IVANA SANTOS MOISINHO 

 

 

 

 

 

EFEITO DOS HERBICIDAS DICAMBA E 2,4-D EM PRÉ-EMERGÊNCIA DE 

PLANTAS DANINHAS 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Botucatu 

2024



 
 

 

  



 

IVANA SANTOS MOISINHO 

 

 

 

 

 

 

 

 

EFEITO DOS HERBICIDAS DICAMBA E 2,4-D EM PRÉ-EMERGÊNCIA DE 

PLANTAS DANINHAS 

 

 

 

 

Tese apresentada à Faculdade de 
Ciências Agronômicas da Unesp Câmus 
de Botucatu, para obtenção do título de 
Doutor Agronomia/Proteção de Plantas 

 

Orientador(a): Prof. Dr. Edivaldo 
Domingues Velini 

 

 

 

 

 

Botucatu 

2024 



 
 

 



 





 

AGRADECIMENTOS 

 

Inicialmente ao Senhor pela oportunidade de estar presente neste momento e 

proporcionar-me a passagem de grandes pessoas em meu caminho que contribuíram 

para minha formação profissional e pessoal. Por iluminar e me guiar durante a 

trajetória. Por me dar força nos momentos mais difíceis e nunca me deixar perder a fé 

para seguir o caminho. 

À minha família, por ter me criado com valores e princípios que orientam nas minhas 

decisões, apoio e suporte como também as críticas para seguir no rumo certo.  

À Universidade Estadual Paulista “Júlio de Mesquita Filho” - Faculdade de Ciências 

Agronômicas (FCA-UNESP Botucatu), ao Programa de Pós-graduação   em 

Agronomia - Proteção de plantas, e ao Núcleo de Pesquisas Avançadas em Matologia, 

pela oportunidade e infraestrutura para desenvolvimento do Mestrado acadêmico. 

À The Pennsylvania State University, pela oportunidade, suporte e acolhimento 

durante o período de intercâmbio. 

O presente trabalho foi realizado com apoio da Coordenação de Aperfeiçoamento de 

Pessoal de Nível Superior - Brasil (CAPES) - Código de Financiamento 001. 

Ao Prof. Dr. Edivaldo Domingues Velini, pela orientação e paciência em partilhar 

conhecimentos, auxiliando e oferecendo suporte em todos os momentos ao longo do 

meu período de pós-graduação. Além da orientação profissional, agradeço também 

por demonstrar tamanha humildade, respeito e valorização humana em todos os 

momentos que partilhamos. 

Ao prof. Caio Antonio Carbonari, que direta e indiretamente pela presença e 

contribuições na realização da pesquisa, bem como o suporte durante o período. 

Ao prof. Caio Augusto de Castro Grossi Brunharo, por proporcionar a realização do 

intercâmbio, pela orientação e compartilhamentos nos projetos de pesquisa, pelo 

apoio e incentivo ao meu desenvolvimento profissional.  

Aos técnicos e funcionários do Núcleo de Pesquisas Avançadas em Matologia, José 

Roberto Marques Silva, José Guilherme Ferreira Cordeiro e Luis Marcelo Siono pelo 

auxílio nas atividades experimentais. Como também por todos os momentos de 

alegria e compartilhamentos durante o período de convivência. 

Aos professores da Faculdade de Ciências Agronômicas (FCA- UNESP Botucatu), 

pelos conhecimentos compartilhados e contribuições para a minha formação 

profissional. 



 
 

Agradecimento especial deve ser feito a todos que mesmo nos encontrando no 

ambiente profissional se tornaram muito mais que colegas. Àquelas responsáveis pela 

troca de experiências, acolhimento, palavras de carinho e ouvidos nos momentos de 

desabafo. Por estender a mão e contar com apoio em todas as horas e que vou 

carregar um pedacinho de cada um. 

Àqueles que convivi e contribuíram também nas pesquisas realizadas no NUPAM, 

Lais Maria Bonadio Precipito, Renato Nunes Costa, Marina Cucci, Jéssica Bonamichi, 

Ana Karollyna Alves de Matos, Ivana Paula Ferraz, Natalia da Cunha Bevilaqua, 

Tamara Thais Mundt, Plínio Saulo Simões, Raphael Mereb Negrisoli, José Rufato, 

Izabela Thais dos Santos e, Valesca Pinheiro de Miranda. 

Àqueles que encontrei na pós-graduação, além de colegas de profissão se tornaram 

membros da família, pois amigo é a família que a gente escolhe, Paula Gregorini Silva, 

Bruna dos Anjos, Thais Lohaine Braga Santos, Felipe Barreto, Barbara Silveira, Aline 

Marques e, Ana Paula Santana. 

Aos colegas de laboratório Penn State University que auxiliaram na condução dos 

ensaios e amizade construída, Laura Rodriguez Baquero, Anais Mariana Mejia 

Salorzano, Adrian Veron Zarate, Justin Kozak e Ana Paula Werkhausen Witter. 

Às minhas colegas de sala Laurel Wellman and Noelle Connors e aos demais pós-

graduandos da Penn State University Megan Czekaj, Emma Katherine Rice, Diego 

Barranco, Kara Eckert, Nasib Koirala, Navdeep Kaur, Gloriose Nsengiyumva, e, Victor 

Vicentin Bentes pelos momentos e experiências partilhadas. 

Àqueles que tiver o prazer de dividir a mesma morada durante o intercâmbio, Ana 

Silva, Jessica Valmorbida, Maikol Christian, Fabricio Vasconcelos, Douglas Monteiro, 

Maria Karolina Ramos, Adriana Oliveira, Cesar Abrahao, Kai Wang, Jean Magalhães 

e Alisson Marques pelas conversas na mesa, e tantos outros momentos que 

vivenciamos. Faltam palavras para expressar o que a nossa convivência representou, 

com certeza vocês fizeram desse período muito mais leve e acolhedor. 

Àqueles amigos em State College, Alexandre Borges, Larissa Correia, Raúl Román, 

David Sanchez, Raul Roch, Stan Mulik, Daniele Paulino, Alejandra Flores Mejia, 

Fellype Diorgennes, Celso de Lima,  Julian, Ivan Lopez, Sergio Perez, Davis Salas, 

Stefan Terrazas, Pedro Augusto por todas as conversas, convivência e tantos outros 

momentos que partilhamos.  

Aos demais amigos, professores, orientadores e funcionários que compreenderam 

parte do caminho até aqui, proporcionando experiências e conhecimentos 



 

fundamentais para meu desenvolvimento. Sempre estiveram presentes 

compartilhando momentos, onde a sua presença foi essencial para seguir adiante. 

 

À todos que cruzaram e marcaram de alguma forma meu caminho 

 

 





 

RESUMO 

 

Os herbicidas auxínicos controlam eficazmente plantas daninhas de folhas largas com 

pouca ação sobre gramíneas em pós-emergência, sendo seletivos para culturas 

específicas quando aplicados no momento recomendado. Estudos foram conduzidos 

para verificar o efeito de 2,4-D e dicamba em espécies gramíneas e eudicotiledôneas 

quando aplicados na pré-emergência, bem como, a dinâmica em solos com 

característica distintas. O primeiro experimento consistiu em testes de germinação 

com 2,4-D e dicamba em Urochloa decumbens (BRADC), Digitaria insularis (TRCIN), 

Eleusine indica (ELEIN) e Amaranthus hybridus (AMACH), Ipomoea grandifolia 

(IAQGR) e Distimake aegyptius (CONAE) nas concentrações 0; 0,5; 1; 5 e 10 ppm. 

Aos 7 e 14 dias foram mensuradas a porcentagem de germinação e plântulas 

deformadas ou mortas e, comprimento de parte aérea e raízes. Os dados foram 

analisados em experimento fatorial 5x2 através do teste de LSD à 5%. O segundo 

experimento consistiu na saturação de 39 solos com características distintas com uma 

solução de 2,4-D, picloram, triclopyr e, aminopyralid na concentração de 200 ppb. O 

solo saturado contido em cartuchos foi submetido a extração após 24h. Os compostos 

foram analisados através de cromatografia líquida e os teores dos herbicidas foram 

correlacionados com as diferentes características físico-químicas dos solos. O terceiro 

experimento consistiu na aplicação de 2,4-D e dicamba em pré-emergência das 

mesmas espécies que o estudo anterior nas doses de 0, 125, 250, 500, 1000, 2000, 

4000 e 8000 g e a ha-1. Aos 7, 14 e 21 dias foram contabilizadas o número de plântulas 

emergidas e aos 21 dias foi coletada a biomassa. As curvas de dose resposta foram 

ajustadas aos modelos log-logísticos e de hormesis. No primeiro experimento, os 

herbicidas auxínicos apresentaram efeitos difusos na germinação, plântulas 

deformadas e/ou mortas, comprimento de parte aérea e raízes resultando tanto em 

estímulo quanto em supressão a depender da espécie, concentração e tempo de 

avaliação. Foi verificado efeito supressor no comprimento de raízes das espécies 

daninhas nas concentrações e tempo de avaliação testados. No segundo 

experimento, A ordem de sorção dos herbicidas, do maior para o menor, foi: triclopyr, 

2,4-D, picloram e aminopyralid. Em relação à disponibilidade, a sequência foi: 

aminopyralid, 2,4-D, picloram e triclopyr. As principais características do solo que 

influenciam negativamente a disponibilidade dos herbicidas auxínicos no solo foram 



 
 

argila, matéria orgânica, Al3, H+Al3 e Fe, e; positivamente, os teores de areia total, 

pH e V%. No terceiro experimento, o efeito fitotóxico dos herbicidas auxínicos 

aplicados em pré-emergência de plantas daninhas em solo de textura média variou 

de acordo com o tempo de exposição, tipo de herbicida utilizado e espécie. As 

espécies U. decumbens, E. indica e D. aegyptius apresentaram menor suscetibilidade 

aos herbicidas auxínicos testados em pré-emergência. A emergência das plântulas 

demonstrou maior suscetibilidade ao dicamba, exceto A. hybridus e a biomassa 

também apresentou maior redução na presença de dicamba exceto em A. hybridus e 

I. grandifolia. 

 

Palavras-chave: plantas daninhas; hormesis; herbicidas auxínicos; sorção; 

disponibilidade de herbicidas.  



 

ABSTRACT 

 

Auxinic herbicides effectively control broadleaf weeds with minimal action on grasses 

in post-emergence, being selective for specific crops when applied at the 

recommended timing. Resistant species cases have stimulated the development of 

herbicide-resistant crops, allowing the control of difficult weeds in pre- or post-

emergence. The effects of auxinic herbicides on the pre-emergence of grasses are 

underexplored; thus, based on the hypothesis that auxinic herbicides provide  control 

on this group of species in pre-emergence, studies were conducted to verify the effect 

of 2,4-D and dicamba on grass and eudicot species when applied in pre-emergence, 

as well as their dynamics in soils with distinct characteristics. The first experiment 

consisted in germination test with 2,4-D and dicamba on Urochloa decumbens 

(BRADC), Digitaria insularis (TRCIN), Eleusine indica (ELEIN), and Amaranthus 

hybridus (AMACH), Ipomoea grandifolia (IAQGR), and Distimake aegyptius (CONAE) 

at concentrations of 0, 0.5, 1, 5, and 10 ppm. At 7 and 14 days, the percentage of 

germination, deformed or dead seedlings, and the length of shoots and roots were 

measured. Data were analyzed in a 5x2 factorial experiment using the LSD test at 5%. 

The second experiment involved the saturation of 39 soils with distinct characteristics 

using a solution of 2,4-D, picloram, triclopyr, and aminopyralid at a concentration of 

200 ppb. Saturated soil contained in cartridges was subjected to extraction after 24 

hours. The compounds were analyzed using liquid chromatography, and herbicide 

availability were correlated with soil properties. The third experiment involved the 

application of 2,4-D and dicamba in pre-emergence to the same species as the 

previous study at rates of 0, 125, 250, 500, 1000, 2000, 4000, and 8000 g ha-1. At 7, 

14, and 21 days, the number of emerged seedlings was assessed, and at 21 days, 

biomass was collected. Dose-response curves were fitted to log-logistic and hormesis 

models. In the first experiment, auxinic herbicides showed diffuse effects on 

germination, deformed and/or dead seedlings, shoot and root length, resulting in both 

stimulation and suppression depending on the specie, concentration, and evaluation 

time. A suppressive effect on the root length of weed species was observed at the 

tested concentrations and evaluation times. The order of sorption of the herbicides, 

from highest to lowest, was: triclopyr, 2,4-D, picloram and aminopyralid. Regarding 

availability, the sequence was: aminopyralid, 2,4-D, picloram and triclopyr. The main 

soil characteristics that negatively influenced the availability of auxinic herbicides in the 



 
 

soil were clay, organic matter, Al3, H+Al3 and Fe, and positively, the total sand content, 

pH and V%. The phytotoxic effect of auxinic herbicides applied in pre-emergence in 

medium-textured soil varied according to exposure time, type of herbicide used, and 

specie. U. decumbens, E. indica, and D. aegyptius showed lower susceptibility to 

tested auxinic herbicides in pre-emergence. Seedling emergence demonstrated 

greater susceptibility to dicamba, except for A. hybridus, and biomass also showed 

greater reduction in dicamba application except in A. hybridus and I. grandifolia. 

 

Keywords: weeds; hormesis; auxinic herbicides; sorption; herbicide availability. 

