UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA - UNESP 

CÂMPUS JABOTICABAL 

 

 

 

 

 

ASSOCIAÇÃO ENTRE Azospirillum brasilense E MILHO NA 

TOLERÂNCIA AO ESTRESSE SALINO: UMA ABORDAGEM 

ANTIOXIDANTE 

 

 

 

 

 

 

Mirela Vantini Checchio 

Bióloga 

 

 

 

2019 

 



 
 

UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA – UNESP 

CÂMPUS JABOTICABAL 

 

 

 

 

 

ASSOCIAÇÃO ENTRE Azospirillum brasilense E MILHO NA 

TOLERÂNCIA AO ESTRESSE SALINO: UMA ABORDAGEM 

ANTIOXIDANTE 

 

 

 

 

Mirela Vantini Checchio 

Orientadora: Profª. Drª. Priscila Lupino Gratão 

Dissertação apresentada à Faculdade de 
Ciências Agrárias e Veterinárias – UNESP, 
Câmpus de Jaboticabal, como parte das 
exigências para a obtenção do título de 
Mestre em Agronomia (Produção Vegetal). 

 

 

 

 

 

2019 



 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 
 

 



 
 

DADOS CURRICULARES DO AUTOR 

 

Mirela Vantini Checchio, nasceu em 16 de Outubro de 1991 na cidade de 

Jaboticabal, São Paulo. Ingressou no ano de 2012 na Faculdade de Ciências 

Agrárias e Veterinárias – FCAV/UNESP, obtendo os títulos de Bacharel em Ciências 

Biológicas (2015) e Licenciatura em Ciências Biológicas (2017). Em agosto de 2017 

iniciou o Mestrado no Programa de Pós-Graduação em Agronomia (Produção 

Vegetal) na mesma universidade (FCAV/UNESP), dedicando-se ao estudo do 

metabolismo antioxidante de resposta a estresses abióticos em plantas cultivadas 

desde 2014 sob a orientação da docente Priscila Lupino Gratão.  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

“Pouco conhecimento faz com que as pessoas  

se sintam orgulhosas.  

Muito conhecimento, que se sintam humildes. 

 É assim que as espigas sem grãos 

                                              erguem desdenhosamente a cabeça para o céu, 

                                               enquanto que as cheias as baixam para a terra,  

sua mãe.”  

 

Leonardo da Vinci 

 



 
 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Dedicatória 

Aos meus Pais, 

fonte de ensinamentos dos valores mais genuínos, 

Por todo amor e apoio irrestrito. 

 

 



 
 

AGRADECIMENTOS 

 

 

Primeiramente à Deus, por me conceder a vida com infinita bondade e amor, guiar 

meus passos e me permitir vivenciar momentos inesquecíveis. 

À minha orientadora Priscila, por toda dedicação, conhecimentos e conversas 

compartilhados ao longo desses cinco anos. Mas, acima de tudo, pela pessoa amiga 

e inspiradora que é. 

À minha querida irmã Michele, pela nossa união e afeto inigualáveis. E pelo meu 

afilhado Murilo, que sorri com os olhos e me renova de amor e esperança a cada 

dia. 

À minha família, por todo amor e torcida ao longo do caminho. Em especial as 

minhas tias (Regina e Ednéia) e Mônica pelas orações e cuidado. 

Soninha, pelo abraço e carinho que conforta em qualquer momento que poderia 

“beirar ao caos”. 

Aos companheiros que fazem parte da rotina no Laboratório de Fisiologia Vegetal, 

sempre dispostos a ouvir e ajudar: Kevein, Leticia, Emilaine, Reginaldo, Clebson, 

Rafael, Carol, Ricardo, Jeferson, Noelle, Milena e Kolima. E a todos que por lá 

passaram. Em especial, Rita de Cássia, por me auxiliar não só na condução do 

experimento, mas sim por dividir conhecimentos e me ensinar indiretamente sobre 

determinação. 

Gilmar, pelo companheirismo diário no laboratório, dose de autenticidade emanada e 

conselhos únicos. E principalmente, pelas inúmeras vezes que você me enxergou 

melhor do que eu sou. 

Mayara, pela amizade e sintonia em vários âmbitos da vida. 

Roberta, Fran e Marina Gavassi, pelos desabafos e palavras de conforto nos 

momentos de aflição e por serem a prova viva de que a amizade nunca foi uma 

questão de presença física.  



 
 

Fernanda e Talita, por apoiarmos umas às outras ao longo desses anos e pelos 

momentos que são infindáveis na memória.  

Aos meus amigos do “Glorinha” (eterna Bio 012) que guardo no coração. E a todos 

os outros que aqui não mencionei por nome, mas que marcaram minha vida em 

alguma etapa, deixando um pouquinho de si e contribuindo de alguma forma.  

Aos colegas e professores da Pós-graduação, pelos conhecimentos transmitidos, 

conversas e parcerias ao longo do percurso. 

O presente trabalho foi realizado com apoio da Coordenação de Aperfeiçoamento de 

Pessoal de Nível Superior – Brasil (CAPES) – Código de Financiamento 001. 

A todos que contribuíram de forma direta ou indireta para a execução deste trabalho,  

Muito Obrigada! 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



i 
 

 

SUMÁRIO 

 

 

1. INTRODUÇÃO ............................................................................................................... 1 

2. REVISÃO DE LITERATURA .......................................................................................... 3 

2.1 A Cultura do Milho: aspectos morfológicos, socioeconômico e fisiológicos .................. 3 

2.2 Efeito da salinidade nas plantas .............................................................................. 5 

2.3 Mecanismos de defesa perante o estresse salino .................................................... 7 

2.4 Impactos da salinidade e adubação nitrogenada nos sistemas de produção 

agrícolas ............................................................................................................................ 8 

2.5 Uso de bactérias diazotróficas: Azospirillum brasilense ......................................... 10 

3. MATERIAL E MÉTODOS ............................................................................................. 12 

3.1 Condução do experimento.......................................................................................... 12 

3.2. Análise de massa seca (MS) ..................................................................................... 13 

3.3. Teor de clorofila e carotenóides................................................................................. 13 

3.4. Determinação do conteúdo de Na+ ............................................................................ 14 

3.5. Determinação do acúmulo de N ................................................................................ 14 

3.6. Análise bioquímica .................................................................................................... 15 

3.6.1. Peroxidação lipídica (MDA) ................................................................................. 15 

3.6.2. Extração de proteínas e determinação enzimática .............................................. 15 

3.6.3. Superóxido Dismutase (SOD, EC 1.15.1.1) ........................................................ 15 

3.6.4. Glutationa Redutase (GR, EC 1.8.1.7) ................................................................ 16 

3.6.5. Glutationa Peroxidase (GSH-PX, EC 1.11.1.9) ................................................... 16 

3.6.6. Guaiacol Peroxidase (GPOX, EC, 1.11.1.7) ........................................................ 16 

3.7. Análise estatística .................................................................................................. 17 

4. RESULTADOS ............................................................................................................. 17 

4.1. Clorofila total e Carotenóides ................................................................................. 17 

4.2. Peroxidação Lipídica – malondialdeído (MDA)....................................................... 18 

4.3. Enzimas Antioxidantes........................................................................................... 20 

4.3.1. Superóxido dismutase (SOD, EC 1.15.1.1) ......................................................... 20 

4.3.2. Glutationa redutase (GR, EC 1.8.1.7) ................................................................. 22 

4.3.3. Glutationa peroxidase (GSH-PX, EC 1.11.1.9) .................................................... 24 

4.3.4. Guaiacol Peroxidase (GPOX, EC 1.11.1.7) ......................................................... 25 



ii 
 

4.4. Determinação de Na+ ............................................................................................. 27 

4.5. Quantificação do acúmulo de N ............................................................................. 28 

4.6. MS dos tecidos vegetais ........................................................................................ 30 

5. DISCUSSÃO ................................................................................................................ 32 

6. CONCLUSÃO............................................................................................................... 38 

7. REFERÊNCIAS ............................................................................................................ 39 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



iii 
 

ASSOCIAÇÃO ENTRE Azospirillum brasilense E MILHO NA TOLERÂNCIA AO 

ESTRESSE SALINO: UMA ABORDAGEM ANTIOXIDANTE 

 

 

RESUMO - Devido às intensas mudanças climáticas globais e atividades 
antropogênicas, a salinidade tornou-se uma das principais problemáticas limitantes à 
produção agrícola. Para lidar com essa problemática, o estudo de genótipos e 
cultivares que sejam tolerantes ao sal, bem como alternativas através de inoculantes 
torna-se cada vez mais necessário. O objetivo deste trabalho foi caracterizar a 
resposta antioxidante através da inoculação de Azospirillum brasilense em milho, e 
correlacionar a atividade destas enzimas ao aumento na capacidade da planta em 
tolerar o estresse ocasionado pela salinidade. Os tratamentos foram formados pela 
combinação de cloreto de sódio (0 e 100 mM de NaCl) via água de irrigação e 
ausência e presença do inóculo de A. brasilense, sendo o experimento conduzido 
inteiramente casualizado, com quatro repetições. Os resultados demonstraram 
diferentes respostas de acordo com as análises de peroxidação lipídica (MDA), 
quantificação de nitrogênio (N) e sódio (Na+), massa seca (MS) e atividades 
enzimáticas, como superóxido dismutase (SOD, EC 1.15.1.1), glutationa redutase 
(GR, EC 1.6.4.2), guaiacol peroxidase (GPOX, EC 1.11.1.7) e glutationa peroxidase 
(GSH-PX, EC. 1.11.1.9). Os resultados mostraram que 100 mM de NaCl ocasionou 
peroxidação lipídica, com consequente aumento do teor de MDA. Entretanto, com a 
presença da bactéria nesta condição, o teor de MDA foi reduzido, houve aumento do 
acúmulo de N e as enzimas apresentaram diferenças significativas entre si, com 
aumentos significativos para GSH-PX e GPOX. Nossos dados sugerem que a 
presença de A. brasilense no milho sob estresse salino pode conferir tolerância a 
planta e que esta tolerância está relacionada ao sistema de defesa antioxidante, 
principalmente de GSH-PX e GPOX. 

