RESSALVA 

Atendendo solicitação da 
autora, o texto completo desta 

Dissertação será 
disponibilizado somente a 

partir de 10/06/2027. 



 

 

UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA 
FACULDADE DE MEDICINA VETERINÁRIA E ZOOTECNIA 

 

 

 

 
 

COMPARAÇÃO ENTRE ENXERTO CUTÂNEO DE 
ESPESSURA TOTAL E MEMBRANA DE L-TRF NO 

TRATAMENTO DE FERIDAS INDUZIDAS NO 
TARSOMETATARSO DE GALINHAS 

 
 

 

 
 
 
 
 

 
VIVIAN FERREIRA RECH 

 
 
 
 

Botucatu – SP 
2025 



 

 

UNIVERSIDADE ESTADUAL PAULISTA 
FACULDADE DE MEDICINA VETERINÁRIA E ZOOTECNIA 

 
 

 
 
 
 

COMPARAÇÃO ENTRE ENXERTO CUTÂNEO DE 
ESPESSURA TOTAL E MEMBRANA DE L-TRF NO 

TRATAMENTO DE FERIDAS INDUZIDAS NO 
TARSOMETARTARSO DE GALINHAS 

 
 

 

 
 
 

VIVIAN FERREIRA RECH 

 

 

Dissertação apresentada junto ao Programa de 

Pós-Graduação em Animais Selvagens para a 

obtenção do título de Mestre 

 

Orientadora: Prof.ª Titular Sheila Canevese Rahal 

Coorientadora: Prof.ª Dr.ª Renata Dalcol Mazaro 

 



R296c
Rech, Vivian Ferreira
    Comparação entre enxerto cutâneo de espessura total e membrana
de L-TRF no tratamento de feridas induzidas no tarsometatarso de
galinhas / Vivian Ferreira Rech. -- Botucatu, 2025
    66 p. : il., tabs., fotos

    Dissertação (mestrado) - Universidade Estadual Paulista (UNESP),
Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Botucatu
    Orientadora: Sheila Canevese Rahal
    Coorientadora: Renata Dalcol Mazaro

    1. ave. 2. exposição óssea. 3. defeito cutâneo. 4. autólogo. 5.
fibrina. I. Título.

Sistema de geração automática de fichas catalográficas da Unesp. Dados fornecidos pelo autor(a).



 

 

Nome do autor: Vivian Ferreira Rech 

 
 

TÍTULO: COMPARAÇÃO ENTRE ENXERTO CUTÂNEO DE ESPESSURA 
TOTAL E MEMBRANA DE L-TRF NO TRATAMENTO DE FERIDAS 
INDUZIDAS NO TARSOMETARTARSO DE GALINHAS 

 
 

 

 

 

 

COMISSÃO EXAMINADORA 

 

Profa. Titular Sheila Canevese Rahal  

Presidente da banca e orientadora 

Departamento de Cirurgia Veterinária e Reprodução Animal 

FMVZ – UNESP – Botucatu 

 

Dr. Ramiro das Neves Dias Neto 

Membro externo 

ICA – Instituto de Ciências Agrárias 

UFVJM – Unaí 

 

Dr. Elton Luis Ritir Oliveira 

Membro externo 

Departamento de Animais Selvagens 

Faculdade Gennari & Peartree – Pederneiras 

 

 

 

 



iii 

 

 
Agradecimentos 

 
O presente trabalho foi realizado com o apoio da Coordenação de 

Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior – Brasil (CAPES) – Código de 

Financiamento 001.  

À FINEP (Financiadora de Estudos e Projetos), convênio número 

01.12.0530.00. 

Ao apoio do Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e 

Tecnológico (CNPq) pela concessão de bolsa de estudo de mestrado, nº de 

processo 130985/2023-6. 

Agradeço a minha orientadora Sheila Canevese Rahal por ter me 

aceitado, acolhido e guiado nessa jornada. Sua dedicação à pesquisa foi 

indispensável e seu comprometimento comigo extremamente louvável;  

À professora Ibiara Correia de Lima Almeida Paz que disponibilizou 

as aves da fazenda universitária da UNESP; 

À professora Renata Dalcol Mazaro pelo processamento 

histológico e apoio ao projeto; 

Aos meus pais, que, mesmo há muitos quilômetros de distância e 

em áreas de pesquisa completamente distintas, contribuíram muito para essa 

pesquisa; 

À irmã que encontrei perdida em Botucatu. Sem você, eu nada 

seria nessa cidade, Luna Scarpari Rolim (e de quebra virei a tia Vivi); 

Ao meu conterrâneo bem bagual e quase parente, Guilherme Rech 

Cassanego. Com tua ajuda, esse projeto fluiu com muita lida; 

À República Erva Doce por ter sido meu lar durante esse projeto e 

por ter proporcionado uma vida universitária unespiana cheia de boas memórias; 

À Olivinha, minha cusquinha parceira que me acompanha em todas 

minhas aventuras e conquistas; 

À toda equipe do CEMPAS pelo apoio com o experimento e 

cuidado com os animais. 