  



 

SUMÁRIO 

 

1  INTRODUÇÃO ........................................................................................  15 

2 REVISÃO DE LITERATURA ...................................................................  17 

2.1 Auxinas endógenas e sintéticas ..........................................................  17 

2.1.1 Dicamba ..................................................................................................  20 

2.1.2  2,4-D ........................................................................................................  21 

2.2 Dinâmica de herbicidas no solo ...........................................................  23 

2.2.1 Características físico-químicas dos herbicidas ..................................  23 

2.2.2 Características físico-químicas dos solos ..........................................  24 

2.2.3 Processos de retenção, transporte e transformação .........................  26 

3 MATERIAL E MÉTODOS ........................................................................  28 

3.1 Experimento I- Efeito dos herbicidas dicamba e 2,4-D na 

germinação de sementes de plantas daninhas ...................................  28 

3.2 Experimento II- Sorção e disponibilidade de herbicidas auxínicos 

em solos com características distintas ...............................................  29 

3.3 Experimento III- Efeito dos herbicidas dicamba e 2,4-D em pré-

emergência de plantas daninhas .........................................................  39 

4 RESULTADOS E DISCUSSÃO ..............................................................  43 

4.1 Experimento I- Efeito dos herbicidas 2,4-D e dicamba na 

germinação de sementes de plantas daninhas ...................................  43 

4.2 Experimento II- Sorção e disponibilidade de herbicidas auxínicos 

em solos com características distintas ...............................................  61 

4.3 Experimento III- Efeito dos herbicidas dicamba e 2,4-D em pré-

emergência de plantas daninhas .........................................................  69 

 CONCLUSÕES .......................................................................................  84 

 REFERÊNCIAS .......................................................................................  85 

 APÊNDICE A- Análise de variância das variáveis de germinação, 

plântulas deformadas, comprimento de parte aérea e raízes 

avaliadas em diferentes espécies de plantas daninhas aos 7 DAS ..  93 

 APÊNDICE B- Análise de variância das variáveis de germinação, 

plântulas deformadas, comprimento de parte aérea e raízes 

avaliadas em diferentes espécies de plantas daninhas aos 14 DAS   94 



 
 

 APÊNDICE C- Curva de dose-resposta de 2,4-D aplicado em pré-

emergência das plantas daninhas U. decumbens, D. insularis, E. 

indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius aos 7 DAA ..............   95 

 APÊNDICE D- Curva de dose-resposta de 2,4-D aplicado em pré-

emergência das plantas daninhas U. decumbens, D. insularis, E. 

indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius aos 14 DAA ............   96 

 APÊNDICE E- Curva de dose-resposta de 2,4-D aplicado em pré-

emergência das plantas daninhas U. decumbens, D. insularis, E. 

indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius aos 21 

DAA................................................................................................ ..........  97 

 APÊNDICE F- Curva de dose-resposta de dicamba aplicado em pré-

emergência das plantas daninhas U. decumbens, D. insularis, E. 

indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius aos 7 DAA ..............  98 

 APÊNDICE G- Curva de dose-resposta de dicamba aplicado em pré-

emergência das plantas daninhas U. decumbens, D. insularis, E. 

indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius aos 14 DAA ............  99 

 APÊNDICE H- Curva de dose-resposta de dicamba aplicado em pré-

emergência das plantas daninhas U. decumbens, D. insularis, E. 

indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius aos 21 DAA ............  100 

 



15 
 

1 INTRODUÇÃO 

 

Herbicidas auxínicos atuam como análogos da auxina (IAA), em baixas 

concentrações, estimulam o crescimento via divisão, alongamento celular e 

diferenciação de tecidos. Em altas concentrações, promovem a desregulação 

homeostática e o desequilíbrio com outros reguladores vegetais inibindo o 

crescimento apical e radicular, culminando no colapso da estrutura da planta 

(Grossmann, 2003; Cobb, 1992). Devido a isto, são naturalmente reconhecidos por 

proporcionarem controle efetivo de plantas daninhas comumente denominadas de 

folhas largas com pouco efeito sobre espécies gramíneas ou seletividade as culturas, 

quando aplicados no momento recomendado. 

Os herbicidas auxínicos proporcionam controle efetivo e em baixas doses de 

folhas largas, e são seletivos às culturas, como milho, trigo, arroz e cevada, quando 

aplicados no momento recomendado. Além disso, seu desenvolvimento foi decorrente 

do custo reduzido de produção e efetivos para expansão da produção de alimentos. 

A seletividade é dependente da quantidade do ingrediente ativo chegando no site alvo 

e diferenças de sensibilidade do sitio alvo. As plantas tolerantes conseguem 

metabolizar o herbicida através de reações de oxidação e conjugação, onde ocorre 

hidroxilação do anel aromático desativando os herbicidas (Cobb; Reade, 2010). Em 

membros da família Poaceae a seletividade ocorre devido à ausência de câmbio 

vascular, os tecidos vasculares espalhados, floema protegido por esclerênquima e 

presença de meristema intercalar que dificultam a translocação. 

Em virtude do aparecimento de espécies resistentes à herbicidas, novas 

tecnologias vêm sendo desenvolvidas garantindo a resistência de culturas quando 

realizadas aplicações de herbicidas auxínicos. Essas tecnologias auxiliam no controle 

de espécies daninhas de folhas largas de difícil controle por meio de aplicações em 

pré ou pós-emergência da cultura.  

O uso crescente dessas moléculas aliados a escassez de informações sobre 

efeitos em espécies daninhas, torna-se importante a condução de estudos para 

elucidação dos possíveis efeitos no sistema produtivo. Uma vez no solo, essas 

moléculas podem estar sujeitas aos processos de sorção, transporte, absorção pelas 

plantas e metabolismo microbiano, sendo a adsorção/ dessorção o processo que 

regula os demais processos no solo (Okada et al. 2016; Sun et al. 2019).  E portanto, 

o destino e comportamento de um herbicida no ambiente dependem de suas 



16 
 

propriedades físico-químicas, da matriz e das condições ambientais. O efeito residual 

pode ser positivo (controle de plantas daninhas) ou negativo (carryover), afetando 

culturas em rotação/sucessão (Mendes et al., 2023) 

Por se tratar de uma alternativa importante no manejo de plantas daninhas, é 

esperado que ocorra uma larga adoção dessas novas ferramentas e apesar de 

convencionalmente não controlar efetivamente as espécies gramíneas, efeitos nesse 

grupos de espécies foram relatados, ainda que não sejam o alvo principal desses 

herbicidas (Gazola et al., 2019, 2022). Umas das hipóteses deste estudo é que os 

herbicidas auxínicos apresentam efeito fitotóxico em gramíneas quando aplicados em 

pré-emergência. Nesse sentido, é considerável verificar o efeito dos herbicidas 

durante o processo de germinação, emergência, assim como a dinâmica dos 

herbicidas no solo e consequente controle. 

Portanto, com o presente estudo buscou-se investigar os efeitos de 2,4-D e 

dicamba em pré-emergência de plantas daninhas da família Poaceae e, 

eudicotiledôneas, bem como, o comportamento dos herbicidas auxínicos em solos 

com características distintas e, fornecer subsídios para o manejo integrado de plantas 

daninhas em culturas agrícolas. 

 

 

  



17 
 

2 REVISÃO DE LITERATURA 

 

2.1 Auxinas endógenas e sintéticas 

 

As auxinas estão envolvidas na regulação de uma variedade de processos 

fisiológicos, como dominância apical, tropismos, filotaxia, alongamento do caule, 

indução da divisão celular cambial e iniciação da radícula (Buchanan; Gruissem; 

Jones, 2015). 

Em altas concentrações, as auxinas sintéticas apresentam ação herbicida 

eficiente em folhas largas. A atividade da auxina em plantas é regulada principalmente 

pelo controle do conteúdo de IAA por meio de vários processos: biossíntese de novo 

e inativação por várias conjugações e vias catabólicas. Existem duas vias de 

biossíntese de IAA de novo, uma das quais é dependente do aminoácido o precursor 

l-triptofano e o outro é l-Trp-independente, embora a via dependente de l-Trp seja 

provavelmente dominante (Buchanan; Gruissem; Jones, 2015). 

A hidrólise de conjugados IAA também libera auxina ativa. O conteúdo de IAA 

em tecidos pode ser influenciado pelo transporte polar basípeto resultando em  

movimento descendente de IAA dos meristemas apicais e folhas jovens em direção 

as raízes (Buchanan; Gruissem; Jones, 2015). 

O alelo TAA1, que também desempenham um papel na biossíntese de auxina 

e no desenvolvimento da planta, foi identificado como um gene causal de mutantes 

insensíveis ao etileno, demonstrando menor sensibilidade de raízes ao etileno. O alelo 

codifica uma pequena família de aminotransferases muito semelhante a C-S liase e 

múltiplos mutantes desta família de genes apresentam fenótipos com defeitos no 

gravitropismo da raiz, organização da vasculatura e desenvolvimento de ramos e 

flores (Buchanan; Gruissem; Jones, 2015). 

Alterações nas flores, menor produção de pólen e consequente infertilidade 

foram identificadas em plantas transgênicas, apesar de não ocorrer alterações em 

estádios vegetativos. Dependendo do tecido, há um aumento de duas a três vezes na 

quantidade de conjugados IAA - principalmente IAAAsp e IAA-Glu, com quantidades 

menores de 1-O-IAA-glicose. Assim, quando a produção de IAA é aumentada, a 

conjugação parece desempenhar um papel fundamental na regulação do tamanho do 

pool de IAA endógeno e na manutenção de um fenótipo quase normal (Buchanan; 

Gruissem; Jones, 2015). 



18 
 

Conforme Buchanan, Gruissem e Jones, (2015), o aumento de IAA pode ser 

acompanhado por efeitos fenotípicos, incluindo dominância apical pronunciada, 

nanismo, formação excessiva de raízes adventícias, aumento da formação de floema 

e xilema, excesso de lignificação, epinastia foliar e produção anormal de flores, além 

da maior biossíntese de etileno. 

A característica geral dos herbicidas auxínicos é que eles imitam a ação da 

auxina principal IAA. Quando presentes em baixas concentrações nos locais de ação 

das células, estimulam o crescimento e o desenvolvimento, como divisão celular e 

alongamento, diferenciação vascular, formação de raiz e domínio apical (Grossmann, 

2003).  

Em altas concentrações ocorre o fenômeno descrito como uma overdose de 

auxina levando a um desequilíbrio homeostático e interações com outros hormônios 

no tecido (COBB, 1992). O estímulo contínuo do metabolismo de ácidos nucléicos e 

síntese de proteínas, provoca desregulação do crescimento. A divisão e expansão 

celular  desregulada provoca o colapso da estrutura de crescimento e inibição do 

crescimento apical da parte aérea e da raiz (Grossmann, 2003). 

Crescimento anormal é induzido em outros tecidos resultando em inchaço e 

deformações. Concomitantemente, a divisão celular e diferenciação meristemática e 

as regiões das células cambiais são iniciadas transitoriamente. Esses tecidos recém-

formados foram assumidos como ‘‘Sumidouros metabólicos’’ levando à mobilização e 

atração de reservas de carboidratos e proteínas provenientes de tecidos funcionais, 

que senesce ao nutri-los (Van Overbeek, 1964; Cobb, 1992). 

Os eventos induzidos pelas concentrações herbicidas de auxinas nos tecidos 

podem apresentar três fases. A primeira é uma fase de estimulação, após as primeiras 

horas após a aplicação. Nesta fase, ocorre ativação de processos metabólicos, como 

biossíntese de etileno através da indução de ácido 1-aminociclopropano-1-carboxílico 

(ACC) sintase no tecido da parte aérea (1-2 h), seguida por sintomas de deformação 

do crescimento (3-4 h), início da ondulação do caule, inchaço do tecido e folha 

epinástica. Posteriormente, há acumulo de ABA, detectável no tecido após 5-8 h 

(Grossmann, 2003). 

A segunda fase ocorre dentro de 24 h, onde são observados inibição do 

crescimento da raiz e, em maior medida, do broto, diminuição do alongamento do 

entrenó e área foliar, e folha com pigmentação verde escura. Concomitantemente, 



19 
 

reduções na abertura estomática, transpiração, assimilação de carbono e formação 

de amido (Grossmann, 2003).   

A terceira fase é reconhecida por ocasionar a senescência e decadência do 

tecido, com danos aos cloroplastos, clorose progressiva decorrente da desintegração 

da membrana e do sistema vascular, dessecação, necrose e morte da planta 

(Grossmann, 2003). 

O etileno é um hormônio gasoso envolvido nas respostas da planta ao estresse 

e à regulação de senescência e crescimento (Abeles; Morgan; Saltveit, 1992; Kende; 

Zeevaart, 1997). Atua na orientação dos microtúbulos transversais para uma 

orientação longitudinal promovendo expansão lateral da célula levando ao inchaço 

dos caules e raízes (Abeles; Morgan; Saltveit, 1992). Além disso, o etileno induzido 

medeia os efeitos da auxina, como a abscisão da folha e epinastia, e regula os níveis 

de auxina localmente através do transporte de auxina inibido por etileno (Abeles; 

Morgan; Saltveit, 1992). 

Síntese de ACC induzida pela atividade da auxina resulta em níveis 

aumentados de ACC, em paralelo ao aumento da formação de etileno (Abeles, 

Morgan, Saltveit, 1992). Por outro lado, de acordo com seu comportamento bifásico, 

baixas concentrações de auxinas foram encontrados para diminuir a atividade da ACC 

sintase e ACC e formação de etileno (Grossmann; Retzlaff, 1997). 

Acúmulos massivos de ABA na raiz e ainda mais no tecido do caule foram 

encontrados usando perfis fito-hormonais de extratos de plantas (Scheltrup; 

Grossmann, 1995). Em contraste, as concentrações de outros fitohormônios, incluindo 

giberelinas, citocininas, IAA endógeno (Scheltrup; Grossmann, 1995) e ácido 

jasmônico foram modificados apenas moderadamente (Grossmann, 2003). 

Estudos com órgãos isolados de plantas demonstraram que aumentos 

induzidos por auxina em etileno e ABA ocorrem principalmente no tecido do caule. A 

partir daí, ABA parece ser translocado para as raízes (Grossmann, 2000a;  

Grossmann, 2000b).  

Uma vez que as auxinas são rapidamente absorvidas pela folha e translocadas 

por toda a planta, um desequilíbrio do regulador de crescimento é claramente 

evidente, os sistemas de controle estão sobrecarregados e o crescimento é 

drasticamente alterado por concentrações supra-ótimas de auxina (Cobb; Reade, 

2010).  

 



20 
 

2.1.1 Dicamba 

 

O herbicida ácido 2-metóxi-3,6-diclorobenzoico, popularmente conhecido como 

dicamba pertence ao mecanismo de ação dos mimetizadores de auxina, classificado 

como grupo 4 pela HRAC (2024) ao grupo químico dos ácidos benzoicos. 

O dicamba é caracterizado como um ácido forte com pKa de 1,87 apresenta 

alta solubilidade em água (250000 mg l⁻¹), baixa partição octanol água (Kow: 1,58x10-

2), baixa pressão de vapor  (Pv: 1,67 mPa) e volatilidade (H: 5,06x10-5). É um 

composto não persistente no solo, uma vez que a meia vida é de cerca de 4 dias 

(DT50) e baixo potencial de lixiviação (GUS: 1,94) (PPDB, 2024). 

Chang e Vanden Born (1971) avaliaram os comportamentos de absorção, 

translocação e metabolismo de dicamba em espécies de plantas daninhas e culturas 

gramíneas. Em trigo sarraceno tártario (Fagopyrum tataricum (L.) Gaertn.) e mostarda 

selvagem (Sinapis arvensis L.) um dia após aplicação de 14C-Dicamba foram 

acumuladas em folhas jovens em desenvolvimento ativo no ápice da broto. Já em 

cevada e trigo, a distribuição foi pouco uniforme com uma tendência de acúmulo no 

ápice das folhas de trigo, porém a maior parte parecia permanecer nas folhas tratadas. 

