Estabelecimento de um modelo tridimensional para determinação da eficácia e segurança farmacológica de derivados de nitrofuranos e indólicos e avaliação da infecção de Histoplasma capsulatum

Vaso, Carolina Orlando

Estabelecimento de um modelo tridimensional para determinação da eficácia e segurança farmacológica de derivados de nitrofuranos e indólicos e avaliação da infecção de Histoplasma capsulatum

Arquivos

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Data

2022-11-29

Autores

Vaso, Carolina Orlando

Orientador

Fusco-Almeida, Ana Marisa

Orlandi, Caroline Barcelos Costa

Pós-graduação

Biociências e Biotecnologia Aplicadas à Farmácia - FCF

Editor

Universidade Estadual Paulista (Unesp)

Tipo

Tese de doutorado

Direito de acesso

Acesso restrito

Resumo

Resumo (português)

As culturas tridimensionais (3D) são um tipo de cultivo celular que têm o propósito de simular mais fidedignamente o tecido in vivo. As doenças fúngicas afetam mais de 1 bilhão de pessoas em todo o mundo. A crescente evolução da resistência microbiana e os efeitos adversos dos antifúngicos atuais auxiliam no surgimento de novos medicamentos. Esse estudo teve o objetivo de estabelecer esferoides de células pulmonares para avaliar a toxicidade de derivados de nitrofuranos e indólicos e explorar a interação H. capsulatum-hospedeiro. Além disso, objetivou-se estudar a toxicidade desses compostos in vivo utilizando animais alternativos, bem como averiguar o(s) seu(s) possível(is) mecanismo(s) de ação. Esferoides das linhagens pulmonares A549 e MRC-5 foram caracterizados pelo método de azul de Trypan, resazurina e iodeto de propídeo. O tamanho, a forma e densidade celular foram avaliados por microscopia eletrônica de varredura (MEV) e confocal. Testes de sensibilidade foram conduzidos de acordo com o documento M27-A3, proposto pelo Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), com pequenas modificações nos ensaios com H. capsulatum. A citotoxicidade foi avaliada em esferoides e em monocamada, por meio da adição de resazurina. A toxicidade in vivo foi avaliada no modelo de Caenorhabditis elegans, Galleria mellonella e Zebrafish. Foi verificada ação antibiofilme dos compostos mais potentes para H. capsulatum, pelo método de redução do sal tetrazólico (XTT). Os danos nos biofilmes maduros, foram visualizados por MEV e confocal. O mecanismo de ação foi averiguado pela quantificação do ergosterol da membrana, verificação de danos de parede com Calcofluor White, produção de espécies reativas de oxigênio (EROs) utilizando 2,7-dichlorodihydrofluoresceina, morte celular pelo ensaio de iodeto de propídeo (IP)/Anexina e técnica de PCR em tempo real. As interações entre células planctônicas e de biofilme maduro de H. capsulatum foram realizadas nos esferoides e comparadas às infecções nas mesmas condições em monocamadas, por PCR em tempo real. Os esferoides apresentaram diâmetros entre 370-600 μm e viabilidade maior que 80% após 10 dias de formação. A MEV e confocal mostraram uma arquitetura esferoidal íntegra e constituída por células interconectadas entre si. Dos compostos testados contra H. capsulatum, 18 foram mais eficazes com valores de CIM90 de 0,122 a 61,25 μg/mL. No geral, os compostos testados foram menos tóxicos nos esferoides comparativamente à monocamada. Dentre os compostos testados o L7CF 166 (derivado de nitrofurano), o L7CF 197 (derivado indólico) e L7CF 219 (derivado nitrofurano/indólico) foram os mais específicos para o H. capsulatum. Nos modelos alternativos C. elegans, G. mellonella e zebrafish a toxicidade dos compostos foi baixa, mesmo em concentrações elevadas. Os compostos inibiram o biofilme inicial e maduro na concentração igual ou duas vezes a requerida para as células planctônicas. As micrografias mostraram uma redução na atividade metabólica, na espessura e na matriz extracelular dos biofilmes. Os três compostos reduziram a quantidade do ergosterol presente na membrana fúngica. Dois compostos L7CF 166 e L7CF 219 foram capazes de causar deformações na parede celular. Já os L7CF 197 e L7CF 219 foram capazes de induzir EROs nas células. Além disso, os três compostos provocaram morte celular por via necrótica. Os esferoides infectados com a forma planctônica obtiveram uma modulação negativa para o gene CBP1. Já os esferoides infectados com biofilme, apresentaram modulação positiva para o gene CBP1 e a GAPDH e, modulação negativa para gene DDR8. Adicionalmente, foram testados a série de derivados de nitrofuranos contra diferentes espécies de fungos. A citotoxicidade foi avaliada utilizando os cultivos em monocamada e esferoides de A549 e MRC-5 e toxicidade in vivo no modelo alternativo de C.elegans. A maioria dos compostos apresentou baixa atividade inibitória. Os valores mais potentes de CIM90 foram de 0,48 μg/mL contra Paracoccidioides brasiliensis (L7CF 182), 0,98 μg/mL contra Trichophyton rubrum e T. mentagrophytes (L7CF 193) e 3,9 μg/mL contra cepas de Candida e Cryptococcus neoformans (L7CF 113 e L7CF 181, respectivamente). Além disso, todos os compostos apresentaram baixa toxicidade quando testados in vitro e in vivo. Baseado nesses resultados, os esferoides mostram-se viáveis para o estudo de toxicidade de fármacos e para experimentos de infeção. No geral, os resultados sugerem que derivados de nitrofuranos e indólicos são compostos promissores para o tratamento de infecções fúngicas.