 



iv 

 

Sumário 
      

 LISTA DE FIGURAS............................................................................................... v 

 LISTA DE TABELAS............................................................................................... vii 

 Resumo............................................................................................................... viii 

 Abstract............................................................................................................... ix 

 CAPÍTULO 1......................................................................................................... 10 

1  INTRODUÇÃO E JUSTIFICATIVA...................................................................... 11 

2  REVISÃO DA LITERATURA................................................................................. 14 

 2.1 Galinhas-domésticas................................................................................ 15 

 2.2 Sistema tegumentar das aves.................................................................. 15 

 2.3 Processo de cicatrização em aves.......................................................... 16 

 2.4 Concentrados plaquetários....................................................................... 19 

 2.5 Fibrina Rica em Plaquetas (PRF)............................................................. 21 

 2.6 Fibrina Rica em Plaquetas e Leucócitos (L-PRF) .................................... 22 

 2.7 Aplicações na medicina veterinária......................................................... 23 

 2.8 Enxertos cutâneos................................................................................... 25 

  3 REFERÊNCIAS................................................................................................... 28 

 CAPÍTULO 2........................................................................................................ 36 

 Artigo científico................................................................................................... 37 

 ANEXO................................................................................................................ 66 

 
 



v 

 

Lista de Figuras 
  

Figura 1. Produção da membrana de fibrina rica em Leucócitos e Trombócitos 
(L-TRF) com sangue de galinhas. a) Sangue após centrifugação no tubo seco, 
no qual se verifica a divisão em camadas. b) Coágulo de fibrina aderido a 
porção de glóbulos vermelhos. c) Coágulo de fibrina após separação dos 
glóbulos vermelhos............................................................................................. 41 
  
Figura 2. a) Defeito cutâneo realizado no tarsometatarso de galinha, com 
exposição óssea. b) Aplicação de membrana de L-TRF aplicada no leito da 
ferida. c) Primeira camada do curativo com atadura de Rayon®. d) Segunda 
camada do curativo com bandagem elástica...................................................... 

 
42 

  
Figura 3. Processo de preparação do enxerto cutâneo. a) retirada do tecido 
subcutâneo com auxílio de lâmina de bisturi (no. 24). b) Produção de fendas no 
enxerto. c) Esquema das fendas realizadas no enxerto cutâneo paralelas ao 
comprimento........................................................................................................ 43 
  
Figura 4. Aspecto macroscópico do defeito cutâneo induzido no tarsometatarso 
de galinha, tratado com membrana de L-TRF aos sete dias de pós-operatório. 
a) Aspecto da ferida com a membrana de L-TRF. b) Ferida após a remoção da 
membrana de L-TRF. c) Aplicação de nova membrana de L-
TRF...................................................................................................................... 44 
  
Figura 5. Aspecto evolutivo do defeito cutâneo induzido no tarsometatarso de 
galinha do Grupo controle (G1), nos dias zero (a), sete (b), 14 (c), 21 (d) e 28 
(e) dias de pós-operatório.................................................................................... 49 
  
Figura 6. Aspecto evolutivo do defeito cutâneo induzido no tarsometatarso de 
galinhas tratado com membrana de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-
TRF) (G2), nos dias zero (a), sete (b), 14 (c), 21 (d) e 28 (e) dias de pós-
operatório............................................................................................................ 49 
  
Figura 7. Aspecto evolutivo do defeito cutâneo induzido no tarsometatarso de 
galinha tratado com enxerto cutâneo autólogo de espessura total (G3), nos dias 
zero (a), sete (b), 14 (c), 21 (d) e 28 (e) dias de pós-operatório............................ 50 
  
Figura 8. Feridas cutâneas do tarsometatarso de diferentes galinhas (a, b, c) 
do Grupo controle (G1) no dia 28 de pós-operatório. Observe em todas a 
presença da exposição óssea.............................................................................. 50 
  