Os dados quantitativos indicaram que a absorção de dicamba pelos tecidos da folha 

de trigo sarraceno tartário e mostarda selvagem foi muito mais rápida e mais completa 

do que pelas duas espécies de cereais, além da maior translocação comparado a 

cevada e o trigo. 

Os autores testaram também a absorção através das raízes e verificaram o 

mesmo padrão de distribuição observado para aplicação na parte aérea, exceto que 

houve mais atividade nas raízes após a aplicação por meio da solução nutritiva. A 

distribuição ocorreu de forma intermediária pelas plantas das duas espécies de 

cereais, enquanto nas duas espécies de plantas daninhas houve acúmulo nas folhas 

jovens (Chang; Vanden Born, 1971). 

Em todas as espécies houve metabolismo desse herbicida, embora o dicamba 

5-OH pareceu estar presente apenas como um conjugado em todas as quatro 

espécies, sendo que, o dicamba permaneceu em grande parte em sua forma 

inalterada. Quantidades inferiores de dicamba conjugado foram detectadas no trigo, 

cevada e na mostarda selvagem, e ausentes no trigo sarraceno tartário. Claramente, 

a desintoxicação do dicamba no trigo foi muito rápida, quase metade do herbicida foi 

metabolizado em 1 dia, e 93% estava em formas diferentes de dicamba livre 20 dias 



21 
 

após a aplicação (Chang; Vanden Born, 1971). Portanto, a absorção seletiva, 

translocação e metabolismo de dicamba por trigo, cevada, mostarda selvagem e trigo 

sarraceno tartário desempenham um papel importante em sua suscetibilidade ou 

resistência a este herbicida (Chang; Vanden Born, 1971). 

Estudos recentes com tomate selvagem e acessos apresentando tolerância ao 

herbicida, Zangoueinejad, Alebrahim e Tseng (2021) verificaram que o acesso 

tolerante teve menor absorção do composto, no entanto a translocação foi similar 

entre os acessos suscetíveis e tolerantes. Os autores sugerem que a menor absorção 

poderia estar associada as características morfológicas da folha, como razão entre 

comprimento e largura e densidade de tricomas.  

Em Chenopodium album Ghanizadeh; Harrington; James, (2018) observaram 

que cerca de 80% do aplicado foi absorvido em biótipos suscetíveis e resistentes, e 

cerca de 18% do dicamba absorvido foi translocado para o caule.  

 

2.1.2 2,4-D 

 

O ácido 2,4-diclorofenoxiacético está atualmente registrado em uma variedade 

de formulações de sal, amina e éster para o controle de plantas daninhas de folha 

larga (Yamada, 2011). O 2,4-D é caracterizado como um ácido forte com pKa de 3,4 

apresenta alta solubilidade em água (24300 mg l⁻¹), baixa partição octanol água (Kow: 

1,51x10-1), baixa pressão de vapor  (Pv: 0,009 mPa) e volatilidade (H: 4,0x10-6). É um 

composto não persistente no solo, uma vez que a meia vida é de cerca de 28,8 dias 

(DT50) e apresenta alto potencial de lixiviação (GUS: 3,82) (PPDB, 2024). 

Os cloroplastos têm sido considerados o alvo inicial do 2,4-D, uma vez que o 

produto químico é principalmente acumulado e posteriormente metabolizado nessas 

organelas. A assimilação de carbono e as reações fotoquímicas podem ser 

pronunciadas por baixas concentrações de 2,4-D, enquanto concentrações mais altas 

se mostram inibidoras. Ao inibir a reação de Hill, o 2,4-D bloqueia o transporte de 

elétrons no fotossistema II. O teor de clorofila e carotenóide, assim como a relação 

clorofila / benzoquinona, são reduzidos em 2,4-D, enquanto a relação xantofila / 

caroteno aumenta devido ao herbicida, efeitos esses que desencadeiam a 

senescência da maquinaria fotossintética (Pazmiño; Romero-Puertas; Sandalio, 

2012). 



22 
 

Os efeitos observados em espécies de gramíneas foram observados por Teel 

(1952 apud Klomp; Hull, 1968) através de lesões em mudas de grama durante o 

estágio de 1 a 3 folhas com 840 g ha-1 A de 2,4-D. Watson (1949, apud Klomp; Hull, 

(1968) verificou que quantidades normais de 2,4-D causaram malformação e injúrias 

em plântulas de capim-bravo (Agrostis canina L.) com 28 dias de idade.  Phillips (1949  

apud Klomp; Hull, 1968) observou em gramíneas de verão e inverno danos quando 

pulverizadas sob a forma de amina de 2,4-D a 560 e 1123 g ha-1 na emergência, 

porém sem lesões aos 2, 4 e 8 semanas após a emergência. As espécies da estação 

fria foram menos afetadas do que as espécies da estação quente e a taxa de danos 

em todas as espécies diminuiu em datas posteriores e taxas mais baixas. No entanto, 

Klingman (1959 apud Klomp; Hull, 1968) não relatou nenhum dano herbicida 

duradouro a mudas de gramíneas de estação quente ou fria.  

Segundo Klomp e Hull, (1968) mudas de grama sofreram lesões quando 

pulverizadas em estágios de crescimento suscetíveis ou com taxas muito altas de 2,4-

D, podendo haver recuperação se as injúrias não forem severas. Indicando que, as 

pulverizações após estágios de 2 a 4 folhas os danos são menores. 

Além das pulverizações foliares, as mudas de grama também podem ser 

danificadas por herbicidas transportados para a planta pela água de superfície ou 

lixiviados para baixo para germinar a semente ou para as raízes (Klomp; Hull, 1968). 

O modo de ação dos herbicidas auxínicos é dependente da dose, sensibilidade 

dos tecidos e espécie. Poucas horas após a aplicação, alguns sintomas podem ser 

observados, como distorções de crescimento em toda a planta, dando origem 

epinastia da folha e curvatura do caule, culminando em senescência e morte. 

A seletividade em pós-emergência de herbicidas auxínicos está geralmente 

associada as reações metabólicas no anel de hidroxilação seguidas por conjugação 

irreversível a glucose (Devine; Duke; Fedtke, 1981). Já em eudicotiledôneas 

sensíveis, podem ser conjugados a aminoácidos e nesta forma reversível pode ser 

parcialmente ativado e promover efeito herbicida (Scheel; Sandermann, 1981). 

Em Amaranthus tuberculatus Figueiredo et al. (2018) verificou que não houve 

diferenças entre absorção e translocação entre o biótipo suscetível e resistente. No 

entanto, o biótipo resistente apresentou maior metabolização do composto, onde, a 

meia-vida foi de 22 h enquanto que no biótipo suscetível foi de 105 h. 

 



23 
 

2.2  Dinâmica de herbicidas no solo 

 

Os herbicidas aplicados nos ambientes agrícolas são depositados direta ou 

indiretamente no solo.  Tais moléculas podem permanecer na solução do solo e 

passível de ser absorvida por estruturas vegetais ou retidos pela matriz do solo, sujeito 

aos processos de retenção, transporte e transformação. 

O processo de retenção envolve a adsorção aos coloides do solo, precipitação 

e absorção, e estes influenciam a intensidade do transporte (deriva, escorrimento 

superficial, lixiviação e volatilização) e da transformação (degradação química, 

degradação biológica e fotodegradação). A sorção de herbicidas no solo envolve a 

absorção, a precipitação e a adsorção, que por sua vez regula o processo de retenção 

e influencia no transporte, transformação e biodisponibilidade das moléculas no solo 

(Oliveira; Brighenti, 2011). 

A dinâmica dos herbicidas também é regida pelas características intrínsecas 

aos solos e aos herbicidas e suas interações. A dinâmica de herbicidas é influenciada 

por características do solo como o teor de matéria orgânica, pH, tipo e quantidade de 

argila. Tais processos se inter-relacionam e são fortemente dependentes das 

características físico-químicas dos herbicidas; das propriedades físicas, químicas e 

biológicas do solo; e das condições ambientais. 

 

2.2.1  Características físico-químicas dos herbicidas 

 

As principais propriedades físico-químicas dos herbicidas que determinam seu 

comportamento no ambiente são solubilidade em água (S), pressão de vapor (Pv), 

coeficiente de partição octanol-água (Kow), constante de ionização ácida (pKa) ou 

básica (pKb), constante da lei de Henry (H), meia-vida (t1/2), coeficiente de sorção na 

fração mineral do solo (Kd) e coeficiente de sorção normalizado para o teor de carbono 

orgânico (Koc). 

Herbicidas com maior solubilidade em água são geralmente menos retidos no 

solo e mais suscetíveis à degradação e transporte, como lixiviação (Silva et al., 2014). 

Quando aplicado sobre a cobertura morta, a solubilidade irá definir a capacidade de 

penetração do herbicida no solo (Carbonari et al., 2022). Já aqueles com alta pressão 

de vapor mudam para o estado de vapor mais facilmente, são menos solúveis em 

água, menos adsorvidos e mais propensos à fotólise. Enquanto, aqueles com baixa 



24 
 

pressão de vapor são mais adsorvidos, mais solúveis, menos voláteis e, portanto, 

mais persistentes. 

O coeficiente de partição octanol-água (Kow) indica a afinidade do herbicida 

por meios aquosos ou orgânicos (Day et al., 1998). Herbicidas lipofílicos (alto Kow) 

têm maior afinidade por compostos orgânicos e maior adsorção à matéria orgânica ou 

ceras nas folhas. Geralmente, herbicidas apolares/hidrofóbicos (Kow > 10.000) 

adsorvem-se mais à fração orgânica do solo, enquanto herbicidas polares/hidrofílicos 

(Kow < 10) têm maior afinidade pela fração mineral (Silva et al., 2007). 

A constante de ionização (pKa ou pKb) descreve a reatividade e interação dos 

herbicidas com o solo. Herbicidas podem ser classificados como ionizáveis ou não 

ionizáveis (neutros). Herbicidas ácidos ou básicos fracos podem ser parcialmente 

ionizados em solução aquosa, dependendo do pH do solo (Mendes et al., 2023). 

Em solos agronômicos (pH > pKa), herbicidas ácidos fracos são encontrados 

principalmente na forma aniônica (carga negativa), enquanto herbicidas básicos 

fracos estão na forma neutra (sem carga). Herbicidas aniônicos têm baixa sorção ao 

solo e maior potencial de lixiviação, enquanto herbicidas básicos em solos ácidos (pH 

< pKb) são mais adsorvidos e têm menor lixiviação (Mendes et al., 2023). 

A meia-vida (t1/2) é o tempo necessário para dissipação da metade das 

moléculas do herbicida via degradação, metabolização ou formação de resíduos 

ligados (Silva et al., 2007). A meia-vida também será dependente das características 

do solo como, textura, pH e, teor de matéria orgânica, população microbiana, do 

ambiente como a radiação, temperatura e, precipitação e das práticas culturais.  

A sorção dos herbicidas é avaliada pelo coeficiente de sorção (Kd), que 

representa a relação entre a concentração de herbicida sorvido ao solo (Cs) e a 

concentração em solução (Ce) após equilíbrio (Weber et al., 2004). Este coeficiente 

geralmente é normalizado em relação a quantidade de carbono orgânico no solo (Koc), 

indicando a tendência de sorção do herbicida pela matéria orgânica do solo e portanto, 

mais específico para o tipo de solo. 

 

2.2.2 Características físico-químicas dos solos 

 

Os processos de sorção e dessorção de herbicidas são significativamente 

influenciados pelas características do solo, como pH, composição de areia, silte e 

argila, conteúdo de matéria orgânica e capacidade de troca catiônica (CTC) (Oliveira; 



25 
 

Brighenti, 2011; Silva et al., 2007). De acordo com Mancuso et al. (2011), solos 

tropicais tendem a apresentar maior adsorção de herbicidas catiônicos. Isso ocorre 

porque esses solos possuem altos teores de matéria orgânica, óxidos de ferro e 

alumínio, além de uma predominância de minerais de argila do tipo 1:1, resultado do 

avançado processo de intemperização. 

Os ácidos fúlvicos e húmicos aumentam a superfície específica do solo e 

possuem grupos funcionais que interagem com herbicidas. Essas interações podem 

reduzir a atividade biológica e a mobilidade dos herbicidas no solo (De Paolis; 

Kukkonen, 1997). Em sistemas onde se mantêm uma cobertura morta na superfície 

do solo, pode ocorrer alteração na dinâmica de herbicidas pré-emergentes de acordo 

com a interceptação, retenção e degradação desses herbicidas. Bem como, 

dependentes de precipitação para carregamento até o solo e consequente controle de 

plantas daninhas (Matos et al., 2016). 

A textura do solo influencia diversos fatores, como os teores de matéria 

orgânica, aeração, temperatura, umidade e infiltração. Solos de textura fina tendem a 

diminuir a taxa de degradação dos herbicidas, enquanto solos de textura grossa 

possuem um maior potencial para lixiviação (Dharumarajan; Sankar; Arun, 2008; 

Sondhia, 2007). 

A umidade do solo apresenta papel importante na retenção e persistência dos 

herbicidas, reduzindo a hidrofobicidade dos compostos orgânicos (Ochsner et al., 

2006). Conforme observado por Gupta et al. (2012), a mobilidade e a persistência do 

herbicida 2,4-D variam de acordo com o teor de água no solo. Além disso, a 

temperatura do solo geralmente está inversamente relacionada à persistência dos 

herbicidas. Sireesha (2011) verificou que temperaturas mais altas aumentam a 

degradação dos herbicidas. 

O pH do solo exerce um papel importante na persistência de herbicidas, 

influenciando-a de diversas maneiras. Em alguns casos, um pH mais elevado pode 

prolongar a persistência do herbicida (Brar et al., 2006). Já em outros, o efeito oposto 

é observado, com pH mais baixo resultando em maior persistência (Grey et al., 1997). 

Essa variação se deve à adsorção dos herbicidas pelas partículas do solo, que 

é influenciada pelo pH. Quando o pH do solo se aproxima do pH do herbicida, a 

retenção do herbicida é maximizada, reduzindo a lixiviação. Isso se deve à adsorção 

do herbicida às partículas do solo presentes na superfície, além da degradação 

acelerada por microrganismos que lá habitam. Vale ressaltar que a maior parte dos 



26 
 

herbicidas aplicados se concentra na superfície do solo, onde a atividade 

microbiológica é mais intensa. Uma vez que, as populações de microrganismos são 

mais abundantes na camada superficial do solo, especialmente em sistemas 

conservacionistas de agricultura (Kabir, 2005). 