Palavras-chave: Bacterias diazotróficas, Estresse abiótico, Indução de tolerância 
salina, Zea mays L. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



iv 
 

 

ASSOCIATION BETWEEN Azospirillum brasilense AND MAIZE ON 
TOLERANCE TO SALINE STRESS: AN ANTIOXIDANT APPROACH 

 

 

ABSTRACT - Due to intense global climate change and anthropogenic 
activities, salinity has become one of the main problems limiting agricultural 
production. To deal with this problem, the study of genotypes and cultivars that are 
salt tolerant and alternatives through inoculants becomes increasingly necessary. 
The main of this work was to characterize an antioxidant response through the 
inoculation of Azospirillum brasilense in maize and to correlate the activity of the 
enzymes with the salt-stress tolerance. The experiment was carried out in a 
completely randomized design with four replications. The treatments were performed 
by combination of sodium chloride (0 and 100 mM NaCl) through irrigation water and 
absence and presence of A. brasilense inoculation. Overall results showed different 
responses according to lipid peroxidation (MDA), nitrogen (N) and Na+ contents, dry 
mass (DM) and enzymatic activities, such as superoxide dismutase (SOD, EC 
1.15.1.1), glutathione reductase (GR, EC 1.6.4.2), guaiacol peroxidase (GPOX, EC 
1.11.1.7) and glutathione peroxidase (GSH-PX, EC 1.11.1.9). The results showed 
were that 100 mM NaCl caused lipid peroxidation with consequent increases in MDA 
content. However, MDA content was reduced and antioxidant enzymes 
demonstrated significant differences in the presence of the bacteria. Our data 
suggest that A. brasilense may confer plant tolerance in maize to salt stress and 
acquired tolerance can be related to the antioxidant system, mainly GSH-PX and 
GPOX.  

Keywords: Abiotic stress, Diazotrophic bacterias, Salt tolerance induction, Zea mays 
L. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



v 
 

 

LISTA DE FIGURAS 

 

Figura 1. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre o teor de 

Clorofila Total (A) e Carotenóides (B). Médias seguidas pela mesma letra não 

diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de 

quatro repetições ( n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). .................. 18 

Figura 2. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre o conteúdo 

de MDA nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não diferem 

entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de quatro 

repetições ( n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). ............................. 20 

Figura 3. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre a atividade 

da enzima SOD nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não 

diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de 

quatro repetições ( n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). .................. 22 

Figura 4. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre a atividade 

da enzima GR nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não 

diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de 

quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). ................... 23 

Figura 5. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre a atividade 

da enzima GSH-PX nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra 

não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias 

de quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). .............. 25 

Figura 6. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre a atividade 

da enzima GPOX nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não 

diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de 

quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). ................... 26 

Figura 7. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre o acúmulo de 

Na+ nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não diferem 

entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de quatro 

repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). .............................. 28 



vi 
 

Figura 8. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre o acúmulo de 

N nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não diferem entre si 

pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de quatro repetições 

(n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). ................................................ 29 

Figura 9. Efeito da inoculação de A. brasilense e estresse salino sobre a MS nas 

raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não diferem entre si pelo 

teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de quatro repetições (n= 

4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). ...................................................... 31 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



1 
 

 

 

1.  INTRODUÇÃO 

 

 

Devido as intensas mudanças climáticas globais e atividades antropogênicas, 

incluindo práticas de irrigação, a qualidade das terras agrícolas vem sendo afetadas, 

especialmente pelo aumento da deposição de sal no solo. Desse modo, a salinidade 

tornou-se um dos principais estresses abióticos que acomete a produtividade e o 

desenvolvimento de inúmeras culturas mundialmente (Liang et al., 2018).  

Sob salinidade, o principal efeito decorrente nas plantas é o estresse 

osmótico, ocasionado por um desbalanço de íons sódio (Na+) e cloro (Cl-), afetando 

instantaneamente a captação de água e outros nutrientes e consequentemente o 

crescimento vegetal (Liang et al., 2018). Posteriormente, quando os níveis de sal 

atingem um limiar além do qual a planta pode tolerar, ocorre a toxicidade iônica, 

causando desequilíbrios iônicos através de um intenso influxo de Na+ (Wu et al., 

2017). 

Ambas as etapas são reconhecidas como estresses primários e que podem 

suceder a outras tensões secundárias, à exemplo tem-se o estresse oxidativo que é 

ocasionado pela superprodução de espécies reativas de oxigênio (ERO) (Gratão et 

al., 2015; Liang et al., 2018), transcorrendo em danos na membrana citoplasmática e 

uma série de disfunções em processos metabólicos essenciais (Wang et al., 2017). 

Para atenuar as ERO, as enzimas antioxidantes desempenham uma 

importante resposta nos mecanismos de defesa das plantas perante a salinidade. 

Algumas enzimas que compõem essa linha de defesa são bem reconhecidas, sendo 

a superóxido dismutase (SOD, EC, 1.15.1.1), catalase (CAT, EC 1.15.1.1), glutationa 

redutase (GR, EC 1.6.4.2), guaiacol peroxidase (GPOX, EC, 1.11.1.7), glutationa 

peroxidase (GSH-PX, EC 1.11.1.9), entre outras (Gratão et al., 2015; Alves et al., 

2018). Além disso, mecanismos não enzimáticos também são bem elucidados, 

envolvendo o ascorbato (AsA), glutationa (GSH), prolina, flavonóides, alcalóides e 

carotenóides (Foyer e Noctor, 2013; Gratão et al., 2015).  



2 
 

 

Uma vez sob estresse salino, a sinalização em cascata é desencadeada e o 

sistema antioxidante de defesa é constantemente estimulado para lidar com o dano 

oxidativo. Essa capacidade antioxidante tem sido demonstrada em vários trabalhos, 

a fim de se obter uma comparação da tolerância à salinidade entre diferentes 

cultivares (Ashraf et al., 2015; Khalid et al., 2017; Radhakrishnan e Baek, 2017).  

O milho (Zea mays L.) é intensamente afetado por fatores abióticos e 

considerado moderadamente sensível ao estresse salino (Ayers e Westcot, 1999), 

refletindo negativamente em seu crescimento e desenvolvimento. Além disso, por 

ser uma das culturas economicamente mais importantes do mundo, exige uma alta 

demanda de nitrogênio (N) para manter sua produtividade (Caires e Milla., 2016). 

Com isso, fertilizantes fosfatados são constantemente utilizados, não contribuindo 

para uma abordagem ecológica sustentável (Hungria et al., 2011), além do alto custo 

para o produtor.  

Alguns estudos foram desenvolvidos visando estratégias de manejo para 

suprir a demanda de N pelas plantas, onde obtiveram resultados positivos com a 

prática de inoculação de bactérias diazotróficas, dentre elas a Azospirillum 

brasilense (Hungria, 2011; Portugal et al., 2016), bem reconhecidas por sua 

capacidade de fixação biológica de N e por promover o crescimento em algumas 

culturas (Fukami et al., 2016). Resultados satisfatórios foram encontrados como uma 

melhor arquitetura das raízes e rendimento de grãos (Portugal et al., 2016; Pii et al., 

2019), produção de hormônios vegetais (Pereira et al., 2015) e, recentemente 

estudos voltados para a indução de genes associados à defesa de plantas na 

tolerância ao estresse (Fukami et al., 2017).  

 Como uma nova proposta dentro do estudo envolvendo o efeito da 

associação de bactérias diazotróficas associadas ao milho, a potencialização do 

sistema antioxidante de resposta poderia estar associada a esta interação, tornando 

estas plantas mais tolerantes a situações ambientais adversas, como a salinidade. 