Figura 9. Presença de exposição óssea nas feridas induzidas no 
tarsometatarso de galinhas nos Grupos controle (G1), membrana de fibrina rica 
em trombócitos e leucócitos (L-TRF) (G2) e enxerto cutâneo autólogo (G3) aos 
sete, 14, 21 e 28 dias de pós-operatório............................................................... 51 
  
Figura 10. Corte histológico da pele do Grupo controle (G1). Área com 
ausência de reepitelização (extremidade esquerda) e grande quantidade de 
vasos neoformados e fibras colágenas (tecido de granulação). Hematoxilina-
Eosina (HE). Obj. 40x........................................................................................... 52 
  
Figura 11. Corte histológico da pele do Grupo enxerto (G3). Tecido enxertado 
íntegro, mas com edema moderado da derme superficial e degeneração 
hidrópica epidérmica, demonstrando sofrimento celular. Hematoxilina-Eosina 
(HE). Obj. 40x...................................................................................................... 52 
 
  



vi 

 

Figura 12. Corte histológico da pele do Grupo membrana (G2). a) 
neovascularização e fibras colágenas abundantes com reepitelização completa 
da ferida. HE. Obj. 10x. b) pele neoformada organizada e com epiderme 
espessa. HE. Obj. 40x.......................................................................................... 53 
  
Figura 13. Gráfico da porcentagem de redução das feridas induzidas no 
tarsometatarso de galinhas nos Grupos controle (G1) e tratado com membrana 
de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-TRF) (G2), aos sete, 14, 21 e 28 
dias de pós-operatório......................................................................................... 54 
  
Figura 14. Gráfico das áreas em mm2 das feridas induzidas no tarsometatarso 
de galinhas nos Grupos controle (G1) e tratado com membrana de fibrina rica 
em trombócitos e leucócitos (L-TRF) (G2), aos sete, 14, 21 e 28 dias de pós-
operatório............................................................................................................ 55 
  

  



vii 

 
 
 
 
 
 

Lista de Tabelas 
 

  

Tabela 1. Porcentagem de redução das feridas induzidas no 

tarsometatarso de galinhas nos Grupos controle (G1) e tratado com 

membrana de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-TRF) (G2), nos 

diferentes períodos de avaliação pós-operatória......................................... 

 
 
 

53 
  
Tabela 2. Área das feridas em mm2 do Grupo controle (G1) e do Grupo 

tratado com membrana de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-TRF) 

(G2), nos diferentes períodos de avaliação pós-operatória.......................... 

 
 

54 
  
Tabela 3. Mediana e percentis 25 e 75% dos scores de avaliação 

histopatológica nos Grupos: (i) controle (G1), (ii) tratado com membrana 

de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-TRF) (G2) e (iii) tratado com 

enxerto cutâneo (G3).................................................................................... 55 
  
Tabela 4. Mediana e percentis 25 e 75% dos scores de reepitelização nos 

Grupos controle (G1) e tratado com membrana de fibrina rica em 

trombócitos e leucócitos (L-TRF) (G2).......................................................... 56 
  

 



viii 

 

RECH, V.F. Comparação entre enxerto cutâneo de espessura total e 
membrana de L-TRF no tratamento de feridas induzidas no tarsometartarso 
de galinhas. Botucatu, 2025. 66p. Dissertação (Mestrado em Animais 

Selvagens) – Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Campus de 

Botucatu, Universidade Estadual Paulista. 
 

 

RESUMO 

O objetivo do estudo foi comparar a membrana de fibrina rica em trombócitos e 

leucócitos (L-TRF) com o enxerto autólogo no tratamento de defeitos cutâneos 

induzidos no tarsometatarso, tendo a galinha como modelo experimental. Foram 

utilizadas 23 galinhas (Gallus gallus domesticus), adultas, clinicamente 

saudáveis, as quais foram divididas em três grupos: Grupo 1 – controle (n=7), 

Grupo 2 - membrana de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-TRF) (n=8) e 