 

2.2.3  Processos de retenção, transporte e transformação 

 

Os herbicidas podem estar sujeitos a diferentes processos sendo eles, 

processos de retenção que envolvem sorção, transporte e, transformação. Tais 

processos estão interligados e normalmente interagem entre si, resultando na 

dinâmica dos herbicidas no ambiente.   

A sorção é a habilidade de retenção de herbicidas pela fase sólida do solo. Em 

geral, o processo de sorção engloba os mecanismos de precipitação, absorção e a 

adsorção (Oliveira; Brighenti 2011). A precipitação ocorre a partir da formação de 

precipitados entre as moléculas de herbicida e as partículas argilominerais, formando 

uma fase sólida denominado resíduo ligado. A absorção das moléculas pode ser feita 

tanto pelas plantas quanto pelos microrganismos. A adsorção é o processo de 

retenção das moléculas do herbicida na superfície dos coloides do solo (Weber; 

Wilkerson; Reinhardt 2004). 

Este processo é reversível e o retorno das moléculas para a solução do solo 

denomina-se dessorção. A intensidade desse processo depende das características 

do solo e do herbicida (Bonfleur; Barizon; Mendes, 2022).  

O transporte das moléculas de herbicida ocorre via escorrimento superficial, 

lixiviação, volatilização e deriva (Mendes et al 2023). A intensidade é regida pela 

capacidade de adsorção e dessorção dos produtos, o pH e teor de água do solo; o 

período e a intensidade da chuva ou irrigação após a aplicação; o manejo do solo, 

entre outros. 

Para atingir as plântulas em germinação e consequente controle das espécies, 

a incorporação dos herbicidas no solo ocorre primariamente através da lixiviação. No 

entanto, quando esse processo ocorre excessivamente, os herbicidas apresentam 

reduzido desempenho e ainda podem ser carregados para camadas mais profundas 

ocasionando contaminação do lençol freático (Velini, 1992). 

A deriva de herbicidas, principalmente auxinas sintéticas, tem ganhado 

destaque devido à liberação de cultivares geneticamente modificadas de milho, soja 



27 
 

e algodão resistentes ao 2,4-D e dicamba, resultando no aumento do uso desses 

produtos. A deriva de 2,4-D e dicamba pode resultar em perdas quantitativas e 

qualitativas na produção de culturas sensíveis plantadas em áreas adjacentes a 

eventos transgênicos que utilizam esses herbicidas. O uso de pontas de pulverização 

adequadas, volume de aplicação, aplicação nas condições ambientais recomendadas 

e uso de adjuvantes para redução de deriva e volatilização têm sido alternativas para 

evitar efeitos adversos fora do alvo (Brochado et al., 2021; Carbonari et al. 2022b). 

Os processos de transformação das moléculas no solo e na água são 

decorrentes da degradação dos herbicidas em compostos secundários, até a 

completa mineralização determinando sua persistência nos solos. Na presença de 

oxigênio os herbicidas são mineralizados em CO2 e água e na ausência, são 

mineralizados na forma de CH4, CO2 e água (OECD 2002). A população microbiana 

encontra-se nas camadas superficiais do solo, onde o conteúdo de matéria orgânica 

é maior, e quantidades adequadas dos componentes solo, água e ar (Gebler; 

Spadotto, 2008). Portanto, dependendo da disponibilidade de oxigênio e intensidade 

de lixiviação haverá alteração na velocidade de degradação e persistência dos 

herbicidas no solo. 

A fotodegradação, por um lado, pode ser vantajosa, pois reduz a persistência 

excessiva dos resíduos químicos, diminuindo o risco de contaminação ambiental. 

Como também pode ser prejudicial quando ocorre rapidamente após a aplicação do 

herbicida, ocasionando perda de eficácia no controle de plantas daninhas. Essa 

situação é particularmente preocupante para herbicidas de ação rápida que se 

decompõem na camada superior de 3 mm do solo. Nesses casos, a incorporação ao 

solo no momento da aplicação é crucial para garantir a efetividade do produto, 

minimizando o impacto da fotodegradação (Monquero; Silva, 2021).



28 
 

3  MATERIAL E MÉTODOS 

 

3.1  Experimento I- Efeito dos herbicidas dicamba e 2,4-D na germinação de 

sementes de plantas daninhas 

 

O experimento foi conduzido no Núcleo de Pesquisas Avançadas em Matologia 

(NUPAM), na Universidade Estadual Paulista (UNESP), da Faculdade de Ciências 

Agronômicas (FCA), Botucatu-SP durante os anos de 2021 e 2022. 

As espécies daninhas da família Poaceae utilizadas foram Urochloa 

decumbens (U. decumbens), Digitaria insularis (TRCIN) e Eleusine indica (ELEIN) 

além das espécies eudicotiledôneas Amaranthus hybridus (AMACH), Ipomoea 

grandifolia (IAQGR) e Distimake aegyptius (CONAE). As sementes foram mantidas 

em incubadora BOD (Biochemical Oxygen Demand) e submetidas as concentrações 

0; 0,5; 1; 5 e 10 ppm de dicamba (Atectra®) e 2,4-D (DMA® 860 BR). Tais 

concentrações foram escolhidas levando-se em consideração uma aplicação da dose 

média recomendada em bula disponível em uma camada de solo de 10 cm com 

densidade média de 1,25 g cm³ e capacidade de retenção de água de 20%. As 

sementes de IAQGR e CONAE foram tratadas com StandakTop® 

(piraclostrobina+tiofanato-metílico+fipronil) e Carbendazim® (Carbendazim) a 500 e 

100 mL por 100Kg semente, respectivamente.  

Os experimentos foram conduzidos em duplicata sob delineamento 

inteiramente casualizado em fatorial duplo 5 x 2, considerando as concentrações e 

herbicidas como fatores. As unidades experimentais foram constituídas de duzentas 

(200) sementes de cada espécie distribuídas em quatro (4) repetições em recipientes 

do tipo gerbox. As sementes foram alocadas sob duas folhas de papel germitest 

embebidas com a solução herbicida em três vezes a massa do papel. As amostras 

permaneceram em temperatura de 25/20ºC (dia/noite) e fotoperíodo de 16/8h 

(dia/noite). 

A germinação em relação a testemunha (%), sementes deformadas em 

porcentagem das plântulas germinadas (consideradas plantas mortas ou com 

emissão de duas partes aéreas ou raízes), o comprimento de parte aérea e raízes 

(dadas em porcentagem da testemunha) e a descrição dos efeitos fitotóxicos foram 

contabilizados aos 7 e 14 dias após instalação. Foram mensuradas aleatoriamente 

seis plântulas por repetição. 



29 
 

Os dados foram submetidos a análise de variância e quando significativos as 

médias foram comparadas pelo teste LSD a 5% de probabilidade, realizadas no 

ambiente R (R Core Team, 2016). 

 

3.2 Experimento II- Sorção e disponibilidade de herbicidas auxínicos em solos 

com características distintas 

 

O experimento foi realizado no Núcleo de Pesquisas Avançadas em Matologia 

(NUPAM), na Universidade Estadual Paulista (UNESP), da Faculdade de Ciências 

Agronômicas (FCA), Botucatu-SP durante o ano de 2022. 

O experimento foi conduzido em fatorial duplo 4 x 39 com 4 repetições e 

inteiramente casualizado em duplicata. O fator A foi constituído dos herbicidas 

picloram, triclopyr, aminopyralid e 2,4-D (Tabela 1) e o Fator B constituído pelos 

diferentes solos (Tabela 2 e 3). 

 

Tabela 1- Características físico-químicas dos herbicidas picloram, triclopyr, 

aminopyralid e 2,4-D utilizadas no experimento de sorção 

Herbicida 
Massa 

molecular 

Solubilidade 
em água (mg 

L-1) 

log 
Kow 

Densidade 
(g mL-1) 

pKa Classificação 

Picloram 241,46 488 -1,92 1,81 1,8 Ácido forte 

Triclopyr 256,47 8100 -0,45 1,3 3,97 Ácido fraco 

Aminopyralid 207,03 2480 -2,87 1,76 2,56 Ácido forte 

2,4-D 266,12 24300 -0.82 1,565 2,8 Ácido fraco 

Fonte: PPDB (2024) 

 

Os solos foram secos em estufa com circulação forçada de ar a 25ºC, 

peneirados e 7 g de solo foram pesados (variação de 0,0000 a 0,0010) em cartuchos 

plásticos de capacidade volumétrica de 10 mL com dois filtros de fibra de vidro para 

retenção de partículas de solo e acoplados a um tubo coletor de 3 mL do tipo 

eppendorf  (adaptado de Carbonari, 2009). 

As amostras de solo foram saturadas com uma solução preparada com os 

padrões analíticos dos herbicidas na concentração de 200 ppb. A saturação ocorreu-

se de forma que todo o solo recebesse uma quantidade de solução sem ocorrer o 

extravasamento para o tubo coletor determinada de forma visual. A quantidade variou 

de 1,6 a 3,5 mL para os solos de textura média e siltosos, e, de 1,4 a 4 mL para os 



30 
 

argilosos e arenosos. Após a saturação os solos foram cobertos por filme plástico PVC 

mantidos em repouso durante 24h em ambiente escuro e temperatura ambiente (21ºC 

± 3ºC). 

A extração da solução do solo foi realizada por meio da centrifugação dos 

cartuchos a 5500 rpm, a 20°C por 3 minutos e 30 segundos (centrífuga Hettich 

Zentrifugen). O pH da solução presente no coletor foi medida utilizando tiras universais 

de pH (Kasvi) e o filtrado com seringas plásticas de 3 ml equipadas com filtro Millex - 

HV (membrana de PVDF 0,45 μm e 13,0 mm diâmetro) em frascos do tipo “vial” de 

cor âmbar de 2,0 mL. Os vials foram armazenados em freezer (-20 ± 3ºC) até o 

momento da quantificação dos herbicidas por cromatografia e espectrometria de 

massas (Figura 1). 

 

Figura 1- Solos utilizados no ensaio de sorção (A), saturação dos solos nos 

cartuchos com solução padrão dos herbicidas a 200 ppb (B,C), centrifugação 

das amostras de solo (D), medição do pH da solução extraída (F), filtragem das 

amostras (G) e  quantificação dos herbicidas por cromatografia líquida de alta 

performance (HPLC) e espectrometria de massas (H) 

 

Fonte: Ivana Santos Moisinho (2022) 

 

 

 



31 
 

Tabela 2- Características químicas das amostras de solo utilizadas no 

experimento 

Nº CIDADE ESTADO 
M.O. pH P resina K Ca Mg Al ³ H H + Al ³ S.B. C.T.C m% V% 

g dm-3 CaCl2 mg dm-3 mmolc dm-3   

1 Ibirubá RS 31,7 4,4 143,3 3,9 27,7 10,5 19,3 69,2 88,5 42,2 130,6 31,4 32,3 
2 Garibaldi RS 50,0 6,9 259,0 17,8 376,2 42,4 0,0 15,6 15,6 436,4 451,9 0,0 96,6 
3 Ganguçu RS 16,2 5,1 5,7 1,1 31,3 13,9 0,0 27,1 27,1 46,3 73,4 0,0 63,0 
4 São Vicente do Sul/Mata RS 11,4 5,8 13,4 0,9 52,8 8,7 0,0 12,2 12,2 62,4 74,6 0,0 83,6 
5 São Pedro do Sul RS 10,4 4,0 0,6 1,3 17,2 8,0 60,5 104,8 165,3 26,5 191,8 69,5 13,8 
6 Santiago RS 29,6 4,4 0,6 2,1 24,8 6,4 19,9 54,5 74,4 33,2 107,6 37,5 30,9 
7 Bossoroca RS 24,9 4,0 13,4 1,8 13,3 6,2 23,3 62,0 85,3 21,3 106,6 52,3 20,0 
8 São Luiz Gonzaga RS 14,1 6,5 39,5 3,2 174,9 44,1 0,0 17,5 17,5 222,1 239,6 0,0 92,7 
9 São Luiz Gonzaga RS 13,9 6,1 48,9 3,0 93,2 39,1 0,0 17,8 17,8 135,3 153,1 0,0 88,4 

10 Arapoti PR 22,4 4,0 10,5 1,2 8,0 3,1 6,9  46,1 12,3 58,4  21,1 
11 Castro PR 24,9 4,4 6,2 1,9 23,1 6,3 9,4  67,2 31,3 98,5  31,7 
12 Carambeí PR 23,4 4,4 13,0 2,2 15,9 7,7 5,6  46,1 25,8 71,9  35,9 
13 Tibagi PR 71,4 7,1 45,3 3,9 276,1 136,9 0,0  10,8 416,9 427,7  97,5 
14 Ponta Grossa PR 84,3 5,1 38,5 3,7 82,6 31,5 0,0  80,4 117,9 198,3  59,5 
15 Ponta Grossa PR 32,3 4,0 11,4 1,6 6,9 5,2 18,8  73,1 13,7 86,8  15,7 
16 Castro PR 59,5 5,3 89,9 1,5 115,0 6,7 0,0  39,8 123,2 163,0  75,6 
17 Castro PR 11,0 5,1 6,2 2,1 13,4 3,3 0,0  15,3 18,8 34,0  55,1 
18 Rinópolis SP 49,1 6,2 96,9 9,5 194,5 45,6 0,0  22,8 249,6 272,4  91,6 
19 Rinópolis SP 16,4 4,7 53,6 3,0 20,3 4,9 2,5  23,0 28,2 51,2  55,0 
20 Marechal Candido Rondon PR 26,7 6,8 155,6 7,9 185,8 82,7 0,0  12,6 276,4 289,0  95,6 
21 São Manuel SP 10,6 7,2 67,0 3,0 71,6 52,8 0,0 7,9 7,9 127,4 135,3 0,0 94,1 
22 São Manuel SP 10,4 5,8 5,9 1,1 19,7 10,0 0,0 11,6 11,6 30,7 42,3 0,0 72,6 
23 São Manuel SP 4,1 4,4 51,5 2,0 9,4 2,9 10,2 7,5 17,7 14,4 32,1 41,6 44,7 
24 Lençois Paulista SP 18,7 6,3 29,8 0,8 51,3 20,2 0,0 11,6 11,6 72,3 83,9 0,0 86,2 
25 Aral Moreira MS 29,2 5,6 25,6 2,0 60,8 11,1 0,0 28,2 28,2 73,9 102,0 0,0 72,4 
26 Paranapanema SP 19,2 4,9 86,9 11,8 79,1 27,1 4,3 61,9 66,3 117,9 184,2 3,6 64,0 
27 Paranapanema SP 34,0 5,1 74,7 5,4 65,7 30,8 0,0 43,8 43,8 101,9 145,7 0,0 69,9 
28 Paranapanema SP 20,7 5,6 109,8 2,9 110,0 34,1 0,0 37,0 37,0 147,0 184,0 0,0 79,9 
29 Taquarituba SP 40,6 5,6 99,6 7,1 99,2 47,1 0,0 38,6 38,6 153,3 191,9 0,0 79,9 
30 Itaí SP 47,9 6,1 45,1 2,6 210,9 36,5 0,0 24,3 24,3 250,0 274,3 0,0 91,1 
31 Piraju SP 11,9 5,6 61,3 1,1 36,7 29,5 0,0 15,8 15,8 67,3 83,1 0,0 81,0 
32 Jaú SP 36,5 7,1 93,6 8,0 220,2 72,6 0,0 12,5 12,5 300,7 313,2 0,0 96,0 
33 Salto Grande SP 18,9 7,3 110,9 6,9 1358,0 638,5 0,0 10,3 10,3 2003,4 2013,7 0,0 99,5 
34 Ourinhos SP 29,6 5,2 59,8 5,5 50,4 25,1 0,0 37,0 37,0 80,9 117,9 0,0 68,6 
35 Canitar SP 24,9 6,1 84,5 6,6 84,8 24,2 0,0 21,2 21,2 115,5 136,7 0,0 84,5 
36 Riolândia SP 32,8 5,4 40,0 5,2 56,2 19,3 0,0 36,6 36,6 80,7 117,3 0,0 68,8 
37 Jesuítas PR 38,1 6,0 374,5 11,6 276,0 39,0 0,0 27,3 27,3 326,6 353,8 0,0 92,3 
38 São Manuel SP 9,1 5,9 15,1 0,9 22,0 13,0 0,0 12,5 12,5 35,8 48,3 0,0 74,0 
39 Botucatu SP 19,6 4,1 6,2 1,3 6,9 4,8 10,9 61,6 72,5 12,9 85,4 45,7 15,1 