Resumo (inglês)

Three-dimensional (3D) cultures are a type of cell culture that are intended to simulate tissue in vivo more faithfully. Fungal diseases affect more than 1 billion people worldwide. The increasing evolution of microbial resistance and the adverse effects of current antifungal drugs assist in the emergence of new drugs. This study aims to establish lung cell spheroids to evaluate the toxicity of nitrofuran and indole derivatives and explore the H. capsulatum-host interaction. Furthermore, we aim to study the toxicity of these compounds in vivo using alternative animals, as well as to investigate their possible mechanism(s) of action. Spheroids from the A549 and MRC-5 lung lines were characterized by Trypan blue, resazurin and propidium iodide methods. Cell size, shape and density were evaluated by scanning electron microscopy (SEM) and confocal microscopy. Sensitivity tests were conducted according to document M27-A3, proposed by the Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI), with minor modifications in the assays with H. capsulatum. Cytotoxicity was assessed in spheroids and in monolayer by addition of resazurin. In vivo toxicity was evaluated in the Caenorhabditis elegans, Galleria mellonella and Zebrafish model. Antibiofilm action of the most potent compounds was verified for H. capsulatum by the tetrazolium salt reduction (XTT) method. The damage in the mature biofilms was visualized by SEM and confocal. The mechanism of action was ascertained by quantification of membrane ergosterol, verification of wall damage with Calcofluor White, production of reactive oxygen species (ROS) using 2,7-dichlorodihydrofluorescein, cell death by propidium iodide (PI)/Anexin assay and real- time PCR technique. Interactions between planktonic and mature biofilm cells of H. capsulatum were performed on the spheroids and compared to infections under the same conditions in monolayers by real-time PCR. The spheroids showed diameters between 370- 600 μm and viability higher than 80% after 10 days of formation. SEM and confocal showed an intact spheroidal architecture consisting of cells interconnected with each other. Of the compounds tested against H. capsulatum, 18 were most effective with MIC90 values from 0.122 to 61.25 μg/mL. Overall, the compounds tested were less toxic on spheroids compared to the monolayer. Among the compounds tested L7CF 166 (nitrofuran derivative), L7CF 197 (indole derivative) and L7CF 219 (nitrofuran/indole derivative) were the most specific for H. capsulatum. In the alternative models C. elegans, G. mellonella and zebrafish the toxicity of the compounds was low, even at high concentrations. The compounds inhibited the initial and mature biofilm at concentration equal to or twice that required for planktonic cells. Micrographs showed a reduction in metabolic activity, thickness, and extracellular matrix of the biofilms. All three compounds reduced the amount of ergosterol present in the fungal membrane. Two compounds L7CF 166 and L7CF 219 were able to cause deformations in the cell wall. L7CF 197 and L7CF 219, on the other hand, were able to induce ROS in the cells. In addition, all three compounds caused cell death via necrotic pathway. The spheroids infected with the planktonic form obtained a negative modulation for the CBP1 gene. The spheroids infected with biofilm showed positive modulation for CBP1 gene and GAPDH, and negative modulation for DDR8 gene. Additionally, the series of nitrofuran derivatives were tested against different fungal species. Cytotoxicity was evaluated using monolayer and spheroid cultures of A549 and MRC-5 and in vivo toxicity in the alternative C.elegans model. Most of the compounds showed low inhibitory activity. The most potent MIC90 values were 0.48 μg/mL against Paracoccidioides brasiliensis (L7CF 182), 0.98 μg/mL against Trichophyton rubrum and T. mentagrophytes (L7CF 193) and 3.9 μg/mL against Candida and Cryptococcus neoformans strains (L7CF 113 and L7CF 181, respectively). Furthermore, all compounds showed low toxicity when tested in vitro and in vivo. Based on these results, the spheroids show to be viable for drug toxicity study and for infection experiments. Overall, the results suggest that nitrofuran and indole derivatives are promising compounds for the treatment of fungal infections.