Desta forma, o objetivo deste trabalho foi caracterizar a resposta antioxidante 

através da inoculação de Azospirillum brasilense em milho e correlacionar a 

atividade destas enzimas ao aumento na capacidade da planta em tolerar o estresse 

ocasionado pela salinidade. 

 



3 
 

 

 

 

2. REVISÃO DE LITERATURA 

 

2.1 A Cultura do Milho: aspectos morfológicos, socioeconômico e 

fisiológicos 

 

 

O milho (Zea mays L.), pertencente à família Poaceae ou Gamineae é uma 

espécie originária das terras altas do México, expandindo-se posteriormente para as 

Américas, Europa e Ásia através das relações comerciais (Gong et al., 2015). Sua 

domesticação a longo prazo modificou o formato de suas origens para uma 

morfologia atual moderna, bem diferente de sua forma antiga selvagem (teosinte). 

Atualmente, seu cultivo é possibilitado em climas tropicais, subtropicais e 

temperados, graças a sua grande adaptabilidade por vários genótipos existentes 

(CONAB, 2018).  

O grão do milho é classificado como fruto e constituído por amido, 

carboidratos e sua parte mais externa – aleurona – rica em proteínas e enzimas. 

Com relação ao sistema radicular, o milho possui raiz do tipo fasciculada com 

grande desenvolvimento, sendo compostas por raízes primárias que são 

desintegradas após o surgimento das raízes secundárias, as quais apresentam uma 

grande capacidade de ramificação nos solos. Por fim, surgem as raízes adventícias 

que partem dos primeiros nós do colmo e quando atingem o solo ramificam-se 

intensamente, garantindo a sustentação física da planta (Barros e Calado, 2014; 

CONAB, 2018) 

O milho é uma planta monóica e protândrica que pode atingir cerca de até 2 

metros de altura, com variação de porte em função do próprio híbrido e das 

condições edafoclimáticas. A parte aérea constitui-se pela inflorescência feminina 

que gera a espiga, pela inflorescência masculina, exibindo função de sustentação 

foliar e das partes florais e pelo caule, como órgão de reserva, armazenador de 



4 
 

 

sacarose. As folhas por sua vez, são estreitas e dispostas nos nós alternadamente, 

compondo-se por uma bainha invaginante, estreita e de forma lanceolada, com 

bordo serrilhados e nervura central vigorosa (Barros e Calado, 2014). 

Com relação aos aspectos socioeconômicos é notório como uma das culturas 

de grande relevância e impacto econômico mundial, sendo o terceiro cereal mais 

importante do mundo (Farooq et al., 2015). Graças ao seu elevado potencial 

produtivo, valor nutricional e composição química de seus grãos que é responsável 

por abastecer diversos setores de produção, seja alimentício (cerca de 70% do milho 

destina-se para alimentação de suínos e aves), biocombustíveis e industrial (Jiang et 

al., 2017; Souza et al., 2015). No Brasil, a cultura do milho constitui-se como uma 

das mais importantes atividades do cenário agrícola, sendo cultivada em todos os 

estados da Federação e comercializado principalmente na forma de grão (Aguiar et 

al., 2012). Desse modo, o Brasil encontra-se consolidado como terceiro maior 

produtor mundial e segundo maior exportador (CONAB, 2018).  

No entanto, apesar de figurar entre os maiores produtores, o Brasil está muito 

aquém no que diz respeito à produtividade, visto que seus níveis são baixos quando 

comparados aos dois maiores produtores mundiais (EUA e China). Dados obtidos 

pelo USDA indicaram decréscimo do volume de produção da safra de 2017/2018 

com relação à anterior. Isso se deve principalmente as mudanças climáticas 

ocasionadas na época, ao decréscimo de área plantada e consequentemente a 

crescente demanda desses setores para abastecer a população, devido ao elevado 

consumo pelo brasileiro (CONAB, 2018).  

Por outro lado, graças aos avanços da tecnologia, melhoramento e manejo de 

culturas e dos programas convencionais de reprodução híbrida possibilitou que 

muitos países alcançassem níveis de produção relevantes (Okumura et al., 2011). 

Tratando-se dos aspectos fisiológicos, a cultura do milho desempenha uma melhor 

resposta em solos bem estruturados, com favorável circulação hídrica e do ar, 

possibilitando uma melhor captação água e nutrientes. É uma cultura exigente em 

água, mas também é muito eficiente em sua utilização, produzindo uma quantidade 

de matéria seca muito superior a ademais culturas (Bergamashi et al., 2004).  



5 
 

 

Outro principal requisito na cultura que interfere em seu desenvolvimento e 

produtividade é associado a disponibilidade de N. Na planta, o N é o elemento mais 

influente na produtividade do milho (DeBruin et al, 2017), pois está relacionado a 

processos essenciais do metabolismo primário, como síntese de proteína, absorção 

iônica, fotossíntese entre outros, atuando assim, nas moléculas de aminoácidos e 

proteínas (Okumura et al., 2011). No entanto, a cultivar exige uma elevada 

quantidade desse nutriente (Caires e Milla, 2016), não sendo suprido totalmente pelo 

solo. Com isso, para o desenvolvimento da cultura, comumente faz-se o uso de 

adubação nitrogenada, pois, além de complementar a insuficiência do N, o nutriente 

ainda proporciona um dos efeitos mais ressaltantes no aumento da produção de 

grãos, beneficiando também o desenvolvimento da planta (Okumura et al., 2011).  

O ciclo produtivo da cultura do milho é negativamente impactado a uma 

combinação de vários fatores de estresses bióticos e/ou abióticos, responsáveis por 

perturbações no estado fisiológico normal da planta. Embora pertença ao grupo de 

plantas com metabolismo fotossintético do tipo C4 sendo consideradas mais 

eficientes que as plantas C3 na fixação de carbono, diferentes estresses podem 

gerar efeitos diretos no balanço de carbono e na eficiência de enzimas importantes 

nessa fixação (pepcase e rubisco). No caso do estresse salino, são observados 

efeitos deletérios sobre vários parâmetros fisiológicos desde a germinação de 

sementes até a iniciação floral na cultivar (EMBRAPA, 2004; Liang et al., 2014). 

 

 

2.2 Efeito da salinidade nas plantas 

 

 

Os efeitos deletérios no crescimento e desenvolvimento das plantas 

submetidas a condições salinas podem ser de natureza osmótica, iônica ou oxidativa 

(Munns e tester, 2008; Kronzucker et al., 2013). Quando os íons dissolvidos no solo 

entram em contato com o sistema radicular, o primeiro efeito decorrente da 

salinidade é relacionado à ajustes osmóticos, alterando o balanço hídrico da planta, 



6 
 

 

em virtude da diminuição do potencial osmótico do solo e consequente redução do 

potencial hídrico (Munns e Tester, 2008; Sabir et al., 2009 Abdelgawad et al., 2016). 

Os efeitos bem documentados nesse contexto além do fechamento estomático, são 

a diminuição da turgescência e da expansão foliar (Zhu, 2011). 

Á medida que os íons Na+ e Cl- são absorvidos excessivamente, além do qual 

a planta consegue tolerar, podem ser ocasionados distúrbios fisiológicos e 

nutricionais (Hasegawa et al., 2000; Kronzucker et al., 2013; Kiani et al., 2017), 

perturbações na integridade e funcionalidade da membrana celular e aparato 

fotossintético (Wu et al., 2017), bem como inativação de enzimas importantes 

envolvidas em processos essenciais no metabolismo vegetal (Kiani et al., 2017). 

O desequilíbrio de íons intracelular ocorre devido os íons Na+ competir pelos 

mesmos sítios de absorção e transporte dentro da planta com outros nutrientes, 

como K+, Ca2+, N, P (Wang et al., 2017). Desse modo são bem documentados os 

efeitos relacionados a uma inibição mais lenta do crescimento, deficiências 

nutricionais e senescência. Além disso, quando em excesso nos solos esses sais 

podem ocasionar malefícios indiretos, pois pode haver a formação de complexos 

entre o Cl- e cátions como Pb2+, Cd2+ e Mn2+, aumentando assim a disponibilidade 

de metais tóxicos para as plantas (Almaroai et al., 2014).  

O estresse ocasionado pela salinidade também leva a ruptura da homeostase 

iônica nas células dos vegetais, resultando em dano oxidativo, ou seja, em estresse 

oxidativo e outros estresses secundários (Liang et al., 2018; Xiong et al., 2018), por 

conseguinte levando à superprodução de espécies reativas de oxigênio (ERO) (Zhu, 

2016), tais como superóxido (O2.–), oxigênio singlet (1O2), peróxido de hidrogênio 

(H2O2) e radicais hidroxila (OH·) (Gratão et al., 2005; Gill e Tuteja, 2010).  

Uma vez sob estresse salino é desencadeada uma cascata de sinalização em 

que o sistema antioxidante de defesa é constantemente estimulado para lidar com 

as lesões oxidativas. Essa capacidade antioxidante vem sendo muito estudada em 

diversas pesquisas a fim de se obter um comparativo da tolerância salina entre 

cultivares (Ashrafi et al., 2015; Kiani-Poya, 2015).  