 

Nº CIDADE ESTADO 
m% V% S *B Cu Fe Mn Zn 

% mg dm-3 

1 Ibirubá RS 31,4 32,3 15,4 0,3 6,8 36,0 85,2 4,3 
2 Garibaldi RS 0,0 96,6 35,7 0,5 16,2 131,0 28,2 7,6 
3 Ganguçu RS 0,0 63,0 3,3 0,2 0,8 54,8 25,9 1,8 
4 São Vicente do Sul/Mata RS 0,0 83,6 5,0 0,1 1,1 25,5 13,6 0,6 
5 São Pedro do Sul RS 69,5 13,8 3,6 0,2 1,0 100,5 8,7 0,4 
6 Santiago RS 37,5 30,9 3,8 0,2 1,6 54,3 45,4 0,7 
7 Bossoroca RS 52,3 20,0 22,6 0,2 6,8 16,0 106,1 1,5 
8 São Luiz Gonzaga RS 0,0 92,7 2,3 0,2 6,1 15,3 45,7 0,7 
9 São Luiz Gonzaga RS 0,0 88,4 11,8 0,2 4,6 15,5 29,4 1,7 

10 Arapoti PR  21,1 0,7 0,1 0,6 184,0 10,0 1,0 
11 Castro PR  31,7 42,3 0,1 2,2 128,2 2,4 0,7 
12 Carambeí PR  35,9 8,0 0,1 1,9 160,4 2,9 2,5 
13 Tibagi PR  97,5 16,2 0,5 0,6 25,8 10,9 1,3 
14 Ponta Grossa PR  59,5 24,8 0,2 4,4 169,6 8,0 1,5 
15 Ponta Grossa PR  15,7 4,8 0,1 1,5 228,4 4,9 2,7 
16 Castro PR  75,6 33,2 0,1 4,9 257,1 27,6 3,3 
17 Castro PR  55,1 5,2 0,1 0,9 34,2 10,0 1,0 
18 Rinópolis SP  91,6 12,2 0,3 2,6 66,7 7,1 0,7 
19 Rinópolis SP  55,0 10,5 0,2 1,2 99,6 8,7 3,6 
20 Marechal Candido Rondon PR  95,6 13,8 0,3 6,4 3,8 15,3 1,2 
21 São Manuel SP 0,0 94,1 6,0 0,1 2,1 5,3 13,9 4,1 
22 São Manuel SP 0,0 72,6 7,4 0,1 1,0 16,3 5,7 0,5 
23 São Manuel SP 41,6 44,7 14,5 0,1 1,2 10,3 17,0 0,9 
24 Lençois Paulista SP 0,0 86,2 9,2 0,1 0,8 34,3 2,8 0,3 
25 Aral Moreira MS 0,0 72,4 30,6 0,2 5,4 24,4 12,3 4,7 
26 Paranapanema SP 3,6 64,0 35,0 0,4 1,3 111,2 42,7 2,5 
27 Paranapanema SP 0,0 69,9 19,4 0,4 1,3 71,0 13,2 2,4 
28 Paranapanema SP 0,0 79,9 112,0 0,3 0,8 33,6 5,5 2,5 
29 Taquarituba SP 0,0 79,9 20,3 0,3 3,2 34,8 9,7 4,4 
30 Itaí SP 0,0 91,1 8,4 0,3 2,0 24,4 4,7 2,2 
31 Piraju SP 0,0 81,0 1,5 0,1 0,9 18,6 2,3 0,8 
32 Jaú SP 0,0 96,0 1,9 0,4 8,1 6,8 26,7 2,3 
33 Salto Grande SP 0,0 99,5 20,8 0,1 4,7 6,6 8,5 1,9 
34 Ourinhos SP 0,0 68,6 23,9 0,3 10,5 17,2 75,0 4,3 
35 Canitar SP 0,0 84,5 12,8 0,2 10,6 16,2 58,3 2,6 
36 Riolândia SP 0,0 68,8 3,0 0,2 13,6 20,2 56,7 5,2 
37 Jesuítas PR 0,0 92,3 30,0 0,5 32,6 21,8 141,7 32,6 
38 São Manuel SP 0,0 74,0 3,6 0,1 1,0 19,4 12,0 2,0 
39 Botucatu SP 45,7 15,1 21,0 0,2 12,8 19,2 61,7 0,9 

 

 

 

 



32 
 

Tabela 2- Características químicas das amostras de solo utilizadas no 

experimento continuação 

Nº CIDADE ESTADO 

K na CTC Ca na CTC Mg na CTC Al na CTC H na CTC Ca/Mg Ca/K Mg/K COT 

% 

1 Ibirubá RS 3,0 21,2 8,0 14,8 52,9 2,6 7,1 2,7 18,4 

2 Garibaldi RS 3,9 83,2 9,4 0,0 3,4 8,9 21,1 2,4 29,0 

3 Ganguçu RS 1,5 42,6 18,9 0,0 37,0 2,3 27,7 12,3 9,4 

4 São Vicente do Sul/Mata RS 1,2 70,8 11,7 0,0 16,4 6,1 59,3 9,8 6,6 

5 São Pedro do Sul RS 0,7 9,0 4,2 31,5 54,6 2,2 12,9 6,0 6,0 

6 Santiago RS 1,9 23,0 5,9 18,5 50,7 3,9 11,8 3,0 17,2 

7 Bossoroca RS 1,7 12,5 5,8 21,9 58,2 2,2 7,4 3,4 14,5 

8 São Luiz Gonzaga RS 1,3 73,0 18,4 0,0 7,3 4,0 54,8 13,8 8,2 

9 São Luiz Gonzaga RS 2,0 60,9 25,5 0,0 11,6 2,4 31,0 13,0 8,1 

10 Arapoti PR          

11 Castro PR          

12 Carambeí PR          

13 Tibagi PR          

14 Ponta Grossa PR          

15 Ponta Grossa PR          

16 Castro PR          

17 Castro PR          

18 Rinópolis SP          

19 Rinópolis SP          

20 Marechal Candido Rondon PR          

21 São Manuel SP 2,2 52,9 39,1 0,0 5,9 1,4 24,1 17,8 6,1 

22 São Manuel SP 2,5 46,5 23,7 0,0 27,4 2,0 18,5 9,4 6,0 

23 São Manuel SP 6,4 29,3 9,1 31,9 23,4 3,2 4,6 1,4 2,4 

24 Lençois Paulista SP 1,0 61,1 24,1 0,0 13,8 2,5 64,1 25,3 10,8 

25 Aral Moreira MS 1,9 59,6 10,9 0,0 27,6 5,5 31,2 5,7 17,0 

26 Paranapanema SP 6,4 42,9 14,7 2,4 33,6 2,9 6,7 2,3 11,1 

27 Paranapanema SP 3,7 45,1 21,1 0,0 30,1 2,1 12,1 5,7 19,8 

28 Paranapanema SP 1,6 59,8 18,5 0,0 20,1 3,2 38,5 11,9 12,1 

29 Taquarituba SP 3,7 51,7 24,5 0,0 20,1 2,1 14,1 6,7 23,6 

30 Itaí SP 0,9 76,9 13,3 0,0 8,9 5,8 82,1 14,2 27,8 

31 Piraju SP 1,3 44,2 35,5 0,0 19,0 1,2 33,4 26,8 6,9 

32 Jaú SP 2,5 70,3 23,2 0,0 4,0 3,0 27,7 9,1 21,2 

33 Salto Grande SP 0,3 67,4 31,7 0,0 0,5 2,1 196,8 92,5 11,0 

34 Ourinhos SP 4,7 42,7 21,2 0,0 31,4 2,0 9,2 4,6 17,2 

35 Canitar SP 4,8 62,0 17,7 0,0 15,5 3,5 12,9 3,7 14,4 

36 Riolândia SP 4,4 47,9 16,5 0,0 31,2 2,9 10,9 3,7 19,1 

37 Jesuítas PR 3,3 78,0 11,0 0,0 7,7 7,1 23,8 3,4 22,1 

38 São Manuel SP 1,8 45,4 26,8 0,0 26,0 1,7 25,8 15,2 5,3 

39 Botucatu SP 1,5 8,0 5,6 12,7 72,1 1,4 5,4 3,8 11,4 



33 
 

Tabela 3- Características granulométricas das amostras de solo utilizadas no 

experimento 

Nº CIDADE ESTADO 
Areia total Argila Silte Textura 

        

1 Ibirubá RS 209 579 212 Argiloso 

2 Garibaldi RS 82 414 504 Siltoso 

3 Ganguçu RS 657 145 198 Média 

4 São Vicente Do Sul/Mata RS 719 94 187 Arenoso 

5 São Pedro Do Sul RS 442 336 222 Média 

6 Santiago RS 171 454 375 Argiloso 

7 Bossoroca RS 77 603 320 Argiloso 

8 São Luiz Gonzaga RS 411 266 323 Média 

9 São Luiz Gonzaga RS 286 418 296 Argiloso 

10 Arapoti PR 872 79 49 Arenoso 

11 Castro PR 527 263 211 Média 

12 Carambeí PR 768 143 90 Média 

13 Tibagi PR 598 125 276 Média 

14 Ponta Grossa PR 225 297 480 Média 

15 Ponta Grossa PR 761 150 89 Média 

16 Castro PR 105 373 523 Siltoso 

17 Castro PR 895 47 56 Arenoso 

18 Rinópolis SP 226 372 403 Argiloso 

19 Rinópolis SP 862 64 73 Arenoso 

20 Marechal Candido Rondon PR 106 518 376 Argiloso 

21 São Manuel SP 825 118 56 Arenoso 

22 São Manuel SP 882 77 41 Arenoso 

23 São Manuel SP 862 117 21 Arenoso 

24 Lençois Paulista SP 832 143 25 Arenoso 

25 Aral Moreira MS 346 531 123 Argilosa 

26 Paranapanema SP 75 404 521 Siltosa 

27 Paranapanema SP 138 448 414 Argilosa 

28 Paranapanema SP 177 597 227 Argilosa 

29 Taquarituba SP 148 603 249 Muito Argilosa 

30 Itaí SP 288 422 290 Argilosa 

31 Piraju SP 855 89 56 Arenosa 

32 Jaú SP 248 401 350 Argilosa 

33 Salto Grande SP 348 308 344 Média 

34 Ourinhos SP 274 523 203 Argilosa 

35 Canitar SP 76 499 426 Argilosa 

36 Riolândia SP 288 530 183 Argilosa 

37 Jesuítas PR 192 461 347 Argilosa 

38 São Manuel SP 386 69 544 Siltosa 

39 Botucatu SP 254 555 190 Argilosa 

 

 

 

 

 

 

 



34 
 

A quantificação dos herbicidas foi realizada em um sistema LC-MS/MS descrito 

por Gomes (2011), composto por um Cromatógrafo Líquido de Alta Performance (HPLC), 

Shimadzu, modelo Prominence UFLC. Equipado com duas bombas LC-20AD, injetor 

automático SIL-20AC, degazeificador DGU-20A5, com sistema controlador CBM-20A e 

forno CTO-20AC. 

O HPLC foi acoplado ao espectrômetro de massas 3200 Q TRAP (Applied 

Biosystems), híbrido triplo quadruplo, que apresenta alta sensibilidade e 

reprodutibilidade, com baixo ruído e medição simultânea de vários compostos, bem 

como, mantém uma relação constante entre a intensidade do sinal (área do pico 

cromatográfico) e a concentração dos diferentes compostos expressa em unidades 

molares. Constituído por coluna de Synergi 2.5μ Hydro-RP 100Å, dimensões 50 x 4,6 

mm e o volume de injeção foi de 20 μL (Figura 1H). As condições cromatográficas 

utilizadas para a quantificação dos herbicidas estão apresentadas na tabela 4.  

 

Tabela 4- Condições cromatográficas utilizadas para a quantificação dos 

compostos 

Fase  Fase (A) Água com 0,1% ácido fórmico 
  Fase (B) Metanol com 0,1% ácido fórmico 

Gradiente (min) 0-1 10% Fase (B) 
 1-3 95% Fase (B) 
 3-6 95% Fase (B) 
 6-8 10% Fase (B) 
 8-10 10% Fase (B) 

Fluxo  0,6 mL min-1 

 

A massa molecular e os fragmentos de cada molécula estão apresentados na 

tabela 5. A detecção dos herbicidas está representada pelas áreas de picos dos 

cromatogramas, onde verificou-se uma boa resposta do detector. O tempo de retenção 

na coluna cromatográfica para os diferentes herbicidas, foi: 2,4-D (4,48 min), picloram 

(3,84), triclopyr (4,57 min) e, aminopyralid (2,66 min).  

