápido LB apresentou ponto de corte de 20% com sensibilidade de 86% e especificidade de 85% com ASC (IC 95%) de 0,90 (0,84 -0,95), valor preditivo positivo de 85% e valor preditivo negativo de 86%. Os codócitos apresentaram um ponto de corte de 16% com sensibilidade de 80% e especificidade de 85% e ASC (IC 95%) de 0,87 (0,80-0,93) com valor preditivo positivo de 84% e valor preditivo 45 negativo de 81%. Os acantócitos apresentaram um ponto de corte de 8% com sensibilidade de 67% e especificidade de 93% com ASC (IC 95%) de 0,88 (0,81- 0,94) com valor preditivo positivo de 90% e valor preditivo negativo de 73%. Com um ponto de corte abaixo de 7% na avaliação do dismorfismo eritrocitário total a sensibilidade era de 100% e especificidade de 31% no diagnóstico de hematuria glomerular e com um ponto de corte acima de 73% uma sensibilidade de 3% e especificidade de 100% no diagnóstico de hematúria glomerular. Para os codócitos verificou-se que um ponto de corte abaixo de 5% apresentou uma sensibilidade de 100% e especificidade de 25% para o diagnóstico da hematuria glomerular e um ponto de corte de 46% uma sensibilidade de 9% e especificidade de 100% no diagnóstico da hematuria glomerular, já com os acantócitos a ausência total, ou seja, com um ponto de corte de 0% apresentou uma sensibilidade de 100% e uma especificidade de 0% no diagnóstico da hematuria glomerular e quando ocorreu um ponto de corte acima de 24% verificou-se uma sensibilidade de 7% e uma especificidade de 100% na avaliação da hematúria glomerular. Comparando as áreas sob a curva (p-valor inferior a 0,05) das diferentes formas de hemácias (codócito, acantócito e dismorfismo eritrocitário total) no microscópio óptico convencional, com lâmina fixada submetido à coloração de Panótico rápido LB, ocorreu diferença estatística somente entre a área sob a curva dos codócitos em relação à área sob a curva do dismorfismo eritrocitário total, neste método, favorecendo a avaliação do dismorfismo eritrocitário total (p= 0,0090). Nas outras comparações, não houve diferenças estatísticas (figura 16). Na figura 17 encontra-se representadas as curvas ROC relativas ao Índice de Albuminúria e ao Índice de Proteinúria. 46 Na tabela 6, encontram-se as áreas sob a curva a probabilidade estatística e o Intervalo de confiança de 95% com significância estatística menor que 0,05 quando este intervalo não abrangia a área de 0,50. Pode se observar que tanto o Índice de Albuminúria como o Índice de Proteinúria, apresentaram áreas sob as respectivas curvas com significância estatística. 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 1 - Especificidade 0,0 0,2 0,4 0,6 0,8 1,0 Se ns ib ili da de Área sob a Curva Índice albuminúria Índice proteinúria Linha de Referência Figura 17: Curvas ROC referentes ao Índice de Albuminúria e ao Índice de Proteinúria 47 Tabela 6: Áreas sob curva referentes ao Índice de albuminúria e ao Índice de proteinúria. Intervalo de confiança (IC) de 95%e p < 0,05 Variável teste Área Erro padrão p Intervalo de Confiança 95% Limite Limite Inferior superior Índice albuminúria 0,827 0,039 0,000 0,752 0,903 Índice Proteinúria 0,795 0,041 0,000 0,716 0,875 O índice de albuminúria apresentou ponto de corte de 54,4 mg/g de creatininúria avaliado pelo índice de Youden com uma sensibilidade de 76% e especificidade de 85% com ASC (IC 95%) de 0,82 (0,75 -0,90), valor preditivo positivo de 83% e valor preditivo negativo de 77%. O índice de proteinúria apresentou um ponto de corte de 300 mg/g de creatininúria com sensibilidade de 67% e especificidade de 88% e ASC (IC 95%) de 0,79 (0,71-0,87) com valor preditivo positivo de 84% e valor preditivo negativo de 71%. Com um ponto de corte abaixo de 0,82 mg/g na avaliação do índice de albuminúria/creatininúria, apresentou uma sensibilidade de 100% e especificidade de 0% no diagnóstico de hematúria glomerular e com um ponto de corte acima de 624,27 mg/g observou-se uma sensibilidade de 16% e uma especificidade de 100% no diagnóstico de hematúria glomerular. No índice de proteinúria, com um ponto de corte abaixo de 18,8 mg/g de creatininúria verificou-se uma sensibilidade de 100% e especificidade de 0% para o diagnóstico da hematuria glomerular e com um ponto de corte de 2724,5 mg/g apresentou uma sensibilidade de 12% e uma especificidade de 100% no diagnóstico da hematúria glomerular. 48 Na tabela 7, encontram-se representados os valores referentes aos Pontos de corte, Sensibilidade, Especificidade, Valores Preditivos Positivos, Valores Preditivos Negativos, das hemácias dismórficas observadas nos diferentes métodos aplicados no estudo e do Índice de Proteinúria e Albuminúria. Quando comparado o melhor método para avaliar cada tipo de hemácias dismórficas, observa-se que o codócito visualizado pelo microscópio de contraste de fase e os codócitos visualizados microscópio óptico convencional com lâmina fixada submetido à coloração de Papanicolaou, apresentaram a melhor relação com a origem glomerular da hematúria, o mesmo aconteceu para os acantócitos visualizados em microscópio de contraste de fase. Para avaliação do dismorfismo eritrocitário total, não houve diferença estatística entre os diferentes microscópios, assim como mostra a tabela 8. 49 Tabela 7: Pontos de corte (PC), Sensibilidade (Sensib.), Especificidade (Especif), Valores Preditivos Positivos (VPP), Valores Preditivos Negativos (VPN) das hemácias dismórficas observadas em cada método e do Índice de Proteinúria e Albuminúria Método PC Sensib. Especif. VPP VPN Óptico convenciona Codócitos ≥ 15% 88% 82% 83% 87% Acantócitos ≥ 6% 85% 83% 84% 84% Dism. total ≥ 26% 82% 94% 93% 84% Contraste de Fase Codócitos ≥ 27% 73% 78% 77% 74% Acantócitos ≥ 8% 94% 89% 90% 94% Dism. total ≥ 41% 80% 88% 87% 82% Papanicolaou Codócitos ≥ 15% 92% 75% 79% 80% Acantócitos ≥ 9% 73% 92% 90% 77% Dism. total ≥ 20% 92% 85% 86% 92% Panótico Codócitos ≥ 16% 80% 85% 84% 81% Acantócitos ≥ 8% 67% 93% 90% 73% Dism. total ≥ 20% 86% 85% 85% 86% Proteinúria _ ≥ 300 mg/g 67% 88% 84% 71% Albuminúria _ ≥ 54mg/g 76% 85% 83% 77% PC- Ponto de Corte, Sensib.- sensibilidade, Especif.- Especificidade, VPP- Valor Preditivo Positivo, VPN- Valor Preditivo Negativo. 50 Tabela 8: Comparação