 



7 
 

 

 

2.3 Mecanismos de defesa perante o estresse salino 

 

 

Após desencadeado a sinalização para as células em decorrência do estresse 

salino, são ativados sinais secundários em que aumenta-se os níveis de Ca2+ dentro 

da célula podendo suceder em uma reação de fosforilação, ativando proteínas 

envolvidas na defesa celular. Desse modo, decorre-se uma fase de adaptação das 

plantas perante o estresse, sendo mediado através de fatores de transcrição que 

regulam a expressão dos genes de resposta a esse estresse (Liang et al, 2018). A 

tolerância ao sal não se refere apenas em tolerar à toxidez do Na+ pela planta, mas 

sim a um ajustamento aos seus efeitos secundários. 

Além do fechamento estomático, são bem descritos o acúmulo de osmólitos e 

aumento da atividade de Na+/H+ (Kronzucker et al., 2013). Com relação ao ajuste 

osmótico, envolvido principalmente na fase osmótica, é um fator crítico para manter 

o turgor da célula visando a manutenção da atividade metabólica pela planta. Desse 

modo, elas podem sintetizar osmólitos compatíveis como prolina, glicina, betaína e 

açúcares solúveis para promover esse equilíbrio osmótico no nível celular (Hannachi 

e Van Labeke., 2013). 

A resposta das plantas contra os efeitos deletérios das ERO ocorre através de 

um sistema de defesa que compreende antioxidantes enzimáticos e não enzimáticos 

(Abbas et al., 2017) capazes de agir contra essas espécies e interromper cascatas 

de oxidação descontrolada nas células tanto sob condições normais, como quando 

estimuladas por eventos de estresse (Czarnocka e Karpinski, 2018). Algumas das 

enzimas antioxidantes presentes nessa linha de defesa enzimática incluem a SOD, 

APX, CAT, GR, GPOX, GSH-PX entre outras peroxidases (Gratão et al., 2015; Alves 

et al., 2018). O ácido ascórbico (AsA), tocoferóis, polifenóis e carotenoides 

compreendem os antioxidantes não enzimáticos (Sharma et al., 2012). 

A SOD é reconhecida como a primeira enzima antioxidante a compor a linha 

de defesa enzimática contra as ERO, atuando na dismutação de ânions superóxido 



8 
 

 

em excesso nas células (Sharma et al., 2012; Gratão et al., 2015). Em 

angiospermas, pode ser caracterizada sob três isoformas encontradas em distintas 

localidades (Yan et al., 2017), sendo nas mitocôndrias e peroxissomos, 

preferencialmente encontrada a manganês SOD (Mn-SOD) (Ueda et al., 2013), nos 

cloroplastos a ferro SOD (Fe-SOD) e a cobre/zinco SOD (Cu/Zn-SOD) predominante 

no citosol, cloroplastos e peroxissomos (Jozefczak et al., 2015).  

Sob condições normais do metabolismo celular, as ERO produzidas no 

cloroplasto são reduzidas a H202 e 02 pela SOD, posteriormente o H202 e seus 

derivados são removidos ou reduzidos por outras enzimas atuantes, como a APX, 

CAT, GR ou GPX (Wang et al., 2016). A APX é uma das principais enzimas atuantes 

nessa remoção do H202.  A CAT, encontrada principalmente nos peroxissomas 

vegetais, também é uma das principais enzimas, juntamente com a APX em remover 

o H202. No entanto, elas diferem na sua forma de remoção, pois a CAT requer um 

substrato redutor (Foyer e Noctor, 2013). 

Além disso, para a desintoxicação do H202, fitofenólicos também podem agir 

como antioxidantes pela doação de elétrons para a GPOX. As peroxidases são 

hemeproteínas que catalisam a oxidação do substrato juntamente à redução do 

H202. O ciclo GPX gera glutationa reduzida (GSH) da glutationa oxidada (GSSG) 

através da GR usando NAD(P)H como agente redutor (Roychoudhury et al., 2015). 

Essas enzimas que compõem esses sistemas antioxidantes nas plantas 

podem responder sendo ativadas em distintos compartimentos subcelulares, 

dependendo de outros quesitos também, como estágio de desenvolvimento do 

vegetal, intensidade do estresse e interação com outras moléculas (Sharma et al., 

2012). Um aumento da atividade desses sistemas pode ser visto como um dos 

mecanismos para tolerância ao estresse. 

 

2.4  Impactos da salinidade e adubação nitrogenada nos sistemas de 

produção agrícolas  

 

 



9 
 

 

O sódio é reconhecido globalmente como o sexto elemento mais abundante, 

sua deposição no solo acarreta solos salinos, ocupando estes cerca de 8% da 

superfície da Terra que estão em constante desenvolvimento (Haijiboland, 2013), 

sendo assim, a salinização um processo natural e contínuo. Porém, tal 

desenvolvimento também está aliado as mudanças climáticas globais e atividades 

antropogênicas, principalmente as práticas de irrigação, considerando-a à uma das 

principais problemáticas limitantes à produção agrícola e afetando cerca de 45 

milhões de hectares de terra irrigada (Tavares Filho et al., 2012; Jayakannam et al., 

2015).  

A problemática das práticas de manejo inadequadas como a irrigação e 

drenagem nos sistemas agrícolas estão relacionados também a preocupante 

escassez de recursos hídricos, sendo 1/3 da área global desses recursos atingidas 

por sais (Payen et al., 2016). No Brasil, os estados de Pernambuco, Ceará e Paraíba 

tem suas áreas cobertas por altas concentrações de sódio nos solos (Tavares Filho 

et al., 2012). 

Com esse cenário progressivo da salinização que poderá comprometer mais 

terras aráveis nos próximos 25 anos, e levando em consideração o crescimento 

exponencial populacional (Melorose et al., 2015), aumentar a produção de alimentos 

por área através de um sistema de produção mais sustentável, torna-se um desafio 

preocupante (Soares et al., 2018). Mundialmente, 52% da alimentação da população 

é dependente de cereais (FAO, 2015).  

Estudos mostram com relação a produtividade nos anos de 2005/2007, os 

volumes de produção terão que sofrer um aumento de 60% para suprir a demanda 

de alimentos para a população até 2050 (Van Ittersum et al., 2013). Regiões áridas e 

semiáridas são preocupantes nesse sentido, pois ocupam 40% da área terrestre e 

são comumente afetadas pelo estresse salino (Abdul Qados, 2011).  

No cultivo de leguminosas alimentares por exemplo, a salinidade pode reduzir 

significativamente o conteúdo de aminoácidos totais, carboidratos, proteínas, 

porcentagem de óleo e polissacarídeos em decorrência da redução da fotossíntese, 

estresse osmótico e desequilíbrio de íons e nutrientes (Farooq et al., 2019). Além 

disso, a sobrevivência na cadeia alimentar de organismos em níveis tróficos 



10 
 

 

superiores, como herbívoros e predadores também são afetados, visto que o 

estresse salino pode alterar a química da planta hospedeira (Awmack and Leather, 

2006). 

Outra problemática comumente vista nos sistemas de produção agrícola é 

com relação a dependência do uso de fertilização nitrogenada. Sua ausência no 

manejo de culturas, principalmente em milho, arroz e trigo implica na redução do 

abastecimento da alimentação para menos da metade da população mundial atual 

(Connor, 2008). No entanto, embora a utilização de fertilização química favoreça o 

desenvolvimento e rendimento de culturas (Sun et al., 2015), seu uso intensivo 

torna-se cada vez mais alarmante, visto que mais de 100 milhões de toneladas de N 

são produzidas industrialmente utilizando-se fontes de energia fósseis, não 

contribuindo em uma abordagem ecológica favorável.  

Alguns autores relatam que além dos impactos negativos como compactação 

do solo e escoamento de nutrientes (Yang et al., 2015) a fertilização intensiva de N 

resultou na diminuição da diversidade bacteriana do solo (Liu e Greaver, 2010; Sun 

et al., 2015; Zeng et al., 2016). Não há um consenso entre os autores com relação a 

isso, alguns mencionam que não afeta diretamente as taxas de bactérias, já outras 

pesquisas (citadas anteriormente) ressaltam tal diminuição. Mais pesquisas são 

necessárias para uma melhor elucidação do tema. 

Segundo Ladha et al (2016), para contornar essa problemática da 

dependência de fertilizantes nitrogenados no cultivo do milho, duas alternativas são 

relevantes, sendo uma delas a aplicação de bactérias diazotróficas para atuarem na 

fixação de N.  