 

 

 



35 
 

Tabela 5- Massa molecular e fragmentos do herbicida e metabólitos analisados 

Composto Massa molecular Íon secundários (Fragmentos) 

Picloram 239 

195,0 

122,9 

158,7 

Triclopyr 256 

197,7 

219,9 

217,6 

Aminopyralid 205 

160,8 

124,9 

89,0 

2,4-D 219 

160,9 

124,9 

89,0 

 

Os cromatogramas dos padrões analíticos dos herbicidas em teste na 

concentração de 25 ng mL-1 foram demonstrados na figura 2 e 3. Os modelos de 

regressão linear utilizados mostraram bons ajustes para as concentrações dos herbicidas 

na solução do solo, as linhas de tendência foram apresentadas quando o coeficiente de 

correlação (R2) observado foi superior a 0,98. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



36 
 

Figura 2- Cromatogramas do aminopyralid (A) e 2,4-D (B) com os respectivos 

fragmentos na concentração de 25 ng mL-1 

(A)  

 

(B)  

 

 

 

XIC of -MRM (12 pairs): Exp 1, 204.874/160.800 Da ID: Aminopyralid_Neg from Sample 28 (... Max. 1.0e5 cps.

0.0 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 6.0 7.0 8.0 9.0
Time, min

0.00

1.00e4

2.00e4

3.00e4

4.00e4

5.00e4

6.00e4

7.00e4

8.00e4

9.00e4

1.00e5

In
te

n
s
it
y
, 

c
p
s

2.66

7.91

8.626.975.39

XIC of -MRM (12 pairs): Exp 1, 218.813/160.900 Da ID: 2.4D from Sample 28 (25ppb) of Iva... Max. 7.9e5 cps.

0.0 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 6.0 7.0 8.0 9.0
Time, min

0.0

5.0e4

1.0e5

1.5e5

2.0e5

2.5e5

3.0e5

3.5e5

4.0e5

4.5e5

5.0e5

5.5e5

6.0e5

6.5e5

7.0e5

7.5e5

7.9e5

In
te

n
s
it
y
, 

c
p
s

4.48



37 
 

Figura 3- Cromatogramas do picloram (A) e triclopyr (B) com os respectivos 

fragmentos na concentração de 25 ng mL-1 

(A) 

 

(B) 

 

 

O modelo linear utilizado nas equações das curvas analíticas obtidas para os 

herbicidas foi ajustado através do modelo linear y= ax+b com um coeficiente de 

correlação de 0,99 para descrever o relacionamento entre a resposta do detector (y) e a 

XIC of -MRM (12 pairs): Exp 1, 238.777/195.000 Da ID: Picloram from Sample 28 (25ppb) of... Max. 2.1e5 cps.

0.0 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 6.0 7.0 8.0 9.0
Time, min

0.0

2.0e4

4.0e4

6.0e4

8.0e4

1.0e5

1.2e5

1.4e5

1.6e5

1.8e5

2.0e5

2.1e5

In
te

n
s
it
y
, 

c
p
s

4.57

3.84

XIC of -MRM (12 pairs): Exp 1, 255.774/197.700 Da ID: Triclopyr from Sample 28 (25ppb) of ... Max. 5.5e5 cps.

0.0 1.0 2.0 3.0 4.0 5.0 6.0 7.0 8.0 9.0
Time, min

0.0

5.0e4

1.0e5

1.5e5

2.0e5

2.5e5

3.0e5

3.5e5

4.0e5

4.5e5

5.0e5

5.5e5

In
te

n
s
it
y
, 

c
p
s

4.57



38 
 

concentração (x) do herbicida (Tabela 6). Onde, b é a intersecção da curva analítica e a 

é a inclinação da reta. As curvas analíticas e as faixas de concentração para cada 

herbicida analisado estão representadas na tabela 6. Para a quantificação do composto, 

é necessário monitorar diferentes íons moleculares e transições iônicas provenientes da 

fragmentação dos analitos, garantindo a sensibilidade e a especificidade necessária para 

a quantificação (Queiroga, 2014). 

 

Tabela 6- Curvas analíticas do herbicida e seus respectivos coeficientes de 

determinação 

Composto 
Parâmetros das curvas analíticas Intervalo linear 

(ng mL-1) a b R R2 

Aminopyralid 2,82E+4 -4,01E+3 0,9900 0,9801 0,3906 à 100 

Picloram 2,73E+4 1,70E+3 0,9993 0,9986 0,78125 à 100 

Triclopyr 5,37E+4 3,83E+3 0,9979 0,9958 0,0976 à 100 

2,4-D 9,85E+4 5,10E+4 0,9982 0,9964 0,1953 à 100 

 

Através da soma da massa de cada um dos herbicidas na solução foi possível 

determinar o total de cada herbicida e, assim, calcular a porcentagem de disponibilidade 

para os diferentes solos. Os procedimentos para determinar a disponibilidade dos 

herbicidas na solução do solo estão descritas nas equações 1 a 5.  

 

𝐶𝑠 =  (𝐶𝑖 − 𝐶𝑒) ∗ (
𝑉

𝑚
) 

Equação 1 

𝐾𝑑 =
𝐶𝑠

𝐶𝑒
 

Equação 2 

𝐾𝑜𝑐 =
𝐾𝑑 ∗ 100

%𝐶𝑜𝑟𝑔
 

Equação 3 

𝐴𝑑𝑠 (%) = 100 ∗  
(𝐶𝑖 − 𝐶𝑒)

𝐶𝑖
 

Equação 4 

𝐷𝑖𝑠𝑝𝑜𝑛𝑖𝑏𝑖𝑙𝑖𝑑𝑎𝑑𝑒 (%) = 100 − 𝐴𝑑𝑠 Equação 5 

 

Onde, Cs: quantidade de herbicida sorvido no solo (µg kg-1) Ci: quantidade de 

solução padrão inicialmente adicionada ao solo (µg L-1), Ce: quantidade encontrada na 

solução de equilíbrio (µg L-1), V: quantidade da solução padrão adicionada ao solo (mL), 



39 
 

m: quantidade de solo (Kg), Kd: coeficiente de sorção, Koc: coeficiente de sorção 

normalizado para o teor de carbono orgânico, Corg: teor de carbono orgânico, Ads: 

adsorção (%). 

 

Os coeficientes de sorção e disponibilidade dos herbicidas foram apresentados 

com os respectivos erros padrão, bem como demonstrados na forma de gráficos de 

correlação para comparação entre os herbicidas com os ajustes ao modelo linear, 

considerando o ponto de interseção igual a 0. 

Além disso, a disponibilidade dos herbicidas foi correlacionada com as 

características físico-químicas dos solos testados através da correlação de Pearson e 

ajustados ao modelo linear, utilizando-se o programa estatístico SigmaPlot 12.5 

 

3.3 Experimento III- Efeito dos herbicidas dicamba e 2,4-D em pré-emergência de 

plantas daninhas 

 

O experimento foi conduzido em casa de vegetação no Núcleo de Pesquisas 

Avançadas em Matologia (NUPAM), na Universidade Estadual Paulista (UNESP), da 

Faculdade de Ciências Agronômicas (FCA), Botucatu-SP durante os anos de 2022 à 

2023. 

As parcelas foram submetidas a aplicações de herbicidas em condições de pré-

emergência (Figura 4). As curvas de dose resposta foram repetidas duas vezes em  

delineamento inteiramente casualizado com cinco (4) repetições e oito (8) doses de 

dicamba (Xtendicam®) e 2,4-D (DMA® 860 BR), sendo elas, 0; 125; 250; 500; 1000; 

2000; 4000 e 8000 g e a ha-1. 

 

 

 

 

 

 



40 
 

Figura 4- Simulador de aplicação (A) e vasos após aplicação dos herbicidas 

dicamba e 2,4-D em pré-emergência de plantas daninhas 

(A) (B) 

  

Fonte: Ivana Santos Moisinho (2022)  

 

As unidades experimentais foram constituídas com as mesmas espécies utilizadas 

no experimento I, em vasos de 2L preenchidos com solo de textura média (Tabela 7). 

Foram adicionados 1; 0,5; 0,6; 0,3; 1,5; e 5 g de sementes de U. decumbens, D. insularis, 

E. indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius respectivamente. As sementes foram 

homogeneizadas nos primeiros 4 cm da camada de solo e, os vasos foram protegidos 

externamente com papel alumínio antes da aplicação dos herbicidas. 

Os tratamentos foram aplicados em simulador de pulverização com controle da 

velocidade e pressão de trabalho, constituído por uma barra de pulverização com 2 

metros de largura, com 4 pontas Teejet TTI 110.015 espaçadas em 0,5 m e posicionadas 

a 0,5 m de altura em relação à superfície das unidades experimentais. O sistema foi 

operado com velocidade de deslocamento de 3,6 km h-1, com volume de calda de 150 L 

ha-1 e pressão constante de 2 bar, pressurizado por ar comprimido. 

 

 

 



41 
 

Tabela 7- Análise química do solo utilizado para as curvas de dose resposta de 

herbicidas auxínicos em pré-emergência de plantas daninhas 

Características 2,4-D- 1ª Época Demais ensaios 

M.O. (g/dm³) 9,1 3,9 
pH 4,1 4,3 

P (mg/dm³) 0,5 0,5 
K (mmolc/dm³) 0,2 0,1 

Ca 3,7 0,5 
Mg 0,6 0,3 
Al ³ 8,8 3,1 
H 48,3 20,2 

m% 66,0 78,2 
H + Al ³ (mmolc/dm³) 57,0 23,3 

S.B. 4,5 0,9 
C.T.C. 61,5 24,2 

V% 7,3 3,6 
S (mg/dm³) 7,3 5,1 
*B (mg/dm³) 0,1 0,0 
Cu (mg/dm³) 0,6 0,2 

Fe 21,5 5,0 
Mn 0,5 0,1 
Zn 0,2 0,1 

Ca/CTC 5,9 2,1 
Mg/CTC 1,0 1,1 
K/CTC 0,4 0,4 

H+Al/CTC 92,7 96,4 
Ca/Mg 5,7 1,9 
Ca/K 15,8 4,6 
Mg/K 2,8 2,4 

 

O número de plântulas emergidas foi contabilizado aos 7, 14 e 21 dias após 

aplicação (DAA) e aos 21 DAA a parte aérea das plantas foram coletadas e secas em 

estufa com circulação forçada de ar. Os dados obtidos foram analisados em porcentagem 

em relação à testemunha. 

Os dados foram ajustados ao modelo log-logístico de 3 e 4 parâmetros (Knezevic; 

Streibig; Ritz 2007) e os casos onde se observou comportamento hormético foram 

ajustados os modelos de Brain and Cousens de 4 e 5 parâmetros (Brain; Cousens, 1988) 

em função das concentrações dos herbicidas com os respectivos intervalos de confiança, 

utilizando-se o pacote estatístico drc no ambiente R. 

 

𝑌 = 0 +
𝑑 − 0

1 + 𝑒𝑥𝑝 (𝑏(𝑙𝑜𝑔(𝑥) − 𝑙𝑜𝑔(𝑒)))
 

Log-logístico de 3 parâmetros (LL.3) 

Equação 6 



42 
 

 

𝑌 = 𝑐 +
𝑑 − 𝑐

1 + 𝑒𝑥𝑝 (𝑏(𝑙𝑜𝑔(𝑥) − 𝑙𝑜𝑔(𝑒)))
 

Log-logístico de 4 parâmetros (LL.4) 

Equação 7 

 

𝑌 = 0 +
𝑑 − 0 + 𝑓𝑥

1 + 𝑒𝑥𝑝 (𝑏(𝑙𝑜𝑔(𝑥) − 𝑙𝑜𝑔(𝑒)))
 

Modelo de hormesis 4 parâmetros (BC.4) 

Equação 8 

𝑌 = 𝑐 +
𝑑 − 𝑐 + 𝑓𝑥

1 + 𝑒𝑥𝑝 (𝑏(𝑙𝑜𝑔(𝑥) − 𝑙𝑜𝑔(𝑒)))
 

Modelo de hormesis 5 parâmetros (BC.5) 

Equação 9 

 

Onde, Y: número de plântulas ou biomassa em relação a testemunha (%), b 

inclinação da curva, c= assíntota horizontal inferior, d= assíntota horizontal superior, e= 

dose que promove redução de 50% na variável avaliada (Equação 6 e 7) ou logaritmo do 

ponto de inflexão (Equação 8 e 9) e f= tamanho do efeito hormesis. Foram também 

geradas as doses na qual promovem redução de 80% na variável avaliada, expressa pelo 

parâmetro ED80. 

 

 

  



43 
 

4 RESULTADOS E DISCUSSÃO 

 

4.1 Experimento I- Efeito dos herbicidas 2,4-D e dicamba na germinação de 

sementes de plantas daninhas 

 

U. decumbens apresentou estímulo a germinação com o aumento das 

concentrações de dicamba. Já 2,4-D apresentou redução na germinação em 14% na 

concentração de 10ppm (Tabela 8). 

O 2,4-D suprimiu a germinação de D. insularis em mais de 38% quando presente 

em concentração superior a 5 ppm. No entanto, dicamba promoveu aumento na 

germinação até a concentração de 5 ppm, e, ainda superior em relação ao 2,4-D nesta 

mesma concentração (Tabela 8). 

 

Tabela 8- Germinação (%) de U. decumbens e D. insularis em diferentes 

concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 7 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba  

U. decumbens 

0 100,0 aA 100,0 cA 

0,5 95,1 aA 107,6 bcA 

1 93,0 aB 121,9 abA 

5 97,8 aB 127,4 abA 

10 86,0 aB 132,2 abA 

 D. insularis 

0 100,0 aA 100,0 cdA 

0,5 105,9 aB 162,1 abA 

1 107,9 aA 137,9 bcA 

5 62,8 abB 193,1 abA 

10 41,2 bA 69,0 dA 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 

 

E. indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius não apresentaram interação 

significativa entre as concentrações e os herbicidas na germinação aos 7 DAS (Tabela 

9). E. indica apresentou supressão da germinação a partir de 5 ppm e as demais espécies 

não apresentaram diferença significativa na germinação entre as concentrações 



44 
 

testadas. Em geral, o 2,4-D promoveu maior inibição da germinação de sementes de A. 

hybridus e D. aegyptius, enquanto o dicamba teve efeito inibidor na espécie de I. 

grandifolia. Apesar da germinação observada ao longo das concentrações não ter sido 

significativa em A. hybridus devido a alta variação (CV= 64,8% e DMS=125,4), houve 

cerca de mais de 50% em comparação a testemunha, dependendo da dose testada 

(Tabela 9 e Apêndice A). 