Grupo 3- enxerto autólogo (n=8). As feridas foram avaliadas aos sete, 14, 21 e 

28 dias de pós-operatório, momento da troca de curativo e aplicação de nova 

membrana de L-TRF no Grupo 2. A feridas dos Grupos 1 e 2 evoluíram com 

formação de tecido de granulação e epitelização pelas bordas. Com 28 dias de 

pós-operatório, 71,42% das feridas do Grupo 1 não estavam totalmente 

cicatrizadas, ao passo que no Grupo 2, 87,5% das feridas estavam totalmente 

cicatrizadas. Houve diferença significativa da porcentagem de redução das 

feridas do Grupo 2 comparado ao Grupo 1 em todos os tempos avaliados, com 

redução fortemente significativa aos 14 e 21 de pós-operatório. No tempo 7 não 

houve diferença estatística entre os Grupos 1 e 2 com relação à área da ferida, 

já nos tempos 14, 21 e 28 houve diferença significativa do Grupo 2 comparado 

ao Grupo 1. No 28o dia do pós-operatório, 75% dos enxertos de pele do Grupo 3 

sobreviveram, enquanto 25% sofreram necrose. Na histopatologia, o Grupo 2 

teve um maior escore de angiogênese e produção de colágeno se comparado 

ao Grupo 3; o Grupo 3 teve um maior escore de inflamação se comparado ao 

Grupos 2. A diferença de escore de reepitelização entre os Grupos 1 e 2 foi 

fortemente significativa. 

 

Palavras-chave: Ave; Exposição óssea; Defeito cutâneo; Autólogo; Fibrina. 

 

  



ix 

 

 

RECH, V.F. Comparison between full-thickness skin graft and L-TRF 
membrane in treating wounds induced in the tarsometatarsus of chickens. 
Botucatu, 2024. 66p. Dissertação (Mestrado em Animais Selvagens) – 

Faculdade de Medicina Veterinária e Zootecnia, Campus de Botucatu, 

Universidade Estadual Paulista. 

 
 

ABSTRACT 

This study compared the thrombocyte-and leukocyte-rich fibrin membrane (L-

TRF) and autologous grafts in the treatment of skin defects induced in the 

tarsometatarsus, using chickens as an experimental model. A total of 23 adult, 

healthy chickens (Gallus gallus domesticus) were divided into three groups: 

Group 1 – control (n=7), Group 2 – thrombocyte- and leukocyte-rich fibrin 

membrane (L-TRF) (n=8), and Group 3 – autologous graft (n=8). Skin wounds 

were assessed on postoperative days 7, 14, 21, and 28, at which time the 

dressing was changed, and a new L-PRF membrane was applied in Group 2. 

Wounds in Groups 1 and 2 exhibited progressive healing, characterized by 

granulation tissue formation and epithelialization at the wound edges. By 

postoperative day 28, 71.42% of the wounds in Group 1 had not achieved 

complete healing. In contrast, 87.5% of the wounds in Group 2 had achieved 

complete healing. There was a significant difference in the percentage of wound 

reduction in Group 2 compared to Group 1 at all time points, with a highly 

significant reduction at 14 and 21 days postoperatively. On day 7, there was no 

statistical difference between Groups 1 and 2 concerning the wound area, while 

on days 14, 21, and 28, there was a significant difference between Group 2 

compared to Group 1. By postoperative day 28, 75% of the skin grafts in Group 

3 had survived, while 25% had suffered necrosis. In the histopathological 

analysis, Group 2 showed a higher score for angiogenesis and collagen 

production compared to Group 3; Group 3 had a higher inflammation score 

compared to Group 2. The difference in re-epithelialization scores between 

Groups 1 and 2 was highly significant. 

 

 

Keywords: Bird; Bone exposure; Skin defect; Autologous; Fibrin. 



 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

CAPÍTULO 1



11 

 

 

 

1 INTRODUÇÃO E JUSTIFICATIVA 

 

A principal razão para a admissão de aves em centros de 

reabilitação decorre de processos traumáticos (COPE et al., 2022). As causas 

predominantes são colisões com veículos, ataques de outros animais, 

enredamento em cercas ou arames, eletrocussão, queimaduras, projéteis e 

acidentes com lixo (BURKE et al., 2002; RIGGS e TULLY, 2004; FERRIGNO et 

al., 2014; COPE et al., 2022). 

A pele das aves é extremamente vulnerável as lesões por conta 

das características anatômicas, tais como espessura fina e delicada (BURKE et 

al., 2002). O manejo de feridas em aves exige o conhecimento dos mecanismos 

de cicatrização de feridas nessa classe e ciência das opções de tratamento 

(RITZMAN, 2004). O processo de cicatrização de feridas em aves segue padrão 

semelhante ao observado em mamíferos, evoluindo por meio das fases de 

inflamação, proliferação e remodelação (BENNETT, 1994; BURKE et al., 2002). 