 

2.5 Uso de bactérias diazotróficas: Azospirillum brasilense 

 

 

Os efeitos benéficos dos microrganismos sobre o crescimento das plantas já 

são bem documentados. Dentre esses microrganismos, o gênero Azospirillum 



11 
 

 

(classe Alphaproteobacteria), compreendem as bactérias diazotróficas associadas a 

gramíneas mais bem estudadas atualmente relacionadas a promoção do 

crescimento em plantas (Bashan e de-Bashan, 2010; Hungria, 2011; Cassán et al., 

2014) apresentando capacidade de fixação biológica de N (Fukami et al., 2016).  

A partir dessas descobertas isolando bactérias e identificando mecanismos 

promissores no crescimento de planta, tornou-se viável a inoculação de algumas 

cepas (por exemplo, Ab-V5 e Ab-V6) com viés comercial, intensificando assim as 

pesquisas nesse contexto para fins agrícolas (Cássan et al., 2016). Entre as 

principais espécies do gênero estão Azospirillum brasilense, Azospirillum lipoferum, 

Azospirillum halopraeferens e Azospirillum oryzae, podendo este gênero ser 

associado a mais de 113 espécies vegetais de 35 famílias botânicas (Pereg et al., 

2016). 

Dentre as espécies que compõe o gênero, a Azospirillum brasilense destaca-

se entre as de maior potencial podendo gerar diversos estímulos no crescimento das 

plantas, como no incremento na produção de grãos e gramíneas importantes no 

mercado agrícola sob condições ambientais adversas (MOREIRA et al., 2013). 

Também estão relacionadas a biossíntese e liberação de moléculas orgânicas e 

produção de hormônios vegetais (Pereira et al., 2015; Vejan et al., 2016), 

desenvolvimento acentuado da parte radicular (Kazi et al., 2016) e recentemente, na 

indução de genes associados a defesa da planta na tolerância ao estresse (Fukami 

et al., 2017, 2018).  

Embora o aporte de informações genômicas sobre o gênero esteja crescendo, 

as respostas à inoculação ainda são inconsistentes, não havendo um consenso 

exato de como a Azospirillum interage inicialmente com o sistema radicular nas 

plantas, bem como os mecanismos relacionados nessa associação bactéria-planta 

(Gualpa et al., 2019). Mas, sabe-se que sua colonização e sobrevivência na 

rizosfera exibem estreita relação com a motilidade e quimiotaxia, possibilitando a 

locomoção em direção às raízes, logo, dos exsudados radiculares (fonte de carbono 

e energia).  

Além disso, a Azospirillum possui flagelos polares que facilitam sua 

movimentação em direção ao ambiente mais favorável, desempenhando funções 



12 
 

 

também em vários processos de anexação na comunicação bactéria-planta 

(Steenhoudt e Vanderleyden, 2000). Após colonizado as raízes, podem interferir no 

metabolismo da planta tanto na disponibilidade de nutrientes e fitohôrmonios, 

auxinas (IAA) por exemplo, como na indução de respostas de defesa contra 

fitopatógenos (Glick 2012, Tortora et al., 2012).  

Não há evidências que sugiram malefícios da associação de Azospirillum as 

plantas, sendo assim definida como uma relação de mutualismo das células da 

bactéria ao hospedeiro (Pereg et al., 2016). No entanto, os resultados positivos da 

associação planta-bactéria encontrados na literatura dependem dos fatores bióticos 

e abióticos (HUNGRIA, 2011).  

Além disso, o efeito promotor do crescimento do Azospirillum pode não estar 

apenas relacionado a um único mecanismo, segundo a “Teoria do mecanismo 

Múltiplo” proposta por Bashan e Levanony, essas bactérias podem ter uma 

associação planta-bactéria positiva devido a vários fatores (Bashan e Levanony, 

1990). Dessa forma, existem inúmeras lacunas impostas nessa associação, 

principalmente relacionados as inúmeras combinações entre as cepas bacterianas e 

suas espécies ou genótipos de plantas impostas nessa associação (Pereg et al., 

2016).  

 

 

 

3. MATERIAL E MÉTODOS 

 

 

3.1 Condução do experimento  

 

O experimento foi conduzido em casa de vegetação no Departamento de 

Biologia Aplicado à Agropecuária da Faculdade de Ciências Agrárias e Veterinárias 

da Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho” (FCAV-UNESP). O 



13 
 

 

híbrido comercial de milho (2A401PW) foi adquirido pelo Departamento de Produção 

Vegetal da mesma Universidade (FCAV-UNESP). O experimento realizado foi em 

delineamento inteiramente casualizado, com 4 repetições. Os tratamentos foram 

formados pela combinação de cloreto de sódio (0 e 100 Mm de NaCl) e ausência e 

presença de inoculação de A. brasilense. A inoculação foi realizada inicialmente nas 

sementes e após 15 dias de semeadura foi feita uma segunda inoculação (via solo) 

nos tratamentos que receberam a inoculação da bactéria, onde também se iniciou a 

aplicação do NaCl (100 mM) via água de irrigação.  

A semeadura foi realizada em vasos com capacidade 5 litros, contendo uma 

mistura comercial de substrato (Plantmax HT Eucatex, Brasil) e suplementadas com 

pó de coco de baixa condutividade elétrica (1,1 dS m-1) (Nunes, 2000, Amafibra®). 

Já a inoculação com Azospirillum brasilense foi realizada utilizando-se um produto 

comercial, contendo as cepas AbV5 e AbV6 (QualyFix Gramínea, Brasilquímica). As 

taxas de dosagem foram as recomendadas pelo fabricante e corresponderam a 100 

mL por 25 kg de sementes para inoculação via sementes e 600 mL / ha para 

inoculação via solo. As plantas foram conduzidas até o estágio V5 com irrigação 

diária e uniforme. Ao final do experimento (32 dias) foi determinado o teor de 

clorofila e carotenoides, massa seca e acúmulo de Na+. As plantas de milho (raízes 

e folhas) foram coletadas, imediatamente lavadas, imersas em N2 líquido e 

armazenada a -80ºC para posterior análises de peroxidação lipídica, extração 

enzimática e determinação de proteínas totais e análises de sistemas antioxidantes.  

  

3.2. Análise de massa seca (MS) 

 

Os tecidos vegetais (raíz e parte aérea) foram coletados e armazenados em 

estufa por 72 horas à 70ºC. A medida da massa seca foi realizada utilizando-se uma 

balança analítica com precisão de 0,01 g e os resultados expressos em g planta -1.  

 

3.3. Teor de clorofila e carotenóides  

 



14 
 

 

A quantificação do teor de clorofila e carotenoides foi realizada através da 

mensuração e adição de discos foliares em tubos contendo 80% de acetona na 

ausência de luz e mantidos por 48 horas sob refrigeração. Posteriormente, a 

absorbância das soluções foi lida em espectrofotômetro (Beckman, modelo DU-640) 

nos seguintes comprimentos de onda: 663 nm (clorofila a), 647 (clorofila b) e 470 nm 

[carotenoides: caroteno (c) + xantofila (x)]. Os conteúdos de clorofila (chl) e 

carotenoides (car) foram calculados como descrito por Lichtenthaler (1987): Chl = 

12,25 x A663-2,79 x A647; Cl b = 21,50 x A647-5,10 x A663; Chl total a + b = 7,15 x 

A663 + 18,71 X A647; Carro c + x = (1000 A470 - 1,82 Chla - 85,02 Chlb) / 198. A 

concentração de pigmento foi expressa em microgramas de pigmento por grama de 

peso fresco de tecido (ug g-1 massa fresca).  

  

3.4. Determinação do conteúdo de Na+  

 

Para a determinação do teor de sódio do material vegetal (raiz, folha), foi 

realizada a digestão com uma mistura de ácidos nítrico e perclórico (Carmo et al., 

2000). As concentrações de Na+ foram determinadas pelo método de 

espectrofotometria de emissão de chama utilizando um fotômetro de chama 

(Micronal - B462). As concentrações de Na+ são expressas em mg kg-1 de massa 

seca.  

 

 

  

3.5. Determinação do acúmulo de N  

 

A partir da massa seca dos tecidos vegetais, a moagem foi realizada e 

amostras foram obtidas para a determinação do acúmulo de N conforme método 

descrito por Miyazawa et al (1992).  

 



15 
 

 

3.6. Análise bioquímica  

 

3.6.1. Peroxidação lipídica (MDA)  

 

A peroxidação lipídica foi estimada pelo conteúdo de substâncias reativas ao 

ácido tiobarbitúrico (TBARS). A concentração de equivalentes de malondialdeído 

(MDA) foi calculada usando um coeficiente de extinção de 1,55 x 10-5 mol-1 cm-1, 

com leituras entre 535 e 600 nm (Gratão et al. 2012). Os resultados são expressos 

em umol / mg-1 de massa fresca.  