 

Tabela 9- Germinação (%) de U. decumbens, D. insularis, E. indica, A. hybridus, I. 

grandifolia e D. aegyptius em diferentes concentrações dos herbicidas 

2,4-D e dicamba aos 7 DAS 

Concentração (ppm) U. decumbens D. insularis E . indica A. hybridus I. grandifolia D. aegyptius 

0,0 0,0  0,0  100,0 ab 100,0 a 100,0 a 100,0 a 

0,5 0,0  0,0  113,0 a 115,7 a 102,4 a 105,4 a 

1,0 0,0  0,0  92,7 ab 167,4 a 105,1 a 112,3 a 

5,0 0,0  0,0  76,4 b 153,4 a 97,1 a 99,8 a 

10,0 0,0  0,0  43,5 c 147,9 a 105,1 a 97,5 a 

2,4-D 0,0  0,0  78,7 A 93,5 B 120,4 A 94,2 B 

Dicamba 0,0  0,0  91,5 A 180,3 A 83,5 B 111,7 A 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se a comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 

 

Tabela 10- Plântulas deformadas (%) de U. decumbens, D. insularis, E. indica, A. 

hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius em diferentes concentrações dos 

herbicidas 2,4-D e dicamba aos 7 DAS 

Concentração (ppm) U. decumbens D. insularis E. indica A. hybridus I. grandifolia D. aegyptius 

0,0 0,0 a 0,0  0,0 0,0 0,0 a 0,0 a 

0,5 1,0 a 0,0  0,0 0,0 0,0 a 0,0 a 

1,0 0,6 a 0,0  0,0 0,0 0,8 a 1,9 a 

5,0 0,5 a 0,0  0,0 0,0 0,0 a 2,1 a 

10,0 0,6 a 0,0  0,0 0,0 0,0 a 2,6 a 

2,4-D 0,5 A 0,0  0,0 0,0 0,0 A 2,5 A 

Dicamba 0,6 A 0,0  0,0 0,0 0,3 A 0,2 B 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se a comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 

 

 



45 
 

Em geral, a espécie D. aegyptius apresentou maior porcentagem de plântulas 

deformadas e, maior sensibilidade ao 2,4-D (Tabela 10). Reiterando que, considerou-se 

deformadas aquelas plântulas nas quais houve emissão de duas partes aéreas ou raízes, 

ou ainda, morte de plântulas. 

Uma vez que, a epinastia é uma característica dos herbicidas auxínicos em 

situações de concentração exacerbada. Na maioria os casos, em U. decumbens foi 

observada emissão de duas partes aéreas, o que pode ter sido em decorrência do 

embrião apomítico (Carneiro et al. 2023; Cruz; Federizzi; Milach, 1998), já I. grandifolia e 

D. aegyptius a porcentagem de plântulas deformadas foi em decorrência da morte de 

plântulas. 

D. insularis, E. indica e, I. grandifolia apresentaram supressão no crescimento de 

parte área em mais de 50% nas concentrações acima de 5 ppm de 2,4-D. Sendo que, D. 

insularis e E. indica apresentaram maior supressão, quando comparado ao dicamba, em 

concentrações superiores a 5 e 0,5 ppm de 2,4-D, respectivamente. Por fim, D. aegyptius 

apresentou cerca de 30% de supressão no crescimento de parte aérea a partir de 1 ppm 

de 2,4-D (Tabela 11).  

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



46 
 

Tabela 11- Comprimento de parte aérea (%) de D. insularis, E. indica, I. grandifolia 

e D. aegyptius em diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-D e 

dicamba aos 7 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba 

D. insularis 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 101,1 aA 92,9 aA 

1 94,0 aA 90,3 aA 

5 48,7 bB 91,1 aA 

10 38,3 bB 77,7 aA 

 E. indica 

0 100,0 aA 100,0 bcA 

0,5 93,1 aB 150,5 aA 

1 70,8 aB 137,2 abA 

5 31,3 bB 133,4 abA 

10 25,5 bB 93,5 cA 

 I. grandifolia 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 118,8 aA 86,9 aB 

1 115,7 aA 89,7 aB 

5 45,1 bA 61,8 bA 

10 42,4 bA 48,0 bA 

 D. aegyptius 

0 100,0 aA 100,0 abA 

0,5 94,3 aA 85,4 cA 

1 70,3 bB 90,2 bcA 

5 52,4 cB 105,8 abA 

10 52,7 cA 54,5 dA 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 

 

 

 

 

 

 



47 
 

Concentrações superiores a 0,5 e 5 ppm suprimiu em mais de 10% o crescimento 

de parte área de U. decumbens e A. hybridus, sendo que, ambas as espécies 

apresentaram maior suscetibilidade ao dicamba (Tabela 12). 

 

Tabela 12- Comprimento de parte aérea (%) de U. decumbens e A. hybridus em 

diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 7 DAS 

Concentração (ppm) U. decumbens A. hybridus 

0,0 100,0 a 100,0 a 

0,5 90,7 b 96,3 a 

1,0 88,8 b 95,7 a 

5,0 63,2 c 75,7 b 

10,0 52,9 d 74,8 b 

2,4-D 81,9 A 94,1 A 

Dicamba 76,3 B 82,9 B 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se a comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 

 

Todas as espécies apresentaram significativa supressão no comprimento de 

raízes (Tabela 13). Concentrações acima de 0,5 ppm de ambos os herbicidas 

ocasionaram supressão superior a cerca de 30%, exceto, em E. indica e D. aegyptius, na 

presença de dicamba. Sendo que, A. hybridus e D. aegyptius apresentaram maior 

sensibilidade ao 2,4-D. 

 

 

 

 

 

 

 

 

 



48 
 

Tabela 13- Comprimento de raízes (%) de U. decumbens, D. insularis, E. indica, A. 

hybridus, I. grandifolia e D. aegyptius em diferentes concentrações dos 

herbicidas 2,4-D e dicamba aos 7 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba 

U. decumbens 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 51,3 bA 36,2 bB 

1 23,2 cA 23,3 cA 

5 8,6 dA 3,4 dA 

10 3,3 dA 3,0 dA 
 D. insularis 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 8,6 bB 33,4 bA 

1 12,7 bA 20,6 cA 

5 0,0 cA 4,2 dA 

10 0,0 cA 1,9 dA 
 E. indica 

0 100,0 aA 100,0 bA 

0,5 21,7 bB 187,0 aA 

1 30,4 bA 64,8 bcA 

5 1,8 bA 14,9 cA 

10 10,8 bA 7,9 cA 
 A. hybridus 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 21,1 bB 73,8 bA 

1 18,3 bB 69,4 bA 

5 17,4 bB 38,4 cA 

10 13,5 bB 37,8 cA 
 I. grandifolia 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 37,2 bB 47,4 bA 

1 30,4 bB 48,5 bA 

5 21,2 cA 19,5 cA 

10 21,9 cA 15,3 cA 
 D. aegyptius 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 60,4 bB 103,4 aA 

1 44,0 cB 81,6 bA 

5 21,9 dB 38,7 cA 

10 23,4 dA 26,2 cA 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 

 



49 
 

U. decumbens e A. hybridus apresentaram estímulo de cerca de 24% e 60% na 

germinação aos 14 DAS em concentrações superiores a 5 e 10 ppm de dicamba, 

respectivamente (Tabela 14). No entanto, D. insularis e E. indica, apresentaram redução 

de cerca de 40 e 35% na germinação em concentrações superiores a 5 e 10 ppm (Tabela 

15).  

 

Tabela 14- Germinação (%) de U. decumbens e A. hybridus em diferentes 

concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 14 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba 

U. decumbens 

0 100,0 aA 100,0 bA 

0,5 102,6 aA 99,4 bA 

1 97,4 aB 116,6 abA 

5 100,0 aB 123,9 aA 

10 84,8 aB 122,7 aA 

 A. hybridus 

0 100,0 aA 100,0 bcA 

0,5 96,6 aA 87,0 cA 

1 92,4 aB 138,4 abA 

5 93,6 aA 126,1 abcA 

10 77,7 aB 157,2 aA 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 

 

Tabela 15- Germinação (%) de D. insularis, E. indica, I. grandifolia, D. aegyptius em 

diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 14 DAS 

Concentração (ppm) D. insularis E . indica I. grandifolia D. aegyptius 

0,0 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 

0,5 89,7 a 112,3 a 93,9 a 109,2 a 

1,0 88,6 a 102,2 a 115,0 a 114,6 a 

5,0 59,5 b 98,4 a 100,5 a 113,1 a 

10,0 42,1 b 65,6 b 94,0 a 109,5 a 

2,4-D 72,2 A 100,0 A 110,4 A 105,0 A 

Dicamba 79,8 A 91,4 A 91,0 A 113,5 A 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se a comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 



50 
 

A. hybridus teve maiores porcentagens de plântulas deformadas na concentração 

de 10 ppm de 2,4-D (Tabela 16). Em decorrência da sensibilidade da espécie ao 2,4-D 

houve morte das plântulas o que contribui para aumento na variável analisada.  

 

Tabela 16- Plântulas deformadas (%) de A. hybridus em diferentes concentrações 

dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 14 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba 

A. hybridus 

0 3,4 bA 0,0 aA 

0,5 0,0 bA 0,0 aA 

1 7,5 bA 1,0 aA 

5 6,1 bA 1,1 aA 

10 21,8 aA 0,0 aB 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 

 

As concentrações dos herbicidas afetaram variavelmente I. grandifolia, entretanto, 

10 ppm aumentou em quase 2 vezes a porcentagem de plântulas deformadas, ou, mortas 

neste caso. Sendo que, a espécie de D. aegyptius apresentou em geral maior 

sensibilidade ao herbicida 2,4-D (Tabela 17). 

Não houve diferença estatística entre as concentrações para U. decumbens, no 

entanto, quando analisadas apenas as médias, as concentrações acima de 5 ppm 

aumentou em mais de 6 vezes a mortalidade de plântulas. Fato este, que pode ter sido 

em decorrência da alta variabilidade na variável demonstrado pelo CV superior a 256% 

(Apêndice B). 

 

 

 

 

 

 



51 
 

Tabela 17- Plântulas deformadas (%) de U. decumbens, D. insularis, E. indica, I. 

grandifolia, D. aegyptius em diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-

D e dicamba aos 14 DAS 

Concentração (ppm) U. decumbens D. insularis E. indica I. grandifolia D. aegyptius 

0,0 0,2 a 0,0 0,0 a 26,6 a 23,9 a 

0,5 0,7 a 0,0 0,0 a 66,7 a 12,0 a 

1,0 0,8 a 0,0 0,0 a 21,5 a 24,3 a 

5,0 1,6 a 0,0 0,5 a 38,9 a 2,9 a 

10,0 1,2 a 0,0 0,0 a 47,8 a 4,1 a 

2,4-D 1,0 A 0,0 0,0 A 42,3 A 24,9 A 

Dicamba 0,7 A 0,0 0,2 A 38,2 A 2,0 B 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se à comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 

 

A. hybridus e D. aegyptius apresentaram uma supressão no comprimento de parte 

aérea a partir de 0,5 ppm de 2,4-D em cerca de 10 e 33%, respectivamente. Entre 0,5 e 

1 ppm, no entanto, D. aegyptius demonstrou-se cerca de 15% mais sensível ao 2,4-D 

(Tabela 18). 

 

Tabela 18- Comprimento de parte aérea (%) de A. hybridus e D. aegyptius em 

diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 14 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba 

A. hybridus 

0,0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 90,5 bA 93,6 abA 

1,0 84,3 bA 89,4 bA 

5,0 83,9 bA 69,8 cB 

10,0 73,3 cA 79,3 dA 

 D. aegyptius 

0,0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 67,5 bB 100,9 aA 

1,0 59,2 bcB 75,9 bA 

5,0 47,5 cdA 58,2 cA 

10,0 42,8 dA 39,1 dA 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 



52 
 

U. decumbens, D. insularis, E. indica e I. grandifolia apresentaram supressão de 

parte aérea em mais de 40% nas concentrações superiores a 5 ppm. Sendo que, na 

concentração de 0,5 ppm I. grandifolia já apresentou 16% de supressão no comprimento.  

Em geral o herbicida 2,4-D suprimiu o crescimento de parte aérea de D. insularis e E. 

indica (Tabela 19). 

 

Tabela 19- Comprimento de parte aérea (%) de U. decumbens, D. insularis, E. indica 

e I. grandifolia em diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-D e 

dicamba aos 14 DAS 

Concentração (ppm) U. decumbens D. insularis E. indica I. grandifolia 

0,0 100,0 a 100,0 a 100,0 a 100,0 a 

0,5 90,9 a 90,6 a 95,0 a 83,6 b 

1,0 89,6 a 89,4 a 102,0 a 83,4 b 

5,0 57,7 b 57,7 b 51,7 b 49,2 c 

10,0 52,8 b 50,9 b 54,6 b 44,0 c 

2,4-D 77,3 A 66,4 B 68,9 B 72,6 A 

Dicamba 79,1 A 89,1 A 92,9 A 72,0 A 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se a comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 

 

Os herbicidas 2,4-D e dicamba suprimiram o crescimento de raízes aos 14 DAS 

de A. hybridus e I. grandifolia em concentrações acima de 0,5 ppm (Tabela 20). Nestas 

espécies, a uma concentração de 0,5 ppm, o 2,4-D resultou em uma redução de cerca 

de 20% e 30% superior em relação ao dicamba. 

E. indica e D. aegyptius exibiram uma supressão significativamente maior das 

raízes em concentrações acima de 0,5 ppm para o 2,4-D e 5 ppm para o dicamba (Tabela 

20). Neste caso, a supressão no comprimento promovida pelo 2,4-D foi de 85 e 46% e 

pelo dicamba em cerca de 95 e 61% em E. indica e D. aegyptius, respectivamente. 

 

 

 



53 
 

Tabela 20- Comprimento de raízes (%) de E. indica, A. hybridus, I. grandifolia e D. 

aegyptius em diferentes concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba 

aos 14 DAS 

Concentração (ppm) 
2,4-D Dicamba 

E. indica 

0 100,0 aA 100,0 abA 

0,5 15,2 bB 156,9 abA 

1 15,7 bA 50,8 bcA 

5 3,9 bA 5,3 cA 

10 2,8 bA 4,8 cA 

 A. hybridus 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 28,8 bB 59,5 bA 

1 21,8 bcB 56,0 bA 

5 17,2 cB 42,5 cA 

10 16,4 cB 40,5 cA 

 I. grandifolia 

0 100,0 aA 100,0 aA 

0,5 27,5 bcB 48,2 bA 

1 22,8 bcB 45,9 bA 

5 16,7 cdA 17,4 cA 

10 14,2 dA 14,8 cA 

 D. aegyptius 

0 100,0 aA 100,0 abA 

0,5 54,2 bB 110,5 aA 

1 41,8 bcA 85,5 bA 

5 28,8 cdA 38,5 cA 

10 23,1 dA 28,0 cA 

Médias seguidas da mesma letra minúsculas na mesma coluna (concentrações) e maiúsculas na linha 

(herbicidas) não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de probabilidade. 