A conduta inicial do médico veterinário frente a um paciente lesionado consiste 

na avaliação do estado geral do animal e sua condição é determinante para a 

escolha do protocolo e tratamento (RIGGS e TULLY, 2004). O tratamento de 

lesões deve permitir a soltura das aves no seu ambiente natural, ou recinto, o 

mais breve possível, a fim de evitar novas lesões e/ou alterações metabólicas 

decorrentes do estresse (FERRIGNO et al., 2014). 

O manejo de feridas de grande extensão em aves é ainda um 

desafio na medicina veterinária (STROUD et al., 2003). Nos membros pélvicos, 

a sutura de defeitos torna-se ainda mais complexa pela falta de elasticidade da 

pele e pelo risco de redução dos movimentos em virtude da tensão em regiões 

articulares (HANNON et al., 1993; STROUD et al., 2003; KANE et al., 2019). Ao 

ocorrer uma lesão cutânea na região do tarsometatarso, já ocorre exposição 

óssea pela escassez de cobertura muscular na região (FERRIGNO et al., 2014).  



12 

 

O enxerto de pele é uma alternativa amplamente difundida na 

medicina de mamíferos para defeitos extensos; entretanto, ainda é pouco 

explorada em aves selvagens (STROUD et al., 2003). Entre os benefícios do 

enxerto cutâneo em aves, incluem-se o retorno mais rápido de função, além de 

possível redução dos custos comparado as bandagens prolongadas, terapia 

tópica e reintervenções cirúrgicas (HANNON et al., 1993). Há de se considerar 

também, como observaram Riggs e Tully (2004) e Harcourt-Brown (2002), que 

a fina camada da derme das aves permite uma rápida revascularização, o qual 

contribuiria para o êxito no enxerto de pele total. 

A membrana de fibrina rica em plaquetas e leucócitos (L-PRF) 

trata-se de um biomaterial autólogo (RESENDE et al., 2020), sendo considerada 

uma matriz para a regeneração tecidual que, quando aplicada em lesões 

cutâneas, promove a cicatrização por meio do estímulo da angiogênese e 

remodelação tecidual (DOHAN et al., 2006a; SOARES et al., 2021). A membrana 

apresenta elasticidade, flexibilidade e força, em razão da arquitetura 

tridimensional da matriz de fibrina (KHISTE e TARI, 2013; GIANNINI et al., 2015; 

MADURANTAKAM, 2015). Entre suas vantagens podem ser citados o baixo 

custo, a facilidade do preparo e o baixo risco de rejeição (TCHEMRA et al., 

2021). Na medicina humana, a membrana é amplamente utilizada para 

aprimorar a cicatrização de feridas (MUDROŇOVÁ, 2014); já́ na medicina 

veterinária, estudos que englobam a aplicação da membrana no manejo de 

feridas cutâneas em aves não têm sido explorados (FERNANDES et al., 2019; 

CORTEZE, 2024). Convém considerar que o uso da membrana em aves pode 

ser vantajoso quando há perda significativa de tecido cutâneo, visto acelerar o 

processo de cicatrização (CHOUKROUN et al., 2006; RESENDE et al., 2020). 

Em aves, o sistema hematológico não possui plaquetas em sua 

composição e o processo de coagulação sanguínea é mediado pelos 

trombócitos (CAMPBELL, 1994). De acordo com essa particularidade, a 

nomenclatura adotada nessa pesquisa para o produto obtido do sangue das aves 

foi Fibrina Rica em Trombócitos e Leucócitos (L-TRF), seguindo Fernandes et al. 

(2019). 

Sendo assim, o presente estudo visou avaliar o processo cicatricial 

da membrana de fibrina rica em trombócitos e leucócitos (L-TRF) e do enxerto 

autólogo, aplicados em defeitos cutâneos induzidos no tarsometatarso de 



13 

galinhas. Foram determinados dois capítulos, sendo o primeiro referente à 

introdução e à revisão da literatura e o segundo relativo ao artigo científico 

propriamente dito. 

Dentre os 17 Objetivos de Desenvolvimento Sustentável (ODS), 
estabelecidos pela Organização das Nações Unidas (ONU) na Agenda 2030, 

este estudo se relaciona principalmente com os seguintes: ODS 3 (Saúde e Bem-

estar), ODS 9 (Indústria, Inovação e Infraestrutura) e ODS 15 (Vida Terrestre)



62 

6. Referências

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