  

3.6.2. Extração de proteínas e determinação enzimática  

 

Os tecidos vegetais coletados foram macerados em almofariz com nitrogênio 

líquido e homogeneizados com tampão fosfato de potássio 100 mM (ph 7,5), 

contendo 1 mM de ácido etilenodiaminotetracético (EDTA), 3 mM de DL-ditiotreitol e 

4% de polivinilpolipirrolidona insolúvel. O homogeneizado foi centrifugado a 10.000 

rpm por 30 minutos a 4ºC e o sobrenadante a -80ºC para uso nos ensaios 

enzimáticos (Azevedo et al., 1998). A quantificação de proteínas foi determinada 

pelo método de Bradford (1976), utilizando albumina de soro bovino como padrão.  

  

3.6.3. Superóxido Dismutase (SOD, EC 1.15.1.1)  

 

A determinação da atividade da enzima SOD (μmol min-1 mg-1 proteína) 

seguiu o protocolo desenvolvido por Giannopolitis e Ries (1977). O meio de ensaio 

foi composto por tampão fosfato de potássio (pH 7,8), 50 mM de metionina, 10 mM 

de EDTA, 1 mM de cloreto de nitrotetrazólio azul (NBT), 0,1 mM de riboflavina e por 

último o extrato vegetal. A solução foi colocada para reagir sob uma lâmpada 

fluorescente a 25ºC por 5 minutos. A reação resultou na formação do composto de 

formazana azul e a absorbância foi lida no comprimento de onda de 560 nm.   

  



16 
 

 

3.6.4. Glutationa Redutase (GR, EC 1.8.1.7)  

 

A atividade de GR (μmol min -1 mg-1 proteína) foi determinada a partir de uma 

mistura de tampão fosfato 100 nM (pH 7,5) e 500 ul de DTNB em banho-maria a 

30°C. Antes da leitura, GSH oxidado (1 mM), NADPH (0,1 mM) e o extrato (50 ul) 

foram adicionados (Cakmak e Horst, 1991). A absorbância foi lida no comprimento 

de onda de 412 nm.  

  

3.6.5. Glutationa Peroxidase (GSH-PX, EC 1.11.1.9)  

 

A atividade de GPX (μmol min-1 mg-1 proteína) foi determinada em meio de 

reação com tampão fosfato de potássio (100 mM), EDTA (3 mM), 0,24 U GR / mL, 

GSH (10 mM) e azida sódica (1 mM). A mistura foi incubada a 37°C por 15 minutos 

e a reação foi catalisada pela adição de 1,5 mM de NADPH e 1,5 mM de H202. A 

oxidação foi monitorada durante 5 minutos a 340 mM. A atividade enzimática foi 

calculada utilizando o coeficiente de extinção molar de 6,22 mM cm-1 (Anderson e 

Davis, 2004).  

  

 

3.6.6. Guaiacol Peroxidase (GPOX, EC, 1.11.1.7)  

 

A atividade de GPOX foi determinada numa mistura contendo tampão fosfato-

citrato pH 5,0 (fosfato de sódio dibásico 0,2 M: ácido cítrico 0,1 M), 0,5% de guaiacol 

e o extrato. Posteriormente a solução foi agitada em vortex com a adição de H202 e 

incubados a 30°C durante 15 minutos. A reação foi interrompida por transferência 

imediata para um banho de água gelada, seguida pela adição de 2% de solução de 

metabissulfito de sódio (Monteiro et al. 2011). A atividade foi avaliada monitorizando 

a absorbância no comprimento de onda de 450 nm.  

 



17 
 

 

3.7. Análise estatística 

 

Todos os ensaios realizados no presente trabalho foram analisados por meio 

do teste de Tukey (p<0,05) no programa AGROESTAT (Barbosa e Júnior, 2010). 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

4. RESULTADOS 

 

 

4.1. Clorofila total e Carotenóides  

 

Com relação aos dados observados, ocorreu aumento no teor dos pigmentos 

nas plantas expostas ao sal independente da presença de Azospirillum brasilense, 

quando comparado aos demais tratamentos (Figura 1). Exceto para carotenóides em 

que o tratamento NaCl + A. brasilense não apresenta diferença estatística quando 

comparado ao controle (Figura 1. B). 



18 
 

 

No entanto, para ambos os pigmentos, na presença de Azospirillum 

brasilense o teor é menor quando comparado as plantas estressadas não-

inoculadas (NaCl). Houve decréscimo no teor dos pigmentos apenas quando as 

plantas estão inoculadas na ausência de NaCl (Controle + A. brasilense) (Figura 1.) 

 

Figura 1. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre o 
teor de Clorofila Total (A) e Carotenóides (B). Médias seguidas pela mesma letra 
não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias 
de quatro repetições ( n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 

4.2. Peroxidação Lipídica – malondialdeído (MDA)  

 

A peroxidação lipídica, expressa como teor de MDA é um indicativo de dano 

na membrana. Com relação aos dados obtidos no sistema radicular (Figura 2. A), o 



19 
 

 

maior teor foi observado no tratamento exposto a salinidade sem inoculação, 

comparado aos ademais tratamentos. Com relação a inoculação de Azospirillum 

brasilense na ausência (Controle + A. brasilense) e presença de sal (NaCl + A. 

brasilense), entre si não apresentaram diferença estatística. No entanto, quando 

comparados ao tratamento na condição salina (NaCl) exibiram diminuição nos teores 

de MDA.  

Nas folhas (Figura 2. B), o teor de MDA também foi maior na condição salina 

(NaCl). No entanto, nas plantas inoculadas sob mesma condição esse teor é 

significativamente diminuído (NaCl + A. brasilense), sendo este teor menor que os 

demais tratamentos. Com relação a inoculação na ausência de salinidade (Controle 

+ A. brasilense), não houve diferença estatística quando comparadas as plantas 

controle.  



20 
 

 

 

Figura 2. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre o 
conteúdo de MDA nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra 
não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias 
de quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 

 

4.3. Enzimas Antioxidantes 

 

4.3.1. Superóxido dismutase (SOD, EC 1.15.1.1) 

 



21 
 

 

Os dados referentes a SOD nas raízes (Figura 3. A), evidenciam que a 

inoculação de Azospirillum brasilense sob condição de estresse salino (NaCl + A. 

brasilense) exibiu um decréscimo significativo quando comparado aos demais 

tratamentos. No entanto, a presença da bactéria na ausência do estressor (Controle 

+ A. brasilense) exibiu a maior atividade enzimática comparada aos ademais 

tratamentos.  

Com relação as folhas, os tratamentos se diferenciaram entre si, sendo 

observado o maior aumento da atividade de SOD no tratamento exposto ao sal e 

sem inoculação, seguido pelo tratamento não exposto ao sal e inoculado (Controle + 

A. brasilense). A menor atividade da enzima foi vista no tratamento em que havia 

NaCl e Azospirillum brasilense em conjunto (Figura 3. B). 



22 
 

 

 

Figura 3. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre a 
atividade da enzima SOD nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma 
letra não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam 
médias de quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 

4.3.2. Glutationa redutase (GR, EC 1.8.1.7) 

 

Os dados obtidos de GR na raíz (Figura 4. A) mostram que o aumento da 

atividade da enzima ocorreu apenas no tratamento em que as plantas foram 

expostas a salinidade e sem a inoculação de Azospirillum brasilense. Os demais 



23 
 

 

tratamentos não apresentaram diferença estatística. Nas folhas (Figura 4. B), os 

tratamentos diferiram entre si, sendo a maior atividade de GR observada no 

tratamento em que foi exposto ao NaCl e sem inoculação da bactéria, seguido pelo 

tratamento exposto ao NaCl e inoculado.  

 

Figura 4. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre a 
atividade da enzima GR nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma 
letra não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam 
médias de quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 



24 
 

 

4.3.3. Glutationa peroxidase (GSH-PX, EC 1.11.1.9) 

 

Com relação os dados antioxidantes observados no sistema radicular (Figura 

5. A), a presença de Azospirillum brasilense propiciou as maiores atividades de 

GSH-PX independente do NaCl quando comparado aos demais tratamentos. 

Curiosamente, a inoculação de A. brasilense nas plantas expostas na presença e 

ausência de NaCl não diferem entre si estatisticamente.  

Nas folhas (Figura 5. B), o maior aumento da atividade de GSH-PX ocorreu 

nas plantas inoculadas sob condição de NaCl quando comparadas as plantas 

controle. Com relação aos demais tratamentos, não houve diferença estatística entre 

inoculação e NaCl quando comparados.  



25 
 

 

 

Figura 5. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre a 
atividade da enzima GSH-PX nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela 
mesma letra não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores 
representam médias de quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro 
padrão (±EP). 

 

4.3.4. Guaiacol Peroxidase (GPOX, EC 1.11.1.7) 

 

Os dados obtidos de GPOX foram consistentes e similares em ambos os 

tecidos avaliados (Figura 6. AB), ocorrendo aumento da atividade de GPOX sob 



26 
 

 

NaCl independente da inoculação, quando comparados ao tratamento controle. No 

entanto, houve aumento significativo da atividade enzimática quando as plantas 

estavam inoculadas com Azospirillum brasilense e expostas a salinidade em 

comparação as plantas não inoculadas nessa mesma condição e aos demais 

tratamentos.  