 

Em U. decumbens e D. insularis a supressão de crescimento de mais de 50% foi 

observada em concentrações acima de 0,5 ppm (Tabela 21). Enquanto que, em geral o 

dicamba foi mais supressivo a espécie de U. decumbens.  

 
 
 
 
 



54 
 

Tabela 21- Comprimento de raízes (%) de U. decumbens e D. insularis em diferentes 

concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba aos 14 DAS 

Concentação (ppm) U. decumbens D. insularis 

0,0 100,0 a 100,0 a 

0,5 49,4 b 22,9 b 

1,0 24,2 c 7,6 c 

5,0 6,6 d 2,2 cd 

10,0 3,4 d 0,2 d 

2,4-D 38,7 A 24,5 B 

Dicamba 34,7 B 28,7 A 

Médias seguidas da mesma letra na mesma coluna não diferem entre si pelo teste de LSD a 5% de 

probabilidade. Letras minúsculas e maiúsculas na coluna referem-se à comparação entre as concentrações 

e herbicidas, respectivamente. 

 

Neste estudo investigou se o efeito de doses crescentes de herbicidas na 

germinação e no crescimento de plântulas de espécies mono e dicotiledôneas. Auxinas 

sintéticas apresentam efeito dependente da dose e sensibilidade do tecido na qual é 

exposto, e, a espécie (Grossmann, 2010b; Pazmiño; Romero-Puertas; Sandalio, 2012). 

Foi possível observar efeitos significativos causados pelos herbicidas testados sobre a 

germinação e o crescimento das plântulas, com variações entre as diferentes espécies, 

tempos de avaliação e concentrações dos herbicidas 2,4-D e dicamba. 

Os efeitos dos herbicidas auxínicos na germinação de sementes mostraram-se 

variáveis conforme a espécie, resultando tanto em estímulo quanto em supressão da 

germinação ao longo das avaliações. U. decumbens e D. insularis apresentaram estímulo 

a germinação aos 7 DAS na presença de dicamba, no entanto, D. insularis apresentou 

supressão em concentrações superiores a 5 ppm de 2,4-D. Enquanto, que D. aegyptius 

também manteve alta germinação ao longos das avaliações, no entanto, com aumento 

da mortalidade de plântulas. Efeito supressor evidente foi observado nas espécies de E. 

indica em doses superiores a 5 ppm dos herbicidas. 

A resposta das espécies a auxina envolvem diferentes mecanismos, como 

absorção e metabolismo dos herbicidas auxínicos (Chang; Vanden Born, 1971; Hagin; 

Linscott; Dawson, 1970; Morton; Robinson; Meyer, 1967), alterações na transcrição de 

genes responsivos a auxinas (Hagen; Guilfoyle, 2002; Hanson; Slife, 1969) e interação 



55 
 

com outros reguladores de crescimento como etileno e ABA (Argueso; Hansen; Kieber, 

2007; Grossmann, 2010b; Kraft et al., 2007; Sunohara; Matsumoto, 2004). 

Enquanto as auxinas naturais são prontamente inativadas por meio de processos 

de conjugação e degradação, as auxinas sintéticas, como o 2,4-D, mantêm sua atividade 

ao longo do tempo, mostrando-se mais eficazes e letais (Ljung et al., 2002).  

Além disso, a germinação e dormência de sementes em resposta a auxina envolve 

mecanismos principalmente regulados pelo ABA (Matthes et al. 2019) onde a inibição da 

germinação de sementes mediada por ABA requer o transporte e sinalização de auxinas. 

Por outro lado, a superprodução de auxina resulta em hipersensibilidade ao ABA (Robert 

et al. 2018; Swarup et al. 2019), o que pode levar a uma potencialização dos efeitos 

inibitórios do ABA.  

A revisão de Matilla, (2020) aborda estudos que demonstram quando os níveis de 

auxina estão baixos, a transcrição responsiva à auxina é reprimida e a dormência das 

sementes não pode ser mantida. Em contraste, quando os níveis de auxina são altos, 

fatores responsivos as auxinas são liberadas e a transcrição resulta na dormência das 

sementes. Já Shuai et al., (2017) destacou que a auxina exógena aplicada a sementes 

de soja reduziu a germinação de sementes de soja devido à redução da relação entre 

giberelina e ácido abscísico (GA/ABA), estimulando a biossíntese de ABA e reprimindo a 

biossíntese de GA. 

Para U. decumbens e D. insularis a exposição das sementes as auxinas sintéticas 

podem ter afetado o balanço de GA/ABA passando de um estado dormente ou não, para 

estimulo a germinação. Enquanto que as demais, apresentaram mais sensíveis ao 

aumento nos níveis de auxina levando a redução na germinação. Outros sinais 

endógenos e ambientais também podem estar envolvidos no conteúdo e a distribuição 

de auxinas, influenciando assim o desenvolvimento das plantas. 

A auxina também é reconhecida pelos efeitos contrastantes no desenvolvimento 

da parte aérea e da raiz, por sua aparente participação na regulação do crescimento e 

desenvolvimento da maioria das plantas, bem como em respostas de desenvolvimento 

(Weijers; Wagner, 2016 apud Emenecker; Strader, 2020). Além disso, as vias de 

sinalização do ABA e da auxina interagem na regulação de várias respostas de 



56 
 

crescimento e estresse (Rowe et al. 2016 apud Emenecker; Strader, 2020) e promovem 

o crescimento celular na parte aérea, enquanto inibe nas raízes. 

O estímulo contínuo do metabolismo vegetal em decorrência das auxinas 

sintéticas, promove síntese de ácidos nucleicos e proteínas resultando em distorções no 

crescimento devido à divisão e expansão celular. Essas anomalias podem ser 

observadas em tecidos adicionais, em momentos e posições inadequados, levando ao 

inchaço e epinastia. Simultaneamente, observa-se uma transição nas células 

meristemáticas e cambiais, com o início de divisão e diferenciação celular transitórias. 

Esses tecidos passam a mobilizar as reservas de carboidratos e proteínas dos tecidos 

funcionais, enquanto os produtos metabólicos são translocados, resultando em 

senescência (Van Overbeek, 1964; Cobb, 1992). 

Por outro lado, a inibição do crescimento e a morte celular são sugeridas por um 

mecanismo de ação mais específico, evidenciado pela seletividade das espécies em 

relação aos herbicidas à base de auxinas, juntamente com sua rápida atividade e, em 

alguns casos, estereosseletividade, como no caso do enantiômero (+)-D do herbicida 

diclorprop-P, que demonstra eficácia mesmo em baixas concentrações de aplicação 

(Grossmann, 2003). 

Neste estudo, foram observados nas plântulas menor crescimento de raízes, 

plantas amarelecidas, intumescimento de raízes, folhas retorcidas e atrofia, como os 

principais sintomas de 2,4-D e dicamba. Em monocotiledôneas, foi observado anel 

coronar mais alongado, menor crescimento, folhas estreitas e pontiagudas, 

intumescimento no colo e, arroxeamento, com sintomas mais evidentes aos 14 DAS e à 

medida que as concentrações eram aumentadas (Figura 5). Em dicotiledôneas, sintomas 

semelhantes foram observados, tais como, intumescimento próximo a região do colo, 

redução no comprimento, atrofia e necrose de raízes, menor crescimento e atrofia de 

parte aérea (Figura 6). 

 

 

 



57 
 

Figura 5- Sintomas em plântulas de espécies monocotiledôneas U. decumbens (A, 

D), D. insularis (B, E) e E. indica (C, F) em aplicações de dicamba e 2,4-D aos 14 

DAS 

 

Herbicida (A) (B) (C) 

2,4-D 

 

 

 

 
 

 (D) (E) (F) 

Dicamba 

 

 

 

 

 

 

Fonte: Ivana Santos Moisinho (2022) 

    

 

 

 

 



58 
 

Figura 6- Sintomas em plântulas de espécies dicotiledôneas A. hybridus (A, D), I. 

grandifolia (B, E) e D. aegyptius (C, F) em aplicações de 2,4-D e dicamba aos 14 

DAS 

 

Herbicida (A) (B) (C) 

2,4-D 

 

  

 (D) (E) (F) 

Dicamba 

 
 

 

Fonte: Ivana Santos Moisinho (2022) 

 

O crescimento das raízes foi mais afetado pelos herbicidas comparados ao 

crescimento da parte aérea. U. decumbens, D. insularis e E. indica apresentaram 

crescimento de parte aérea aos 14 DAS, bem como A. hybridus e, I. grandifolia. 

Considerando 2,4-D, os cloroplastos são os principais destinos desse herbicida. É 

esperado que ao passar das avaliações haja incremento nas variáveis analisadas, uma 

vez que, o metabolismo ainda permanece ativo. No entanto, a proporção em que as 

partes crescem e se desenvolvem é limitada advindo das consequências da 

concentração excessiva de auxinas sintéticas. 



59 
 

Em baixas concentrações a assimilação de carbono e reações fotoquímicas são 

estimuladas, e consequente estímulo ao crescimento. Ao contrário, em altas 

concentrações a sua presença é inibitória (Tresch; Grossmann, 2003), e consequências 

nas reações de Hill, bloqueio do transporte de elétrons, redução no conteúdo de clorofila 

e aumento no conteúdo de xantofilas induz a senescência (Grossmann, 2003; Kraft et al., 

2007). 

Pouco efeito na supressão de parte aérea também foi documentado por  Halifax e 

Scifres (1972) nas espécies gramíneas de Panicum obtusum, Panicum virgatum e 

Bouteloua curtipendula em uma concentração até 63 ppb e redução no crescimento de 

raízes a partir de 500 ppb de dicamba Já Koo, Neal e Ditomaso, (1997) verificou que 

quinclorac em Echinochloa crus-galli e Digitaria ischaemum inibiu completamente a 

elongação de raízes a uma concentração de 10µM. 

O alongamento da raiz depende de uma combinação de divisão celular e 

alongamento celular. Tanto a auxina quanto o ABA desempenham papéis essenciais na 

regulação do alongamento da raiz. Altos níveis de auxina exógena e ácido abscísico 

inibem o alongamento da raiz. Especificamente, a interrupção do transporte de auxina 

(aux1 ou pin2) ou sinalização de auxina (tir1, ibr5, axr1 e mutantes Aux/IAA de ganho de 

função) resulta em resistência ao ABA no alongamento da raiz primária (Thole et al. 2014; 

Rinaldi et al. 2012 apud Emenecker; Strader, 2020). 

Estudos reiteram que altos níveis de auxinas e ácido abscísico exógena inibem a 

elongação das raízes (Thole et al. 2014 apud emenecker; Strader, 2020). A inibição 

mediada pelo ABA do alongamento da raiz primária requer claramente transporte e 

sinalização de auxina intactos. Por outro lado, a inibição do alongamento radicular 

mediada pela auxina não requer sinalização ABA intacta (Li et al. 2017 apud Emenecker; 

Strader, 2020).  

Os herbicidas 2,4-D e dicamba demonstraram algum efeito estimulante a 

germinação e fortemente supressor no crescimento de raízes. Durante o processo de 

germinação, as sementes ativam mecanismos bioquímicos que resultam na emergência 

da parte aérea da planta. No entanto, o crescimento inicial e posterior desenvolvimento 

é essencial a presença de um sistema radicular funcional. As raízes desempenham 

papéis na absorção de água e nutrientes do solo, fornece suporte físico e permite a 



60 
 

interação com microrganismos no solo. Portanto, embora a germinação e o 

desenvolvimento da parte aérea não tenham sido drasticamente afetados, na ausência 

de sistema radicular a plântula se torna incapaz de absorver os recursos necessários 

resultando em uma limitação significativa seu crescimento e metabolismo. 



61 
 

4.2 Experimento II- Sorção e disponibilidade de herbicidas auxínicos em solos 

com características distintas 

 

Aminopyralid e o 2,4-D foram os herbicidas com maior disponibilidade no solo, 

enquanto o triclopyr foi mais sorvido e, consequentemente, menos disponível (Tabela 

22). O picloram apresentou comportamento intermediário, variando 

consideravelmente dependendo do solo testado. 

Comportamento interessante foi observado para o 2,4-D, que mostrou maiores 

coeficientes de sorção e, ainda assim, maior disponibilidade em comparação ao 

picloram. Os valores médios do picloram foram de 7,5 e 17,3, enquanto os do 2,4-D 

foram de 31 e 39, resultando em uma disponibilidade de cerca de 14% e 18%, 

respectivamente (Tabela 22). 

 

Tabela 22- Sorção de picloram, triclopyr, aminopyralid e 2,4-D em solos com 

características distintas 

Parâmetros* 
Kd  Koc Disponibilidade (%) 

 Picloram 

Mínimo 0,44 ± 0,08  0,89 ± 0,08 0,57 ± 0,17 

Média 7,53 ± 4,73  17,34 ± 3,36 14,12 ± 1,22 

Máximo 61,77 ± 70,03  91,77 ± 34,22 37,60 ± 3,52 
  Triclopyr 

Mínimo 0,53 ± 0,06  1,21 ± 0,12 0,11 ± 0,06 

Média 67,74 ± 93,82  120,25 ± 49,95 8,51 ± 0,78 

Máximo 1610,80 ± 1735,42  1809,72 ± 848,05 31,81 ± 2,77 
  Aminopyralid 

Mínimo 0,29 ± 0,02  0,64 ± 0,03 1,40 ± 0,33 

Média 4,73 ± 1,01  7,86 ± 1,01 20,36 ± 1,12 

Máximo 37,71 ± 13,79  33,74 ± 7,64 48,16 ± 4,80 
  2,4-D 

Mínimo 0,19 ± 0,02  0,43 ± 0,06 0,31 ± 0,11 

Média 31,06 ± 16,30  38,74 ± 12,00 17,89 ± 1,94 

Máximo 445,78 ± 258,42  369,42 ± 126,28 63,47 ± 14,62 

*Coeficientes mínimos, médios e máximos de sorção em solos distintos seguidos do erro padrão. Kd: 

coeficiente de sorção, Koc