 

Figura 6. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre a 
atividade da enzima GPOX nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma 
letra não diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam 
médias de quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 



27 
 

 

4.4.  Determinação de Na+  

 

Com relação ao acúmulo de Na+ nas raízes (Figura 7. A), os maiores valores 

foram observados nos tratamentos expostos a salinidade independente da 

inoculação de Azospirillum brasilense comparado aos demais tratamentos. No 

entanto, quando comparado a essa condição (100 mM NaCl), o maior acúmulo foi 

observado na presença da bactéria (NaCl + A. brasilense). Já na ausência de 

salinidade, não houve diferença estatística do tratamento inoculado (Controle + A. 

brasilense) comparado ao controle.  

Nas folhas (Figura 7. B), o maior acúmulo de Na+ foi observado nas plantas 

não inoculadas expostas a salinidade, seguidas pelas plantas inoculadas nessa 

mesma condição (100 mM NaCl), quando comparado ao tratamento controle. No 

entanto, quando comparado as plantas sob salinidade, ocorreu decréscimo do 

conteúdo de Na+ nesse tratamento (NaCl+ A. brasilense). Com relação aos 

tratamentos sem salinidade, não houve diferença estatística entre eles.  



28 
 

 

 

Figura 7. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre o 
acúmulo de Na+ nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não 
diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de 
quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 

4.5. Quantificação do acúmulo de N  

 

Os dados obtidos do acúmulo de N no sistema radicular (Figura 8. A) 

evidenciaram o maior acúmulo no tratamento inoculado com Azospirillum brasilense 

na presença do estressor (NaCl + A. brasilense) e o menor acúmulo no tratamento 



29 
 

 

não inoculado na presença do estressor, comparados ao controle. Embora os 

tratamentos sem NaCl não apresentem diferença estatística entre si, é interessante 

notar que até na presença do NaCl o acúmulo de N foi significativamente maior do 

que quando comparado ao tratamento apenas inoculado.  

Nas folhas (Figura 8. B) o maior acúmulo de N também fora nos tratamentos 

inoculados com Azospirillum brasilense, comparado ao tratamento com NaCl e sem 

inoculação. 

 

Figura 8. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre o 
acúmulo de N nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não 



30 
 

 

diferem entre si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de 
quatro repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 

4.6.  MS dos tecidos vegetais  

 

Os dados de MS obtidos nesse trabalho nas raízes (Figura 9. A) e parte aérea 

(Figura 9. B) corroboram com o que é descrito na literatura, em que 100 mM de NaCl 

é suficiente para ocasionar o estresse nas plantas, acarretando a redução da MS, 

independente da inoculação. No sistema radicular, embora os tratamentos 

inoculados não apresentem maior MS que as plantas controle, houve um maior 

aumento de MS no tratamento inoculado na presença do sal (NaCl + A. brasilense) 

quando comparado ao tratamento nessa mesma condição (100 mM NaCl) sem a 

presença da bactéria, nesse mesmo contexto, não houve diferença estatística com 

relação a parte aérea. 



31 
 

 

  

Figura 9. Efeito da inoculação de Azospirillum brasilense e estresse salino sobre a 
MS nas raízes (A) e folhas (B). Médias seguidas pela mesma letra não diferem entre 
si pelo teste de Tukey (P<0,05). Os valores representam médias de quatro 
repetições (n= 4); barras verticais indicam o erro padrão (±EP). 

 

 

 

 

 



32 
 

 

5. DISCUSSÃO 

 

 

Dentre os efeitos diversos ocasionados pela salinidade nas plantas, a 

fotossíntese e sua relação com os pigmentos fotossintéticos, como clorofila total e 

carotenóides são diretamente afetados, podendo haver decréscimo no conteúdo, 

refletindo por sua vez no crescimento vegetal (Gomes et al., 2017). Neste trabalho, 

os resultados foram opostos, mostrando que sob 100 mM de NaCl, tanto as plantas 

não-inoculadas quanto as inoculadas com Azospirillum brasilense tiveram um 

considerável aumento no conteúdo desses pigmentos quando comparados ao 

controle (0 mM de NaCl).  

Embora esteja bem documentado que o estresse salino ocasiona à redução 

do conteúdo de clorofila em diversas culturas, e que esse decréscimo é considerado 

um importante marcador bioquímico para a tolerância ao sal, alguns estudos 

também sugerem que necessariamente nem sempre esse acúmulo está associado à 

tolerância salina, dependendo de outros parâmetros envolvidos, como a diversidade 

de cultivares e/ou espécies vegetais estudadas bem como a amplitude dessa 

redução (Ashraf e Harris, 2013). 

Os carotenóides são fundamentais no processo de fotoproteção fotossintética, 

atuando como poderosos antioxidantes. Os dados de carotenóides neste estudo se 

assemelham aos de clorofila, em que o maior aumento do teor ocorreu sob condição 

de 100 mM de NaCl em plantas não inoculadas (Fig 1-B). Esse aumento pode ser 

atribuído ao papel dos carotenóides como precursores na sinalização em condições 

estressantes, como o estresse salino (Ashraf e Harris, 2013). Neste trabalho, esse 

aumento é verificado em todos os tratamentos expostos a salinidade, sendo assim, o 

fator sal um interferente no aumento de carotenoides em ambas as situações 

(inoculado e não inoculado). 

Mas, nas plantas inoculadas sob essa condição (100 mM NaCl), o teor se 

manteve quando comparado ao tratamento controle. Provavelmente isso possa estar 

relacionado a capacidade das bactérias em sintetizar e secretar diversas 



33 
 

 

substâncias úteis para conferir a tolerância salina em diversas culturas. Visto que as 

bactérias são capazes de aumentar seu pool intracelular de solutos acumulando 

grandes quantidades de osmólitos orgânicos. No milho, o ácido indolacético (AIA) é 

uma das substâncias que podem ser secretadas pelas bactérias e com isso, atenuar 

os efeitos do estresse, regulando os processos fisiológicos das células vegetais, 

como a fotossíntese (Radhakrishnan e Baek, 2017).  

Inevitavelmente, em condições normais, as plantas sintetizam um diminuto 

nível de metabólitos de oxigênio advindos de processos essenciais no metabolismo 

celular que são potencialmente tóxicos, mantendo o equilíbrio entre a produção e a 

eliminação de ERO (Sharma et al., 2012; Das e Roychoudhury, 2014). No entanto, 

por serem organismos sésseis e estarem expostas a diversos fatores externos, 

como perante a salinidade dos solos, consequentemente, as plantas sofrem um 

desequilíbrio entre a produção e eliminação dessas ERO, acumulando-o nas células 

vegetais. Esse excesso é capaz de danificar os lipídios da membrana, destruindo 

sua integridade (Halo et al., 2015; Liang et al., 2018).   

Como principal produto dessa peroxidação lipídica, tem-se o MDA, na qual 

seu conteúdo reflete o grau de dano na membrana celular. Nessa situação, a 

concentração de sal utilizada (100 mM) foi suficiente para ocasionar a peroxidação 

lipídica, uma vez que tanto nas raízes quanto nas folhas o MDA aumentou nessa 

condição quando comparado as plantas cultivadas na ausência de NaCl. A 

salinidade é um dos principais estresses responsáveis pelas mudanças na atividade 

metabólica das plantas (Singh et al, 2013), ocasionando acúmulo de MDA em 

plantas estressadas (Singh et al., 2013).  

Em contrapartida, os níveis de MDA foram reduzidos significativamente em 

ambos os tecidos com a inoculação de Azospirollum brasilense nessa mesma 

condição (100 mM NaCl). Desse modo, a inoculação de A. brasilense pode ter 

induzido a tolerância ao sal no milho, suprimindo o acúmulo de MDA nas plantas 

para recuperá-las dos efeitos tóxicos ocasionados pelo Na+, consequentemente 

reduzindo a peroxidação lipídica (Wu et al., 2014).   

Além do mais, isso nos sugere que essa associação positiva (estresse 

salino/bactéria) em reduzir os danos na membrana perante o estresse, 



34 
 

 

possivelmente esteja correlacionado de alguma forma com os sistemas 

antioxidantes de defesa. Um aumento da atividade desses sistemas pode ser visto 

como um dos mecanismos para tolerância Bianco e Defez (2009) relataram essa 

correlação como um indicativo da mitigação do estresse salino, visto que na 

inoculação bacteriana em solos salinos foi evidenciado uma maior atividade de 

enzimas atuantes na eliminação de ERO.  

Estudos recentes também expuseram que a promoção do crescimento que 

Azospirillum brasilense (cepas Ab-V5 e Ab-V6) confere ao milho possa estar conexo 

à indução de genes de defesa de plantas, proporcionando tolerância a estresses 

abióticos (Fukami et al., 2017, 2018a). Buscando elucidar as respostas envolvidas 

nessa associação correlativa positiva de A. brasilense no milho sob condições de 

estresse, quatro sistemas antioxidantes (SOD, GR, GSH-PX, GPOX) foram 

avaliados nesse trabalho. 

 Embora a SOD seja uma das primeiras enzimas a compor a linha de defesa, 

atuando na remoção do radical superóxido (Sharma et al., 2012; Gratão et al., 2015), 

sua atividade foi reduzida na presença da bactéria quando submetida a condição de 

estresse em ambos os tecidos vegetais. Já na ausência do estressor, a inoculação 

propiciou as maiores atividades da enzima. Neste caso, a associação não foi 

suficiente para reverter o efeito deletério do estresse sob o sistema antioxidante. 

Provavelmente não estando totalmente relacionada a atenuação do desequilíbrio 

ocasionado pelas ERO nessa associação (bactéria/estresse). No trabalho de Fukami 

et al (2018), também não foram vistas atividades de SOD relacionada à inoculação 

no sistema radicular.  

A GR também apresentou dados similares a SOD com relação a diminuição 

da atividade enzimática na presença da bactéria. Embora não haja diferença 

estatisticamente é possível notar a partir do gráfico de raíz que as plantas 

inoculadas na presença do estressor exibiram uma diminuta atividade em relação ao 

tratamento controle. Nas folhas esse mesmo dado é ainda mais evidenciado, 

havendo diferença estatística. Ou seja, o ciclo ascorbato (AsA)/glutationa (GSH) 

pode estar envolvido nessa remoção de ERO, podendo haver outras enzimas nesse 

ciclo atuantes (Alves et al., 2018).  



35 
 

 

Além disso, essa maior atividade enzimática nas folhas do que nas raízes 

pode estar relacionado a um mecanismo de tolerar ao sal através do 

redirecionamento do Na+ da parte aérea para as raízes (Xu et al., 2018). Alguns 

trabalhos mostraram que o aumento da tolerância ao sal está correlacionado com a 

redução do acúmulo de Na+ nas folhas (Zhang e Shi, 2013; Xiong et al; 2018). 

A atividade de GSH-PX foi essencial para validar o que havíamos 

mencionado anteriormente, que as respostas das alterações enzimáticas dessa 

associação (bactéria/estresse), teriam alguma relação com o ciclo ascorbato 

(AsA)/glutationa (GSH). Ambos são considerados principais antioxidantes solúveis, 

na qual atuam no manejo de ERO interagindo entre si pelo ciclo AsA-GSH. Em 

condições normais, as plantas mantêm a proporção de GSH e glutationa reduzida 

(GSSG), reduzindo o GSH. Com a presença de GR, o GSSG reduz ainda mais a 

GSH reduzida à custa das moléculas de NADPH (Szarka et al., 2012). Já a GSH-PX 

também está relacionada a papéis importantes nas plantas, como cascatas salinas, 

sinalização de ABA e homeostase redox (Zhai et al., 2013). Isso nos mostra que o 

aumento da atividade de GSH-PX (Fig. 5) com a inoculação de Azospirillum 

brasilense pode ter reduzido as cascatas salinas, minimizando o dano oxidativo 

perante o estresse salino.   

Assim, como a GSH-PX, GPOX também foi uma enzima antioxidante 

altamente responsiva, visto que, os tratamentos inoculados na condição salina 

exibiram as mais altas atividades enzimáticas, diante de todos os outros 

tratamentos. Supostamente, a atividade pode ser justificada pela GPOX estar 

envolvida na eliminação efetiva do H2O2, bem como no crescimento de plantas 

(Sharma et al., 2012), dessa forma, podendo Azospirillum brasilense ter 

impulsionado essa eliminação.  

Uma vez sob elevados níveis de salinidade, outros mecanismos de resposta 

além dos sistemas antioxidantes podem ser ativados. Dependendo do teor de Na+ 

que é acumulado e absorvido pelas raízes, são ocasionados uma série de danos e 

mudanças fisiológicas, bioquímicas e metabólicas nas plantas expostas a essa 

condição. Conforme ocorre o aumento de sal o potencial osmótico é reduzido, 

motivando de forma imediata o efluxo de água da célula, influenciando no acúmulo 



36 
 

 

de íons e consequentemente no crescimento vegetal (Hannachi e Van Labeke, 

2018).  

Corroborando com a literatura, houve aumento no acúmulo de Na+ nas 

plantas expostas a salinidade. No entanto, os tecidos analisados tiveram respostas 

inversas com a inoculação sob NaCl, havendo aumento nas raízes e decréscimo do 

conteúdo na parte aérea. Como já mencionado anteriormente, as plantas podem 

exibir distintos mecanismos para tolerância ao sal. Em várias espécies, dentre elas o 

milho, o redirecionamento do Na+ nos tecidos vegetais via floema tem sido descrito 

como um dos mecanismos eficientes na proteção das células foliares contra a 

toxidez salina (Xiong et al., 2018; Xu et al., 2018). Esse mecanismo de ação é 

mediado pelo transportador de potássio de alta afinidade (AtHKT1) que recircula 

através do floema, o Na+ absorvido da parte aérea (maior concentração salina) para 

as raízes (baixo teor salino) (Xiong et al., 2018).   

De fato, pode haver outros mecanismos em resposta à essa interação 

(bactéria/estresse), visto que as espécies e/ou cultivares de plantas podem exibir 

distintos mecanismos para a tolerância ao sal, e esses mecanismos não 

necessariamente são específicos e únicos em uma determinada planta. Assim como 

as estratégias podem atuar de forma concomitante e/ou também serem ativadas e 

eficazes em circunstâncias específicas (Roy et al., 2014).   

Nesse sentido, dentre outros mecanismos, as plantas também podem eliminar 

essas cargas de Na+ das células da raíz (Xiong et al., 2018). Dessa maneira, as 

distintas cepas de Azospirillum brasilense podem apresentar diferentes mecanismos 

osmorregulatórios para lidar e sobreviver perante a concentração de íons salinos no 

solo. Com isso, podem ter sido capazes de absorver os osmólitos exsudados pelas 

raízes, podendo também sintetizar outros solutos compatíveis, como prolina, 

giberelina, açúcar, auxiliando também na mobilização de nutrientes do solo, 

consequentemente favorecendo a disponibilidade destes para o crescimento das 

plantas (Upadhyay e Singh, 2015; Radhakrishnan e Baek, 2017). 

Uma vez que a disponibilidade de nutrientes nos solos é afetada pela 

deposição de sal, refletem instantaneamente no crescimento e desenvolvimento do 

vegetal. Corroborando com trabalhos anteriores e recentes, a inoculação de A. 



37 
 

 

brasilense auxiliou no acúmulo de N nas plantas, principalmente na condição 

estressora (Hungria et al., 2011; Fukami et al., 2016, 2018; Pii et al., 2019).  

Embora os resultados das plantas inoculadas não tenham apresentado 

incremento de MS (Fig. 9) foi notável que a inoculação com as cepas AbV5-AbV6 via 

semente e via solo auxiliou no crescimento e desenvolvimento das plantas na 

condição estressora, uma vez que os dados nos mostram um maior aumento de MS 

dessas plantas (NaCl + A. brasilense) quando comparadas as plantas estressadas 

não-inoculadas, principalmente no sistema radicular. Isso é reflexo da melhor 

arquitetura radicular que Azospirillum brasilense promove, favorecendo no aumento 

do número de raízes laterais e pelos radiculares, consequentemente aumentando a 

superfície de raíz disponível, favorecendo uma melhor absorção de nutrientes e 

estado de água para a planta e possibilitando sua adaptação na condição salina 

(Hungria et al., 2011; Pii et al., 2019). 

Vale ressaltar também que a resposta do genótipo utilizado, inoculação e 

estágio vegetativo do milho é heterogênea de acordo com as diversas formas de 

aplicação de inoculantes utilizada. Resultados obtidos em experimento com 

variedades de milho apresentaram diferença significativa quando se utilizou 

inoculação via solo quando as plantas atingiam estágio vegetativo V3 à V5 (Revolti, 

2018).  

Mediante o exposto, os resultados evidenciam uma correlação dessa 

associação (estresse/bactéria) em conferir a tolerância salina. Bem como, o efeito 

benéfico da inoculação de Azospirillum brasilense no milho sob estresse. Estes 

estudos reforçam a importância de se combater as restrições do desenvolvimento de 

cultivares sob condições limitantes de crescimento através do uso da microbiota 

vegetal e na busca de genótipos mais tolerantes (Zeffa et al., 2019).  

  

 

 



38 
 

 

6. CONCLUSÃO 

 

 

A presença de Azospirillum brasilense no milho sob estresse salino pode 

conferir tolerância as plantas sob salinidade, uma vez que proporcionou a redução 

dos danos oxidativos (peroxidação lipídica) e aumentou as respostas antioxidantes 

de GSH-PX e GPOX, além de maior incremento de massa seca sob condição 

estressora no sistema radicular e uma maior fixação de nitrogênio.  

  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



39 
 

 

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